Regulamentul 771/29-feb-2024 de modificare a Regulamentului (CE) nr. 152/2009 de stabilire a metodelor de eşantionare şi analiză pentru controlul oficial al furajelor

Acte UE

Jurnalul Oficial seria L

În vigoare
Versiune de la: 15 Martie 2024
Regulamentul 771/29-feb-2024 de modificare a Regulamentului (CE) nr. 152/2009 de stabilire a metodelor de eşantionare şi analiză pentru controlul oficial al furajelor
Dată act: 29-feb-2024
Emitent: Comisia Europeana
(Text cu relevanţă pentru SEE)
COMISIA EUROPEANĂ,
având în vedere Tratatul privind funcţionarea Uniunii Europene,
având în vedere Regulamentul (UE) 2017/625 al Parlamentului European şi al Consiliului din 15 martie 2017 privind controalele oficiale şi alte activităţi oficiale efectuate pentru a asigura aplicarea legislaţiei privind alimentele şi furajele, a normelor privind sănătatea şi bunăstarea animalelor, sănătatea plantelor şi produsele de protecţie a plantelor, de modificare a Regulamentelor (CE) nr. 999/2001, (CE) nr. 396/2005, (CE) nr. 1069/2009, (CE) nr. 1107/2009, (UE) nr. 1151/2012, (UE) nr. 652/2014, (UE) 2016/429 şi (UE) 2016/2031 ale Parlamentului European şi ale Consiliului, a Regulamentelor (CE) nr. 1/2005 şi (CE) nr. 1099/2009 ale Consiliului şi a Directivelor 98/58/CE, 1999/74/CE, 2007/43/CE, 2008/119/CE şi 2008/120/CE ale Consiliului şi de abrogare a Regulamentelor (CE) nr. 854/2004 şi (CE) nr. 882/2004 ale Parlamentului European şi ale Consiliului, precum şi a Directivelor 89/608/CEE, 89/662/CEE, 90/425/CEE, 91/496/CEE, 96/23/CE, 96/93/CE şi 97/78/CE ale Consiliului şi a Deciziei 92/438/CEE a Consiliului (Regulamentul privind controalele oficiale) (1), în special articolul 34 alineatul (6),
(1)JO L 95, 7.4.2017, p. 1.
Întrucât:
(1)Regulamentul (CE) nr. 152/2009 al Comisiei (2) stabileşte metodele de eşantionare şi analiză pentru controlul oficial al furajelor.
(2)Regulamentul (CE) nr. 152/2009 al Comisiei din 27 ianuarie 2009 de stabilire a metodelor de eşantionare şi analiză pentru controlul oficial al furajelor (JO L 54, 26.2.2009, p. 1).
(2)Metodele de eşantionare şi analiză stabilite prin Regulamentul (CE) nr. 152/2009 trebuie adaptate în funcţie de evoluţia cunoştinţelor ştiinţifice şi tehnologice. Prezentul regulament trebuie să introducă mai multe modificări minore, ţinând seama de experienţa dobândită prin aplicarea metodei de analiză sau pentru a oferi clarificări la anumite dispoziţii.
(3)Metoda de eşantionare descrisă în Regulamentul (CE) nr. 152/2009 nu este adecvată pentru eşantionarea pentru controlul contaminării microbiologice şi, prin urmare, este exclusă din domeniul de aplicare. Cu toate acestea, deoarece în urma modificării aduse prin Regulamentul (UE) nr. 691/2013 al Comisiei (3) nu mai este exclusă în mod explicit din domeniul de aplicare, acest lucru a condus la o anumită confuzie şi, prin urmare, este oportun ca aceasta să fie exclusă din nou în mod explicit din domeniul de aplicare.
(3)Regulamentul (UE) nr. 691/2013 al Comisiei din 19 iulie 2013 de modificare a Regulamentului (CE) nr. 152/2009 în ceea ce priveşte metodele de eşantionare şi de analiză (JO L 197, 20.7.2013, p. 1).
(4)Este oportun să se introducă dispoziţii specifice pentru eşantionarea hranei pentru animale oferite spre vânzare de către operatorii din sectorul hranei pentru animale prin mijloace de comunicare la distanţă, având în vedere că vânzarea hranei pentru animale prin mijloace de comunicare la distanţă se află în creştere. Pe lângă dispoziţiile privind incertitudinea de măsurare analitică şi recuperarea în cazul analizei substanţelor nedorite, astfel de dispoziţii trebuie, de asemenea, introduse pentru analiza conţinutului de aditivi furajeri, având în vedere că dispoziţiile respective sunt relevante şi în cazul respectiv. Având în vedere dovezile conform cărora aplicarea metodei de analiză pentru determinarea ureei în afara domeniului de aplicare al autorizării ureei ca aditiv pentru hrana animalelor generează rezultate analitice incorecte, trebuie specificat domeniul de aplicare al metodei respective şi trebuie adăugate informaţii privind evaluarea metodei şi rezultatele unui studiu colaborativ.
(5)Trebuie eliminate mai multe metode de analiză stabilite prin Regulamentul (CE) nr. 152/2009, deoarece acestea nu mai sunt valabile pentru scopul pentru care au fost concepute. Metoda de analiză pentru determinarea bazelor azotate volatile şi metoda de determinare a carbonaţilor trebuie eliminate, deoarece nu mai există nicio cerinţă legală de controlul conformităţii în legislaţia Uniunii privind hrana pentru animale. Metoda de analiză existentă pentru determinarea substanţei diclazuril conţine erori de redactare şi, în consecinţă, nu oferă rezultate analitice fiabile. Prin urmare, aceasta trebuie înlocuită cu o metodă ajustată care a demonstrat că oferă rezultate fiabile. Noile metode de analiză pentru analiza gosipolului liber şi total au furnizat dovezi că metoda de analiză pentru determinarea gosipolului liber şi total stabilită prin Regulamentul (CE) nr. 152/2009 nu oferă rezultate fiabile şi, prin urmare, trebuie eliminată şi înlocuită cu o trimitere la standardele europene (standarde EN). Metodele de analiză pentru a controla prezenţa ilegală a aditivilor care nu mai sunt autorizaţi în hrana pentru animale trebuie eliminate, deoarece de atunci au fost elaborate abordări de depistare şi metode de analiză mai sensibile.
(6)Pe lângă metodele de analiză descrise în anexele la prezentul regulament, trebuie să se facă o trimitere la standardele EN pentru a fi utilizate în cadrul controalelor oficiale.
(7)Deoarece Regulamentul de punere în aplicare (UE) 2021/2047 al Comisiei (4) a autorizat noul aditiv pentru hrana animalelor amproliu, în anexa IV la Regulamentul (CE) nr. 152/2009 trebuie adăugată o metodă de analiză pentru determinarea amproliului.
(4)Regulamentul de punere în aplicare (UE) 2021/2047 al Comisiei din 23 noiembrie 2021 privind autorizarea clorhidratului de amproliu (COXAM) ca aditiv în hrana puilor pentru îngrăşare şi a puicuţelor pentru ouat (titularul autorizaţiei: HuvePharma NV) (JO L 418, 24.11.2021, p. 13).
(8)Deoarece modificările aduse Regulamentului (CE) nr. 152/2009 sunt substanţiale şi se referă la mai multe dispoziţii din anexele la acesta, este oportun, din motive de claritate, să se înlocuiască anexele respective în întregime.
(9)Măsurile prevăzute în prezentul regulament sunt conforme cu avizul Comitetului permanent pentru plante, animale, produse alimentare şi hrană pentru animale,
ADOPTĂ PREZENTUL REGULAMENT:
-****-
Art. 1: Modificări aduse Regulamentului (CE) nr. 152/2009
Regulamentul (CE) nr. 152/2009 se modifică după cum urmează:
1.La articolul 1, primul paragraf se înlocuieşte cu următorul text:
"Eşantionarea pentru controlul oficial al furajelor, în special în ceea ce priveşte determinarea constituenţilor, inclusiv materialele care conţin, constau în sau sunt produse din organisme modificate genetic (OMG), aditivii pentru hrana animalelor, astfel cum sunt definiţi în Regulamentul (CE) nr. 1831/2003 al Parlamentului European şi al Consiliului (*1), substanţele nedorite, astfel cum sunt definite de Directiva 2002/32/CE a Parlamentului European şi a Consiliului (*2), se efectuează în conformitate cu metodele prevăzute în anexa I, cu excepţia eşantionării pentru controlul contaminării microbiologice.
(*1)Regulamentul (CE) nr. 1831/2003 al Parlamentului European şi al Consiliului din 22 septembrie 2003 privind aditivii din hrana animalelor (JO L 268, 18.10.2003, p. 29).
(*2)Directiva 2002/32/CE a Parlamentului European şi a Consiliului din 7 mai 2002 privind substanţele nedorite din furaje (JO L 140, 30.5.2002, p. 10)."
2.Anexa I se înlocuieşte cu textul din anexa I la prezentul regulament.
3.Anexa II se înlocuieşte cu textul din anexa II la prezentul regulament.
4.Anexa III se înlocuieşte cu textul din anexa III la prezentul regulament.
5.Anexa IV se înlocuieşte cu textul din anexa IV la prezentul regulament.
6.Anexa V se înlocuieşte cu textul din anexa V la prezentul regulament.
7.Anexa VII se înlocuieşte cu textul din anexa VI la prezentul regulament.
8.Anexa VIII se elimină.
Art. 2: Intrare în vigoare
Prezentul regulament intră în vigoare în a douăzecea zi de la data publicării în Jurnalul Oficial al Uniunii Europene.
Prezentul regulament este obligatoriu în toate elementele sale şi se aplică direct în toate statele membre.
-****-
Adoptat la Bruxelles, 29 februarie 2024.

Pentru Comisie

Preşedinta

Ursula VON DER LEYEN

ANEXA I:
"- ANEXA I: METODE DE EŞANTIONARE
1.SCOP ŞI DOMENIU DE APLICARE
Eşantioanele destinate controlului oficial al furajelor se prelevează în conformitate cu metodele descrise în continuare. Eşantioanele astfel prelevate se consideră reprezentative pentru loturile eşantionate.
Scopul eşantionării reprezentative este de a obţine o mică fracţiune dintr-un lot în aşa fel încât determinarea oricărei caracteristici speciale a acestei fracţiuni va reprezenta valoarea medie a caracteristicii lotului. Lotul se eşantionează prin prelevarea în mod repetat de eşantioane elementare, la diferite poziţii unice din lot. Aceste eşantioane elementare sunt combinate prin amestecare pentru a forma un eşantion agregat pornind de la care sunt pregătite eşantioane finale reprezentative prin divizare reprezentativă.
În cazul în care, printr-o inspecţie vizuală sau pe baza altor informaţii relevante, porţiuni din furajele care urmează să fie eşantionate arată o diferenţă de calitate faţă de restul furajelor din acelaşi lot, aceste fragmente se separă de restul de furaje şi se tratează ca sublot separat. În cazul în care nu este posibilă separarea furajului în subloturi separate, el se eşantionează ca un singur lot. În astfel de cazuri, se menţionează acest fapt în raportul de eşantionare.
În cazul în care un furaj eşantionat în conformitate cu dispoziţiile prezentului regulament este identificat ca neîndeplinind cerinţele UE şi face parte dintr-un lot de furaje din aceeaşi clasă sau având aceeaşi descriere, se presupune că rezultatele sunt valabile pentru toate furajele din acel lot, cu excepţia cazului în care, în urma unei evaluări detaliate, nu există nicio dovadă că restul lotului nu satisface cerinţele UE.
Eşantionarea poate include, de asemenea, furajele oferite spre vânzare de către operatorii din sectorul hranei pentru animale prin mijloace de comunicare la distanţă în conformitate cu articolul 11 alineatul (3) din Regulamentul (CE) nr. 767/2009 al Parlamentului European şi al Consiliului (1). Eşantionarea furajelor oferite spre vânzare prin mijloace de comunicare la distanţă face, în principiu, obiectul punctelor prevăzute în prezenta anexă. Aspectele specifice ale eşantionării în cazul eşantioanelor din vânzare la distanţă sunt descrise la punctul 11.
(1)Regulamentul (CE) nr. 767/2009 al Parlamentului European şi al Consiliului din 13 iulie 2009 privind introducerea pe piaţă şi utilizarea furajelor, de modificare a Regulamentului (CE) nr. 1831/2003 al Parlamentului European şi al Consiliului şi de abrogare a Directivei 79/373/CEE a Consiliului, a Directivei 80/511/CEE a Comisiei, a Directivelor 82/471/CEE, 83/228/CEE, 93/74/CEE, 93/113/CE şi 96/25/CE ale Consiliului şi a Deciziei 2004/217/CE a Comisiei (JO L 229, 1.9.2009, p. 1).
2.DEFINIŢII
- Lot: o cantitate identificabilă de furaj având anumite caracteristici comune confirmate, precum originea, varietatea, tipul ambalajului, ambalatorul, expeditorul sau etichetarea şi, în cazul unui proces de producţie, o unitate de producţie provenind dintr-o singură instalaţie care utilizează parametri de producţie uniformi sau mai multe astfel de unităţi, dacă sunt produse în mod continuu şi depozitate împreună.
- Lot eşantionat: un lot sau o parte identificată din lot sau sublot.
- Eşantion sigilat: un eşantion sigilat astfel încât să se împiedice orice acces la eşantion fără a se distruge sau a se elimina sigiliul.
- Eşantion elementar: o cantitate prelevată dintr-un punct al lotului eşantionat.
- Eşantion agregat: o combinaţie de eşantioane elementare prelevate din acelaşi lot eşantionat.
- Eşantion redus: o parte dintr-un eşantion agregat, obţinută din acesta printr-un proces de reducere reprezentativă.
- Eşantion final: o parte din eşantionul agregat (amestecat), din eşantionul redus sau din eşantionul agregat omogenizat, în funcţie de tipul de control (a se vedea punctul 9.4).
- Eşantion de laborator: un eşantion destinat laboratorului (astfel cum este primit de laborator) şi care poate fi eşantionul final, redus sau agregat.
- Eşantion din vânzare la distanţă: un eşantion dintr-un lot de furaje oferite spre vânzare prin mijloace de comunicare la distanţă.
3.DISPOZIŢII GENERALE
- Eşantioanele se prelevează de către personal autorizat în acest sens de către autoritatea competentă.
- Pentru un eşantion din vânzare la distanţă, o cantitate de furaj este solicitată operatorului din sectorul hranei pentru animale de către autoritatea competentă prin mijloace de comunicare la distanţă.
- Eşantionul trebuie să fie sigilat astfel încât să se împiedice orice acces la eşantion fără a se distruge sau a se elimina sigiliul.
Marcajul sigiliului trebuie să poată fi identificat în mod clar şi vizibil.
- Identificarea eşantionului: eşantionul trebuie să poarte un marcaj de neşters şi trebuie să fie identificat astfel încât să existe o legătură lipsită de ambiguitate cu raportul de eşantionare.
- Din fiecare eşantion agregat sau redus se prelevează următoarele eşantioane finale: unul pentru control (asigurarea respectării legislaţiei) şi unul pentru operatorul din sectorul hranei pentru animale (apărare). În final, poate fi prelevat încă un eşantion final pentru referinţă. În cazul în care eşantionul agregat complet se omogenizează, eşantioanele finale sunt prelevate din eşantionul agregat omogenizat, cu excepţia cazului în care această procedură este contrară reglementărilor statelor membre în ceea ce priveşte dreptul operatorului din sectorul hranei pentru animale.
- În conformitate cu articolul 15 alineatele (1) şi (2) din Regulamentul (UE) 2017/625, atunci când acest lucru este necesar pentru efectuarea eşantionării oficiale, operatorii din sectorul hranei pentru animale, la cererea autorităţilor competente:
- acordă personalului autorităţilor competente acces la echipamentele aflate sub controlul lor, inclusiv, atunci când este necesar, pun la dispoziţie echipament adecvat de eşantionare şi echipamentul individual de protecţie;
- acordă asistenţă personalului autorităţilor competente şi cooperează cu acesta pentru a permite eşantionarea, inclusiv punerea la dispoziţia personalului autorităţilor competente a furajelor.
4.APARATURA
4.1.Aparatura de prelevare de eşantioane trebuie să fie realizată din materiale care nu contaminează produsele de eşantionat. Aparatura care este destinată a fi utilizată de mai multe ori trebuie să fie uşor de curăţat pentru a evita contaminarea încrucişată.
4.2.Aparatura recomandată pentru prelevarea eşantioanelor din furaje solide
4.2.1.Prelevarea manuală

4.2.1.1.

Lopată plată cu margini verticale.

4.2.1.2.

Sondă de eşantionare cu o fantă lungă sau compartimentată. Dimensiunile sondei de eşantionare trebuie să fie adecvate caracteristicilor lotului eşantionat (adâncimea recipientului, dimensiunile sacului etc.) şi dimensiunilor particulelor furajului.

În cazul în care sonda de eşantionare are mai multe orificii, pentru a se asigura faptul că eşantionul este prelevat în diferite locuri de-a lungul sondei, orificiile ar trebui să fie separate prin compartimente sau orificii eşalonate secvenţial.

4.2.2.Prelevarea mecanică
Pentru prelevarea de eşantioane din furajele în mişcare poate fi utilizată aparatură mecanică adecvată. Aparatul mecanic este considerat adecvat dacă cel puţin întreaga secţiune a fluxului este eşantionată.
Prelevarea de eşantioane din furajele în mişcare (la rate de debit ridicat) poate fi efectuată de prelevatoare automate.
4.2.3.Separator
În cazul în care acest lucru este posibil şi oportun, aparatura destinată divizării eşantionului în părţi aproximativ egale trebuie să fie utilizată pentru prepararea eşantioanelor reduse în mod reprezentativ.
5.CERINŢE CANTITATIVE ÎN CEEA CE PRIVEŞTE NUMĂRUL DE EŞANTIOANE ELEMENTARE
- Cerinţele cantitative la punctele 5.1 şi 5.2 în ceea ce priveşte numărul de eşantioane elementare sunt aplicabile pentru loturile eşantionate cu dimensiuni de până la maximum 500 de tone şi care pot fi eşantionate în mod reprezentativ. Procedura de eşantionare descrisă este, de asemenea, valabilă pentru cantităţi mai mari decât dimensiunea maximă a lotului eşantionat cu condiţia ca numărul maxim de eşantioane elementare indicate în următoarele tabele la punctele 5.1.1, 5.1.3 şi 5.1.5 să fie ignorată, numărul de eşantioane elementare fiind determinat prin formula cu rădăcina pătrată prevăzută în partea corespunzătoare a procedurii (a se vedea punctul 5.3) şi dimensiunea minimă a eşantionului agregat să fi crescut proporţional. Acest lucru nu împiedică împărţirea unui lot mare în subloturi mai mici şi eşantionarea fiecărui sublot în conformitate cu procedura descrisă la punctele 5.1 şi 5.2.
- Dimensiunea lotului eşantionat trebuie să permită eşantionarea fiecăreia dintre părţile sale constituente.
- Pentru loturile sau subloturile foarte mari (> 500 de tone) şi pentru loturile care sunt transportate sau depozitate în aşa fel încât eşantionarea nu poate fi efectuată în conformitate cu procedura de eşantionare prevăzută la punctele 5.1 şi 5.2 de la prezentul punct, trebuie aplicată procedura de eşantionare prevăzută la punctul 5.3.
- În cazul eşantioanelor din vânzările la distanţă, de obicei autoritatea competentă nu cunoaşte dimensiunea lotului din care se solicită cantitatea. Prin urmare, procedura menţionată la punctele 5.1 şi 5.2 nu poate fi utilizată. În acest caz, se aplică procedura descrisă la punctul 11.
- În cazul în care legislaţia impune operatorului din sectorul hranei pentru animale să se conformeze prezentului regulament în cadrul unui sistem de monitorizare obligatorie, operatorul din sectorul hranei pentru animale se poate abate de la cerinţele cantitative prevăzute la prezentul punct pentru a lua în considerare caracteristicile operaţionale, cu condiţia ca el să fi demonstrat, într-un mod satisfăcător pentru autoritatea competentă, echivalenţa procedurii de eşantionare în ceea ce priveşte reprezentativitatea şi după autorizarea din partea autorităţii competente.
- În cazuri excepţionale, dacă nu este posibil să se aplice metoda de eşantionare prevăzută în ceea ce priveşte cerinţele cantitative din cauza unei deteriorări comerciale inacceptabile a lotului (din cauza formelor ambalajului, a mijlocului de transport, a modului de depozitare etc.), se poate aplica o metodă alternativă de eşantionare cu condiţia ca aceasta să fie cât mai reprezentativă posibil şi să fie descrisă şi documentată integral.
5.1.Cerinţe cantitative în ceea ce priveşte eşantioanele elementare legate de controlul substanţelor sau produselor uniform distribuite în furaje.
5.1.1.Furaje vrac solide

Dimensiunea lotului eşantionat

Număr minim de eşantioane elementare

< = 2,5 tone

7

> 2,5 tone

V (20 înmulţit cu numărul de tone care compun lotul eşantionat) (*1), până la 40 de eşantioane elementare

(*1) În cazul în care numărul obţinut este o fracţie, aceasta se rotunjeşte la numărul întreg imediat superior.

5.1.2.Furaje vrac lichide

Dimensiunea lotului eşantionat

Număr minim de eşantioane elementare

< = 2,5 tone sau < = 2 500 de litri

4 (*2)

(*2) În cazul în care nu este posibil să se obţină omogenizarea lichidului, numărul de eşantioane elementare trebuie mărit.

> 2,5 tone sau > 2 500 de litri

7 (*2)

5.1.3.Furaje ambalate
Furajele (solide şi lichide) pot fi ambalate în pungi, saci, cutii de metal, cuve etc. care sunt menţionate în următorul tabel ca unităţi. Unităţile mari (> = 500 kg sau litri) trebuie să fie eşantionate în conformitate cu dispoziţiile prevăzute pentru furaje vrac (a se vedea punctele 5.1.1 şi 5.1.2)

Dimensiunea lotului eşantionat

Număr minim de unităţi din care trebuie prelevat (cel puţin) un eşantion elementar (*3)

(*3) În cazul în care deschiderea unei unităţi ar putea afecta analiza (de exemplu, în cazul furajelor umede perisabile), un eşantion elementar va fi reprezentat de unitatea nedeschisă.

1 -20 de unităţi

1 unitate (*4)

(*4) Pentru unităţile al căror conţinut nu depăşeşte 1 kg sau un litru, un eşantion elementar este reprezentat de conţinutul unei unităţi originale.

21 -150 de unităţi

3 unităţi (*4)

151 -400 de unităţi

5 unităţi (*4)

> 400 de unităţi

1/4 din V (numărul de unităţi care compun lotul eşantionat) (*5), până la 40 de unităţi

(*5) În cazul în care numărul obţinut este o fracţie, aceasta se rotunjeşte la numărul întreg imediat superior.

5.1.4.Blocuri de furaje şi brichete minerale
Minimum un bloc sau o brichetă trebuie eşantionat(ă) per lot eşantionat de 25 de unităţi, până la un maximum de patru blocuri sau brichete.
În cazul blocurilor sau brichetelor care nu cântăresc mai mult de 1 kg fiecare, un eşantion elementar este reprezentat de conţinutul unui bloc sau al unei brichete.
5.1.5.Furaje grosiere/nutreţ

Dimensiunea lotului eşantionat

Număr minim de eşantioane elementare (*6)

(*6) Este recunoscut faptul că în anumite situaţii (de exemplu, furaje însilozate) nu este posibil să se preleveze eşantioanele elementare necesare, fără a cauza daune inacceptabile pentru lot. În astfel de situaţii se poate aplica o metodă alternativă de eşantionare, iar un ghid pentru eşantionarea unor astfel de loturi a fost elaborat şi este disponibil la următorul link https://food.ec.europa.eu/system/files/2016-10/animal-feed-guidance_documents_691_2013_en.pdf

< = 5 tone

5

> 5 tone

V (5 înmulţit cu numărul de tone care compun lotul eşantionat) (*7), până la 40 de eşantioane elementare

(*7) În cazul în care numărul obţinut este o fracţie, aceasta se rotunjeşte la numărul întreg imediat superior.

5.2.Cerinţe cantitative în ceea ce priveşte eşantioanele elementare legate de controlul constituenţilor sau substanţelor care pot fi distribuite neuniform în masa de furaje
Aceste cerinţe cantitative în ceea ce priveşte eşantioanele elementare trebuie utilizate în următoarele situaţii:
- controlul aflatoxinelor, al cornului-secarei, al altor micotoxine şi impurităţi botanice dăunătoare în materiile prime furajere;
- controlul contaminării încrucişate printr-un constituent, inclusiv material MG, sau substanţă pentru care este preconizată o distribuţie neuniformă în furaje.
În cazul în care autoritatea de control are serioase suspiciuni privind apariţia unei astfel de distribuţii neuniforme şi în cazul unei contaminări încrucişate printr-un constituent sau printr-o substanţă într-un furaj combinat, se pot aplica cerinţele cantitative, astfel cum sunt prevăzute în următorul tabel.

Dimensiunea lotului eşantionat

Număr minim de eşantioane elementare

< 80 de tone

A se vedea cerinţe cantitative de la punctul 5.1. Numărul de eşantioane elementare care trebuie prelevate trebuie să fie înmulţit cu 2,5.

> = 80 de tone

100

5.3.Cerinţe cantitative în ceea ce priveşte eşantioanele elementare în cazul loturilor de dimensiuni foarte mari
În cazul loturilor mari eşantionate (loturi eşantionate > 500 de tone), numărul de eşantioane elementare care trebuie prelevate = 40 de eşantioane elementare + V tone în ceea ce priveşte controlul substanţelor sau produselor distribuite uniform în masa de furaje sau 100 de eşantioane elementare + V tone în ceea ce priveşte controlul constituenţilor sau substanţelor care pot fi distribuite neuniform în furaje.
6.CERINŢE CANTITATIVE ÎN CEEA CE PRIVEŞTE EŞANTIONUL AGREGAT
Este necesar un singur eşantion agregat per lot eşantionat.

Natura furajelor

Dimensiunea minimă a eşantionului agregat (*8) (*9)

(*8) În cazul în furajele eşantionate au o valoare ridicată, se prelevează o cantitate mai mică de eşantion agregat cu condiţia ca aceasta să fie descrisă şi documentată în raportul de eşantionare.

(*9) În conformitate cu dispoziţiile Regulamentului (UE) 619/2011 al Comisiei din 24 iunie 2011 de stabilire a metodelor de eşantionare şi analiză pentru controlul oficial al furajelor în vederea detectării materialului modificat genetic pentru care o procedură de autorizare este în curs de desfăşurare sau a cărui autorizare a expirat (JO L 166, 25.6.2011, p. 9), eşantionul agregat pentru controlul prezenţei materialului modificat genetic trebuie să conţină cel puţin 35 000 de seminţe/boabe. Aceasta înseamnă că pentru porumb dimensiunea eşantionului agregat trebuie să fie de cel puţin 10,5 kg şi pentru soia de 7 kg. Pentru alte seminţe şi boabe, precum orzul, meiul, ovăzul, orezul, secara, grâul şi seminţele de rapiţă, dimensiunea eşantionului agregat de 4 kg corespunde unui număr de peste 35 000 de seminţe/boabe.

6.1.

Furaje vrac

4 kg

6.2.

Furaje ambalate:

4 kg (*10)

(*10) În cazul furajelor ambalate, poate fi posibil, de asemenea, să nu se atingă dimensiunea de 4 kg pentru eşantionul agregat în funcţie de dimensiunea unităţilor individuale.

6.3.

Furaje lichide sau semilichide:

4 litri

6.4.

Blocuri de furaje sau brichete minerale:

6.4.1.

cântărind mai mult de 1 kg fiecare

4 kg

6.4.2.

cântărind cel mult 1 kg fiecare

greutatea a patru blocuri sau brichete originale

6.5.

Furaje grosiere/nutreţ

4 kg (*11)

(*11) În cazul în care se referă la furajele grosiere sau la nutreţ cu o densitate specifică redusă (de exemplu, fân, paie), eşantionul agregat trebuie să aibă o dimensiune minimă de 1 kg.

7.CERINŢE CANTITATIVE ÎN CEEA CE PRIVEŞTE EŞANTIOANELE FINALE
Eşantioane finale
Este necesară analiza a cel puţin un eşantion final. Cantitatea din eşantionul final de analizat nu poate fi mai mică decât cantităţile de mai jos:

Furaje solide

500 g (*12) (*13) (*14) (*15)

(*12) În conformitate cu dispoziţiile Regulamentului (UE) nr. 619/2011, eşantionul final pentru controlul prezenţei materialului modificat genetic trebuie să conţină cel puţin 10 000 de seminţe/boabe. Aceasta înseamnă că pentru porumb dimensiunea eşantionului final trebuie să fie de cel puţin 3 000 g şi pentru soia de 2 000 g. Pentru alte seminţe şi boabe, precum orzul, meiul, ovăzul, orezul, secara, grâul şi seminţele de rapiţă, dimensiunea eşantionului final de 500 g corespunde unui număr de peste 10 000 de seminţe/boabe.

(*13) În cazul în care dimensiunea eşantionului agregat este semnificativ mai mică de 4 kg sau litri (a se vedea notele de subsol de la punctul 6), se poate preleva, de asemenea, o cantitate mai mică de eşantion final, cu condiţia ca aceasta să fie descrisă şi documentată în raportul de eşantionare.

(*14) În cazul eşantionării leguminoaselor, boabelor de cereale şi fructelor nucifere pentru determinarea reziduurilor de pesticide, dimensiunea minimă a eşantionului final este de 1 kg în conformitate cu dispoziţiile Directivei 2002/63/CE a Comisiei din 11 iulie 2002 de stabilire a metodelor comunitare de prelevare de probe pentru controlul oficial al reziduurilor de pesticide de pe şi din produsele de origine vegetală şi animală şi de abrogare a Directivei 79/700/CEE (JO L 187, 16.7.2002, p. 30).

(*15) În cazul examinării prin inspecţie vizuală sau prin microscopie, cantitatea eşantionului final pentru examinare este de 1 kg.

Furaje lichide sau semilichide

500 ml (*12)

8.METODA DE EŞANTIONARE PENTRU LOTURI FOARTE MARI SAU LOTURI DEPOZITATE SAU TRANSPORTATE ÎNTR-UN MOD CARE NU PERMITE EŞANTIONAREA ÎNTREGULUI LOT
8.1.Principii generale
În cazul în care modul de transport sau de depozitare a unui lot nu permite prelevarea de eşantioane elementare din întregul lot, eşantionarea unor astfel de loturi trebuie, de preferinţă, să fie efectuată atunci când lotul se află în flux.
În cazul antrepozitelor mari destinate să stocheze furajele, operatorii trebuie să fie încurajaţi să instaleze echipamente în antrepozit care să permită eşantionarea (automată) a întregului lot stocat.
În cazul aplicării procedurilor de eşantionare prevăzute la prezentul punct, operatorul din sectorul hranei pentru animale sau reprezentantul său este informat cu privire la procedura de eşantionare. În cazul în care procedura de eşantionare este pusă sub semnul întrebării de către operatorul din sectorul hranei pentru animale sau de către reprezentantul acestuia, operatorul din sectorul hranei pentru animale sau reprezentantul acestuia va permite autorităţii competente să preleveze eşantioane din întregul lot pe cheltuiala sa.
8.2.Loturile mari transportate pe cale navală
8.2.1.Eşantionarea dinamică a loturilor mari transportate pe cale navală
Eşantionarea loturilor mari în nave se efectuează de preferinţă în timp ce produsul este în flux (eşantionare dinamică).
Eşantionarea se face per stivă (entitate care poate fi separată fizic). Stivele sunt, totuşi, golite parţial una după alta, astfel încât separarea fizică iniţială nu mai există după transferul în instalaţiile de depozitare. Prin urmare, eşantionarea poate fi efectuată în funcţie de separarea fizică iniţială sau în funcţie de separarea după transferul în instalaţiile de depozitare.
Descărcarea unei nave poate dura câteva zile. În mod normal, eşantionarea trebuie să fie efectuată la intervale de timp regulate pe întreaga durată a descărcării. Cu toate acestea, nu este întotdeauna posibil sau adecvat pentru un inspector oficial să fie prezent pentru eşantionare pe parcursul întregii operaţiuni de descărcare. Prin urmare, se permite eşantionarea unei părţi (lot eşantionat) din întregul lot. Numărul de eşantioane elementare este stabilit luând în considerare dimensiunea lotului eşantionat.
În cazul eşantionării unei părţi dintr-un lot de furaje din aceeaşi clasă sau având aceeaşi descriere şi în cazul în care acea parte a lotului este identificată ca nesatisfăcând cerinţele UE, se presupune că rezultatele sunt valabile pentru toate furajele din acel lot, cu excepţia cazului în care, în urma unei evaluări detaliate, nu există nicio dovadă că restul lotului nu satisface cerinţele UE.
Chiar dacă eşantionul oficial este prelevat automat, prezenţa unui inspector este necesară. Cu toate acestea, în cazul în care se efectuează o prelevare automată cu parametri prestabiliţi care nu pot fi schimbaţi în cursul eşantionării şi eşantioanele elementare sunt colectate într-un recipient închis, împiedicând orice posibilă fraudă, prezenţa unui inspector este necesară numai la începutul eşantionării, de fiecare dată când recipientul în care se află eşantioanele trebuie să fie schimbat şi la sfârşitul eşantionării.
8.2.2.Eşantionarea loturilor transportate pe cale navală prin eşantionare statică
În cazul în care eşantionarea se efectuează în mod static, trebuie aplicată aceeaşi procedură ca şi cea prevăzută pentru spaţiile de depozitare (silozuri) accesibile din partea de sus (a se vedea punctul 8.4.1).
Eşantionarea trebuie să se efectueze pe partea accesibilă (de sus) din lot/stivă. Numărul de eşantioane elementare este stabilit luând în considerare dimensiunea lotului eşantionat. În cazul eşantionării unei părţi dintr-un lot de furaje din aceeaşi clasă sau având aceeaşi descriere şi în cazul în care acea parte a lotului este identificată ca nesatisfăcând cerinţele UE, se presupune că rezultatele sunt valabile pentru toate furajele din acel lot, cu excepţia cazului în care, în urma unei evaluări detaliate, nu există nicio dovadă că restul lotului nu satisface cerinţele UE.
8.3.Eşantionarea loturilor mari depozitate în antrepozite
Eşantionarea trebuie să se efectueze pe partea accesibilă a lotului. Numărul de eşantioane elementare este stabilit luând în considerare dimensiunea lotului eşantionat. În cazul eşantionării unei părţi dintr-un lot de furaje din aceeaşi clasă sau având aceeaşi descriere şi în cazul în care acea parte a lotului este identificată ca nesatisfăcând cerinţele UE, se presupune că rezultatele sunt valabile pentru toate furajele din acel lot, cu excepţia cazului în care, în urma unei evaluări detaliate, nu există nicio dovadă că restul lotului nu satisface cerinţele UE.
8.4.Prelevarea de eşantioane din spaţii de depozitare (silozuri)
8.4.1.Prelevarea de eşantioane din silozuri (uşor) accesibile din partea de sus
Eşantionarea trebuie să se efectueze pe partea accesibilă a lotului. Numărul de eşantioane elementare este stabilit luând în considerare dimensiunea lotului eşantionat. În cazul eşantionării unei părţi dintr-un lot de furaje din aceeaşi clasă sau având aceeaşi descriere şi în cazul în care acea parte a lotului este identificată ca nesatisfăcând cerinţele UE, se presupune că rezultatele sunt valabile pentru toate furajele din acel lot, cu excepţia cazului în care, în urma unei evaluări detaliate, nu există nicio dovadă că restul lotului nu satisface cerinţele UE.
8.4.2.Prelevarea de eşantioane din silozuri care nu sunt accesibile din partea de sus (silozuri închise)
8.4.2.1.Silozuri care nu sunt accesibile din partea de sus (silozuri închise) cu dimensiunea > 100 de tone
Furajele depozitate în astfel de silozuri nu pot fi eşantionate în mod static. Prin urmare, în cazul în care furajele din siloz trebuie să fie eşantionate şi nu există nicio posibilitate de a deplasa lotul, trebuie să se ajungă la un acord cu operatorul conform căruia acesta trebuie să informeze inspectorul cu privire la momentul în care silozul va fi descărcat pentru a permite eşantionarea atunci când furajul este în flux.
8.4.2.2.Silozuri care nu sunt accesibile din partea de sus (silozuri închise) cu dimensiunea < 100 de tone
Procedura de eşantionare implică introducerea într-un recipient a unei cantităţi de 50-100 kg şi prelevarea eşantionului din aceasta. Dimensiunea eşantionului agregat corespunde cu întregul lot, iar numărul de eşantioane elementare este legat de cantitatea din siloz introdusă într-un recipient pentru eşantionare. În cazul eşantionării unei părţi dintr-un lot de furaje din aceeaşi clasă sau având aceeaşi descriere şi în cazul în care acea parte a lotului este identificată ca nesatisfăcând cerinţele UE, se presupune că rezultatele sunt valabile pentru toate furajele din acel lot, cu excepţia cazului în care, în urma unei evaluări detaliate, nu există nicio dovadă că restul lotului nu satisface cerinţele UE.
8.5.Eşantionarea furajelor vrac în recipiente mari închise
Adesea, astfel de loturi pot fi eşantionate numai atunci când sunt descărcate. În anumite cazuri nu este posibil să se descarce loturile la punctul de import sau de control şi, prin urmare, eşantionarea ar trebui să aibă loc atunci când aceste recipiente sunt descărcate.
9.INSTRUCŢIUNI PENTRU PRELEVAREA, PREPARAREA ŞI AMBALAREA EŞANTIOANELOR
9.1.Generalităţi
Eşantioanele trebuie prelevate şi preparate fără întârzieri inutile, luând în considerare precauţiile necesare pentru a garanta că produsul nu este nici modificat, nici contaminat. Instrumentele, suprafeţele de lucru şi recipientele destinate colectării de eşantioane trebuie să fie curate şi uscate.
9.2.Eşantioane elementare
Eşantioanele elementare trebuie prelevate în mod aleatoriu şi distribuite uniform din întregul lot eşantionat, iar dimensiunile lor trebuie să fie aproximativ egale.
Dimensiunea eşantionului elementar este de cel puţin 100 de grame sau 25 de grame în cazul furajelor grosiere sau al nutreţului cu o densitate specifică redusă.
În cazul în care, în conformitate cu normele pentru procedura de eşantionare stabilite la punctul 8, trebuie prelevate mai puţin de 40 de eşantioane elementare, dimensiunea eşantioanelor elementare se determină în funcţie de dimensiunea necesară a eşantionului agregat (a se vedea punctul 6).
În cazul eşantionării loturilor de dimensiuni reduse de furaje ambalate în cazul cărora, conform cerinţelor cantitative, trebuie prelevat un număr limitat de eşantioane elementare, un eşantion elementar este reprezentat de conţinutul unei unităţi originale al cărei conţinut nu depăşeşte 1 kg sau un litru.
În cazul eşantionării furajelor ambalate compuse din unităţi mici (de exemplu, < 250 g), dimensiunea eşantionului elementar depinde de dimensiunea unităţii.
În cazul eşantioanelor din vânzările la distanţă, dimensiunea eşantionului elementar depinde de dimensiunea unităţii şi poate conţine, de asemenea, mai puţin de 100 g sau 100 ml în cazuri individuale.
9.2.1.Furaje vrac
După caz, eşantionarea poate fi efectuată atunci când lotul eşantionat este în flux (încărcare sau descărcare).
9.2.2.Furaje ambalate
După selectarea numărului necesar de unităţi pentru eşantionare, conform indicaţiilor de la punctul 5, o parte a conţinutului fiecărei unităţi se îndepărtează folosind o sondă sau o lopată. Dacă este necesar, eşantioanele se prelevează după ce unităţile au fost golite separat.
9.2.3.Furaje lichide sau semilichide, omogene sau omogenizabile
După selectarea pentru eşantionare a numărului necesar de unităţi, în conformitate cu indicaţiile de la punctul 5, conţinutul se omogenizează, dacă este necesar, şi se prelevează o cantitate din fiecare unitate.
Eşantioanele elementare pot fi prelevate la descărcarea conţinutului.
9.2.4.Furaje lichide sau semilichide, neomogenizabile
După selectarea pentru eşantionare a numărului necesar de unităţi, în conformitate cu indicaţiile de la punctul 5, se prelevează eşantioane de la diferite niveluri.
Eşantioanele se pot preleva şi în timpul descărcării conţinutului, dar primele fracţiuni se îndepărtează.
În oricare dintre cazuri, volumul total prelevat nu trebuie să fie mai mic de 10 litri.
9.2.5.Blocuri de furaje şi brichete minerale
După selectarea pentru eşantionare a numărului necesar de blocuri sau brichete, conform indicaţiilor de la punctul 5, se prelevează o parte din fiecare bloc sau brichetă. În cazul în care există suspiciuni legate de un bloc sau de o brichetă neomogen(ă), întregul bloc sau întreaga brichetă poate fi considerat(ă) ca eşantion.
În cazul blocurilor sau brichetelor care nu cântăresc mai mult de 1 kg fiecare, un eşantion elementar este reprezentat de conţinutul unui bloc sau al unei brichete.
9.3.Prepararea eşantioanelor agregat
Eşantioanele elementare se amestecă pentru a forma un singur eşantion agregat.
9.4.Prepararea eşantioanelor finale
Materialul din eşantionul agregat se amestecă cu grijă (2).
(2)Orice aglomerări se destramă (dacă este cazul, prin separarea lor de eşantion, urmată de reîncorporarea lor în eşantion).
Fiecare eşantion este introdus într-un recipient corespunzător. Se iau toate precauţiile necesare pentru evitarea oricărei modificări de compoziţie a eşantionului, a contaminării sau a falsificării, care ar putea avea loc în timpul transportării sau depozitării.
9.4.1.Substanţe distribuite uniform
În cazul controlului constituenţilor sau substanţelor uniform distribuite în întregul furaj, eşantionul agregat poate fi redus în mod reprezentativ la cel puţin 2,0 kg sau 2,0 l (eşantion redus) (3), de preferinţă prin utilizarea fie a unui separator mecanic, fie a unui separator automat. Pentru controlul prezenţei de reziduuri de pesticide în leguminoase, boabe de cereale şi fructe nucifere, dimensiunea minimă a eşantionului redus este de 3 kg. În cazul în care natura furajului nu permite utilizarea unui separator sau separatorul nu este disponibil, eşantionul poate fi redus prin metoda sferturilor.
(3)Cu excepţia cazului în care este vorba de furaje grosiere sau de nutreţ cu o densitate specifică redusă.
Din eşantionul agregat sau din eşantioanele reduse se prelevează eşantioanele finale (pentru control, apărare şi, eventual, referinţă) de o dimensiune aproximativ egală, în conformitate cu cerinţele cantitative de la punctul 7.
9.4.2.Substanţe distribuite neuniform
În cazul controlului constituenţilor, inclusiv materialul modificat genetic sau substanţele care ar putea fi distribuite neuniform în furaje, eşantionul agregat trebuie să fie:
(i)complet omogenizat. Apoi, din eşantionul agregat omogenizat se prelevează eşantioanele finale (pentru control, apărare şi, eventual, referinţă) de o dimensiune aproximativ egală, în conformitate cu cerinţele cantitative de la punctul 7; sau
(ii)redus la cel puţin 2 kg sau 2 litri (4) prin utilizarea unui separator mecanic sau automat. Numai în cazul în care natura furajului nu permite utilizarea unui separator, eşantionul poate, dacă este necesar, să fie redus prin metoda sferturilor. Pentru controlul prezenţei materialului modificat genetic în temeiul Regulamentului (UE) nr. 619/2011, eşantionul redus trebuie să conţină cel puţin 35 000 de seminţe/boabe pentru a permite obţinerea eşantioanelor finale de cel puţin 10 000 de seminţe pentru asigurarea respectării legislaţiei, apărare şi, eventual, referinţă [a se vedea nota de subsol (**) de la punctul 6 şi nota de subsol (*) de la punctul 7].
(4)Cu excepţia cazului în care este vorba de furaje grosiere sau de nutreţ cu o densitate specifică redusă.
Din eşantionul redus se prelevează eşantioanele finale de o dimensiune aproximativ egală, în conformitate cu cerinţele cantitative de la punctul 7.
9.5.Ambalarea eşantioanelor
Recipientele sau ambalajele se sigilează şi se etichetează astfel încât să nu poată fi deschise fără a deteriora sigiliul. Eticheta completă se încorporează în sigiliu. În mod alternativ, eşantionul poate fi pus într-un recipient care poate fi închis astfel încât să nu poată fi deschis fără a deteriora în mod ireversibil recipientul, evitând reutilizarea recipientului.
9.6.Expedierea eşantioanelor către laborator
Eşantionul trebuie să fie trimis fără întârzieri inutile la laboratorul analitic desemnat, împreună cu informaţiile necesare laborantului.
10.PROCESUL-VERBAL DE EŞANTIONARE
Pentru fiecare eşantion se întocmeşte un proces-verbal, care permite identificarea fără ambiguităţi a lotului eşantionat şi a dimensiunii acestuia.
Procesul-verbal trebuie să menţioneze, de asemenea, orice abatere de la procedura de eşantionare, astfel cum se prevede în prezentul regulament.
Procesul-verbal trebuie pus atât la dispoziţia laboratorului de control oficial, cât şi la dispoziţia operatorului din sectorul hranei pentru animale şi/sau a laboratorului desemnat de operatorul din sectorul hranei pentru animale.
11.EŞANTION DIN VÂNZARE LA DISTANŢĂ
- Pentru un eşantion din vânzare la distanţă, furajul se solicită operatorului din sectorul hranei pentru animale prin mijloace de comunicare la distanţă. În acest caz, atunci când solicită furajul, autoritatea competentă nu trebuie să se identifice cu o identitate oficială operatorului din sectorul hranei pentru animale şi poate utiliza o identitate falsă.
- Eşantionul agregat şi eşantioanele finale ale eşantionului din vânzarea la distanţă trebuie prelevate imediat după primirea transportului de către persoane autorizate în acest scop. Pentru generarea eşantionului agregat, trebuie prelevat un număr adecvat de eşantioane elementare aleatorii şi uniform distribuite din cantitatea totală obţinută şi amestecate/omogenizate cu grijă, în conformitate, pe cât posibil, cu principiile stabilite la punctul 5 şi la punctele 9.2 şi 9.3. În cazul în care furajul este ambalat în unităţi individuale, trebuie să se obţină cel puţin 4 unităţi din care trebuie prelevat cel puţin un eşantion elementar. În cazul în care se demonstrează, de la caz la caz, că unităţile obţinute provin din loturi diferite, numărul de unităţi care trebuie eşantionate trebuie redus şi limitat la unităţile care provin din acelaşi lot. În cazul analizării eşantionului din vânzare la distanţă pentru constituenţi sau substanţe care sunt distribuite neuniform în furaje, numărul de eşantioane elementare trebuie să fie de cel puţin 2,5 ori mai mare decât cel al eşantioanelor analizate pentru substanţe distribuite uniform în furaj.
Din eşantionul agregat se prelevează apoi eşantioanele finale corespunzătoare (pentru control, pentru apărare şi, eventual, pentru referinţă) în conformitate, în măsura posibilului, cu principiile prevăzute la punctul 9.4, iar procesul-verbal de eşantionare indică faptul că eşantionul este un eşantion din vânzare la distanţă. Autoritatea competentă informează imediat operatorul din sectorul hranei pentru animale cu privire la eşantionare. Operatorul din sectorul hranei pentru animale este, de asemenea, informat că un eşantion (pentru apărare) este păstrat, atunci când este posibil, la dispoziţia sa de către autoritatea competentă, într-un loc specificat, în scopuri de apărare, sau este trimis operatorului din sectorul hranei pentru animale sau laboratorului desemnat de operatorul din sectorul hranei pentru animale în conformitate cu normele naţionale în vigoare.
În cazul în care eşantionul este trimis direct laboratorului oficial, eşantionul final trebuie preparat şi sigilat în laborator de către persoane autorizate în acest scop sau în prezenţa unor persoane autorizate în acest scop. Procesul-verbal de eşantionare a eşantionului din vânzarea la distanţă trebuie trimis imediat după formarea eşantioanelor finale autorităţii competente, care informează operatorul din sectorul hranei pentru animale cu privire la eşantionare.
Se consideră că respectiva cantitate furnizată autorităţii competente de către operatorul din sectorul hranei pentru animale reprezintă o parte dintr-un lot de hrană pentru animale din aceeaşi clasă sau cu aceeaşi descriere. În conformitate cu articolul 15 din Regulamentul (CE) nr. 178/2002 al Parlamentului European şi al Consiliului (5), în cazul în care acea parte a lotului este identificată ca nesatisfăcând cerinţele UE, se presupune, şi în cazul unui eşantion din vânzare la distanţă, că rezultatele sunt valabile pentru toate furajele din acel lot, cu excepţia cazului în care, în urma unei evaluări detaliate (după caz, în cadrul unei inspecţii la faţa locului), se constată că nu există nicio dovadă că restul lotului nu satisface cerinţele UE.
(5)Regulamentul (CE) nr. 178/2002 al Parlamentului European şi al Consiliului din 28 ianuarie 2002 de stabilire a principiilor şi a cerinţelor generale ale legislaţiei alimentare, de instituire a Autorităţii Europene pentru Siguranţa Alimentară şi de stabilire a procedurilor în domeniul siguranţei produselor alimentare (JO L 31, 1.2.2002, p. 1)."
ANEXA II:
"- ANEXA II: DISPOZIŢII GENERALE PRIVIND METODELE DE ANALIZĂ A FURAJELOR
(A)PREPARAREA EŞANTIOANELOR PENTRU ANALIZĂ
1.Obiectiv
Procedurile descrise în prezenta anexă se referă la prepararea pentru analiză a eşantioanelor trimise laboratoarelor de control după eşantionare conform dispoziţiilor prevăzute în anexa I.
Eşantioanele de laborator trebuie pregătite astfel încât cantităţile prelevate, astfel cum se prevede în metodele de analiză, să fie omogene şi reprezentative pentru eşantioanele finale.
În plus faţă de procedurile descrise în prezenta anexă, trebuie respectate orientările pentru prepararea eşantioanelor prevăzute în EN ISO 6498.
2.Măsuri de precauţie
Procedura de preparare a eşantioanelor care trebuie urmată este în funcţie de metodele de analiză care trebuie utilizate şi de constituenţii sau substanţele care trebuie controlate. De aceea, este extrem de important ca procedura de preparare a eşantioanelor urmată să fie adecvată pentru metoda de analiză utilizată şi pentru constituenţii sau substanţele care trebuie controlate.
Toate operaţiunile necesare trebuie să se efectueze astfel încât să se evite, pe cât posibil, contaminarea eşantionului şi modificarea compoziţiei acestuia.
Măcinarea, amestecarea şi cernerea se efectuează fără întârziere în condiţiile unei expuneri minime a eşantionului la aer şi la lumină. Nu se utilizează râşniţe sau aparate de măcinat care ar putea cauza încălzirea semnificativă a eşantionului.
Se recomandă ca furajele foarte sensibile la căldură să fie măcinate manual. Trebuie, de asemenea, să se asigure că aparatul în sine nu constituie o sursă de contaminare.
Omogenizarea eşantionului prin prepararea unei suspensii prin amestecare cu apă cu ajutorul unui mixer cu forfecare înaltă s-a dovedit a furniza, în anumite cazuri, subeşantioane mai omogene decât omogenizarea/măcinarea uscată, în special în cazul substanţelor chimice distribuite eterogen. Cu toate acestea, omogenizarea printr-o măcinare uscată suficientă ar putea oferi subeşantioane omogene.
În anumite cazuri, cum ar fi pentru determinarea cornului secarei, a impurităţilor botanice nocive etc., omogenizarea eşantionului nu poate fi realizată prin măcinare, ci prin amestecarea suficientă a eşantionului.
Dacă prepararea nu poate fi efectuată fără modificări semnificative ale conţinutului de umiditate al eşantionului, se determină conţinutul de umiditate înainte şi după preparare, în conformitate cu metoda menţionată în partea A din anexa III.
3.Procedura
3.1.Procedura generală
Alicota de test este prelevată din eşantionul final omogenizat. Formarea unui con şi selectarea de sferturi nu sunt recomandate deoarece ar putea să se formeze alicote de test care să dea naştere la erori de separare mari.
3.1.1.Furaje care pot fi măcinate ca atare
- Se amestecă eşantionul final şi se introduce într-un recipient adecvat, curat şi uscat, dotat cu un capac ermetic. Se amestecă din nou pentru a asigura o omogenizare completă, imediat înainte de prelevarea cantităţii pentru analiză (alicota de test).
3.1.2.Furaje care pot fi măcinate după uscare
- Dacă nu se specifică altfel în metodele de analiză, eşantionul final se deshidratează astfel încât umiditatea sa să se reducă la 8-12 %, în conformitate cu procedura de preuscare descrisă la punctul 4.3 din metoda de determinare a umidităţii menţionată în partea A din anexa III. Se procedează apoi în conformitate cu indicaţiile de la punctul 3.1.1.
3.1.3.Furaje lichide sau semilichide
- Se recoltează eşantionul final într-un recipient adecvat, curat şi uscat, dotat cu un sistem de închidere ermetică. Se amestecă cu grijă pentru a se asigura o omogenizare completă, imediat înainte de prelevarea cantităţii pentru analiză (alicota de test).
3.1.4.Alte furaje
- Eşantioanele finale care nu pot fi preparate conform uneia dintre procedurile indicate anterior se tratează prin orice altă procedură prin care se asigură că cantităţile prelevate pentru analiză (alicota de test) sunt omogene şi reprezentative pentru eşantioanele finale.
3.2.Proceduri specifice în cazul examinării prin inspecţie vizuală sau la microscop sau în cazurile în care întregul eşantion agregat se omogenizează
- În cazul unei examinări prin inspecţie vizuală (fără a recurge la microscop), întregul eşantion agregat sau final se utilizează pentru examinare.
- În cazul unei examinări microscopice, laboratorul poate reduce eşantionul agregat sau poate efectua o reducere ulterioară a eşantionului redus. Eşantioanele finale pentru apărare şi, eventual, pentru referinţă sunt prelevate în urma unei proceduri echivalente cu procedura urmată pentru eşantionul final pentru asigurarea respectării legislaţiei.
- În cazul în care întregul eşantion agregat este omogenizat, eşantioanele finale sunt prelevate din eşantionul agregat omogenizat.
- Pentru determinarea cornului secarei şi a impurităţilor botanice nocive, eşantionul final trebuie împărţit în două subeşantioane cu o greutate egală de aproximativ 500 de grame. Se examinează un subeşantion. În cazul în care rezultatul subeşantioanelor este mai mic sau egal cu 50 % (prag analitic) din nivelul maxim, eşantionul este conform cu nivelul maxim. Dacă rezultatul este mai mare de 50 % din nivelul maxim, este necesar să se examineze un alt subeşantion şi pentru verificarea conformităţii cu nivelul maxim se utilizează media rezultatului celor două subeşantioane.
4.Depozitarea eşantioanelor
Eşantioanele trebuie păstrate la o temperatură care să nu le altereze compoziţia. Eşantioanele destinate analizării prezenţei vitaminelor sau substanţelor foarte sensibile la lumină se păstrează în condiţii care să garanteze că eşantionul nu este afectat în mod negativ de lumină.
(B)DISPOZIŢII PRIVIND REACTIVII ŞI APARATURA UTILIZATE ÎN METODELE DE ANALIZĂ

1.

Dacă nu se specifică altfel în metodele de analiză, toţi reactivii destinaţi analizelor trebuie să fie puri din punct de vedere analitic (p.a.). Pentru analiza prezenţei oligoelementelor, puritatea reactivilor se controlează printr-un test martor. În funcţie de rezultatele obţinute, poate fi necesară o purificare suplimentară a reactivilor.

2.

Pentru orice operaţie care implică prepararea soluţiilor, diluţia, clătirea sau spălarea, menţionate în metodele de analiză şi pentru care nu există indicaţii referitoare la natura solventului sau diluantului, se utilizează apa. Ca regulă generală, se utilizează apă demineralizată sau distilată. În cazuri speciale, care sunt indicate în metodele de analiză, apa trebuie supusă unor proceduri de purificare speciale.

3.

Având în vedere dotarea uzuală a laboratoarelor de control, în metodele de analiză se menţionează doar instrumentele şi aparatura speciale sau care au utilizări specifice. Ele trebuie să fie curate, în special în cazul determinării unor cantităţi foarte mici de substanţe.

(C)APLICAREA METODELOR DE ANALIZĂ ŞI PREZENTAREA REZULTATELOR
1.Procedura de extracţie
O serie de metode determină o procedură de extracţie specifică. Ca regulă generală, se pot aplica alte proceduri de extracţie decât cea la care se face referire în metodă dacă s-a dovedit că procedura de extracţie utilizată are, pentru matricea analizată, o eficienţă de extracţie echivalentă cu procedura menţionată în metodă.
2.Procedura de purificare
O serie de metode determină o procedură de purificare specifică. Ca regulă generală, se pot aplica alte proceduri de purificare decât cea la care se face referire în metodă dacă s-a dovedit că procedura de purificare utilizată determină, pentru matricea analizată, rezultate analitice echivalente cu procedura menţionată în metodă.
3.Numărul de determinări
În cazul analizelor de detectare a substanţelor indezirabile, dacă rezultatul primei determinări este semnificativ (> 50 %) mai mic decât specificaţia de control, nu sunt necesare alte determinări, cu condiţia să fie aplicate procedurile calitative adecvate. În alte cazuri, o analiză duplicat (a doua determinare) este necesară pentru a exclude posibilitatea contaminării încrucişate interne sau a încurcării accidentale a eşantioanelor. Media celor două determinări este utilizată pentru o evaluare suplimentară.
În cazul controlului nivelurilor minime sau maxime de aditivi furajeri, dacă rezultatul primei determinări este peste nivelul minim sau sub nivelul maxim, nu sunt necesare alte determinări, cu condiţia să fie aplicate procedurile calitative adecvate. În alte cazuri, o analiză duplicat (a doua determinare) este necesară pentru a exclude posibilitatea contaminării încrucişate interne sau a încurcării accidentale a eşantioanelor. Media celor două determinări este utilizată pentru o evaluare suplimentară.
În cazul controlului privind conţinutul declarat pentru o anumită substanţă sau un anumit ingredient, dacă rezultatul primei determinări confirmă conţinutul declarat, adică rezultatul analizei se situează în interiorul intervalului de variaţie acceptat, nu sunt necesare alte determinări, cu condiţia să fie aplicate procedurile calitative adecvate. În alte cazuri, o analiză duplicat (a doua determinare) este necesară pentru a exclude posibilitatea contaminării încrucişate interne sau a încurcării accidentale a eşantioanelor. Media celor două determinări este utilizată pentru o evaluare suplimentară (rezultatul analitic mediu se încadrează sau nu în intervalul acceptabil de variaţie a conţinutului declarat).
În unele cazuri, acest interval acceptabil de variaţie este definit în legislaţie, cum ar fi Regulamentul (CE) nr. 767/2009 şi Regulamentul (UE) 2019/4 al Parlamentului European şi al Consiliului (1).
(1)Regulamentul (UE) 2019/4 al Parlamentului European şi al Consiliului din 11 decembrie 2018 privind fabricarea, introducerea pe piaţă şi utilizarea furajelor medicamentate, de modificare a Regulamentului (CE) nr. 183/2005 al Parlamentului European şi al Consiliului şi de abrogare a Directivei 90/167/CEE a Consiliului (JO L 4, 7.1.2019, p. 1).
4.Raportarea metodei de analiză utilizate
Raportul de analiză menţionează metoda de analiză utilizată.
5.Raportarea rezultatului analitic
Rezultatul analitic se exprimă în maniera indicată în metoda de analiză, cu un număr adecvat de zecimale şi se ajustează, dacă este cazul, la conţinutul de umiditate al eşantionului final înainte de preparare.
Majoritatea nivelurilor reglementate (de exemplu, nivelul maxim, nivelul minim) din legislaţia UE privind hrana pentru animale sunt stabilite în raport cu un furaj cu un conţinut de umiditate de 12 %. Prin urmare, în aceste cazuri, pentru a evalua rezultatul analitic măsurat pe eşantion în raport cu nivelul de reglementare, rezultatul analitic trebuie mai întâi împărţit la conţinutul de substanţă uscată al eşantionului (în %) înmulţit cu 88, astfel cum se indică în următoarea formulă:
unde:

Mc

:

conţinutul de umiditate al eşantionului (în %). 100 - Mc reprezintă, prin urmare, conţinutul de substanţă uscată al eşantionului (în %).

Rana

:

rezultatul analitic măsurat pe eşantion

R12 %

:

rezultat pentru un furaj cu un conţinut de umiditate de 12 %; a se evalua în raport cu nivelul de reglementare.

În plus, dacă sunt îndeplinite următoarele condiţii:
- rezultatul analizei este semnificativ (> 50 %) mai mic sau mai mare decât informaţiile de etichetare/specificaţiile care trebuie controlate (după caz, dacă trebuie controlat nivelul maxim, respectiv minim al informaţiilor de etichetare/specificaţii);
- conţinutul de umiditate al furajelor eşantionate este cunoscut şi se poate stabili faptul că corecţia conţinutului de umiditate nu va modifica evaluarea,
atunci, cu condiţia ca procedurile de calitate adecvate să fie aplicate şi ca analiza să servească doar la verificarea conformităţii cu dispoziţiile legale, corecţia conţinutului de umiditate ar putea fi omisă (de exemplu, în cazurile în care nu există nicio specificaţie sau nivel de reglementare), cu excepţia cazului în care acest lucru este necesar pentru interpretare.
În cazul în care rezultatul analitic este ajustat pentru conţinutul de umiditate, incertitudinea de măsurare corespunzătoare trebuie, de asemenea, să fie ajustată în cadrul aceleiaşi proceduri.
În cazul determinării cornului secarei sau a impurităţilor botanice nocive prin examinare vizuală/microscopică, nu este necesară ajustarea conţinutului de umiditate.
6.Incertitudinea de măsurare analitică şi rata de recuperare în cazul analizelor de detectare a substanţelor indezirabile
În ce priveşte substanţele indezirabile, în sensul Directivei 2002/32/CE, un produs destinat utilizării în furaje se consideră neconform cu conţinutul maxim stabilit dacă rezultatul analitic calculat ca media a două determinări independente, referitor la un furaj cu un conţinut de umiditate de 12 %, este considerat ca depăşind conţinutul maxim, ţinând cont de incertitudinea de măsurare analitică extinsă folosind un factor de acoperire 2 care conferă un nivel de încredere de aproximativ 95 % şi de ajustarea pentru recuperare. Aceasta înseamnă că, pentru a evalua conformitatea, concentraţia analizată se utilizează după ce a fost ajustată pentru recuperare şi după ce s-a dedus incertitudinea de măsurare analitică extinsă. Această procedură se aplică numai în cazurile în care metoda de analiză permite estimarea incertitudinii de măsurare analitică extinse şi a ajustării pentru recuperare. (de exemplu, nu este necesar în cazul examinării vizuale/microscopice).
În cazul în care rezultatul analitic al eşantionului prelevat pentru apărare depăşeşte conţinutul maxim (fără a lua în considerare incertitudinea de măsurare analitică extinsă), acest lucru confirmă neconformitatea constatată cu eşantionul de control, în absenţa unor norme naţionale specifice în acest sens.
Rezultatul analitic se raportează în modul următor (în măsura în care metoda de analiză utilizată permite estimarea incertitudinii de măsurare analitică extinse):
a)ajustat pentru recuperare, dacă este cazul şi dacă este relevant, cu menţionarea faptului că a fost ajustat. Rata de recuperare trebuie indicată, cu excepţia cazului în care corecţia intrinsecă pentru eroare sistematică face parte din procedură, unde eroarea sistematică este diferenţa dintre valoarea măsurată şi concentraţia de referinţă. Ajustarea pentru recuperare nu este necesară în cazul în care rata de recuperare este între 90 şi 110 %.
b)ca «x +/- U», unde x este rezultatul analitic şi U este incertitudinea de măsurare analitică extinsă, folosind un factor de acoperire 2 (2), care dă un nivel de încredere de aproximativ 95 %.
(2)Intervalul de încredere de 95 % poate fi atins prin utilizarea unui alt factor, cum ar fi factorul t.
Totuşi, dacă rezultatul analizei este semnificativ (> 50 %) mai mic decât specificaţia de control şi cu condiţia ca procedurile calitative corespunzătoare să fie aplicate şi ca analiza să servească doar verificării conformităţii cu prevederile legale, raportarea ratei de recuperare şi a incertitudinii de măsurare analitică extinse ar putea fi omisă (de exemplu, în cazul în care nu există nicio specificaţie sau nivel de reglementare), cu excepţia cazului în care incertitudinea de măsurare este necesară pentru interpretare.
7.Incertitudinea de măsurare analitică şi rata de recuperare în cazul analizei conţinutului de aditivi furajeri
Pentru a verifica conformitatea cu conţinutul minim şi maxim autorizat de aditivi furajeri, prezenţa unui aditiv furajer este considerată neconformă cu conţinutul minim şi maxim stabilit dacă rezultatul analitic, calculat ca media două determinări independente, în raport cu un furaj cu un conţinut de umiditate de 12 %, este considerat:
- că depăşeşte conţinutul maxim, ţinând seama de incertitudinea de măsurare analitică extinsă şi de ajustarea pentru recuperare. Aceasta înseamnă că, pentru a evalua conformitatea, concentraţia analizată (şi anume, media a două determinări) se utilizează după ce a fost ajustată pentru recuperare şi după ce s-a dedus incertitudinea de măsurare analitică extinsă;
- că este sub conţinutul minim, ţinând seama de incertitudinea de măsurare analitică extinsă şi de ajustarea pentru recuperare. Aceasta înseamnă că, pentru a evalua conformitatea, concentraţia analizată (şi anume, media a două determinări) se utilizează după ce a fost ajustată pentru recuperare şi după ce s-a adăugat incertitudinea de măsurare analitică extinsă.
În cazul în care rezultatul analitic al eşantionului prelevat pentru apărare depăşeşte conţinutul maxim (fără a lua în considerare incertitudinea de măsurare analitică extinsă), acest lucru confirmă neconformitatea constatată cu eşantionul de control, în absenţa unor norme naţionale specifice în acest sens.
Rezultatul analitic se raportează în modul următor (în măsura în care metoda de analiză utilizată permite estimarea incertitudinii de măsurare analitică extinse):
a)ajustat pentru recuperare, dacă este cazul şi dacă este relevant, cu menţionarea faptului că a fost ajustat. Rata de recuperare trebuie indicată, cu excepţia cazului în care corecţia intrinsecă pentru eroare sistematică face parte din procedură, unde eroarea sistematică este diferenţa dintre valoarea măsurată şi concentraţia de referinţă. Ajustarea pentru recuperare nu este necesară în cazul în care rata de recuperare este între 90 şi 110 %.
b)ca «x +/- U», unde x este rezultatul analitic (media a două determinări) şi U este incertitudinea de măsurare analitică extinsă, folosind un factor de acoperire 2 (3), care dă un nivel de încredere de aproximativ 95 %.
(3)Intervalul de încredere de 95 % poate fi atins prin utilizarea unui alt factor, cum ar fi factorul t."
ANEXA III:
"- ANEXA III: METODE DE ANALIZĂ DE CONTROL AL COMPOZIŢIEI MATERIILOR PRIME FURAJERE ŞI AL FURAJELOR COMBINATE
(A)DETERMINAREA UMIDITĂŢII
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Această metodă permite determinarea conţinutului de umiditate al furajelor. În cazul furajelor care conţin substanţe volatile, cum sunt acizii organici, este de notat că o dată cu determinarea conţinutului de umiditate se determină şi un număr semnificativ de substanţe volatile.
Metoda nu se aplică în cazul analizei produselor lactate utilizate ca materii prime furajere şi al furajelor combinate care constau în principal din produse lactate, analizei grăsimilor şi uleiurilor de origine animală şi vegetală sau analizei seminţelor şi a fructelor oleaginoase.
Determinarea conţinutului de umiditate din seminţele oleaginoase se determină prin metoda prevăzută în EN ISO 665 «Determinarea conţinutului de umiditate şi de materii volatile», cu menţiunea că boabele de soia trebuie să fie măcinate înainte de determinarea conţinutului de umiditate.
2.Principiu
Eşantionul se deshidratează în condiţii specificate, care variază în funcţie de natura furajelor. Pierderea de greutate se determină prin cântărire. Este necesar să se efectueze o uscare prealabilă atunci când se analizează furaje solide cu conţinut ridicat de umiditate.
3.Aparatură

3.1.

Moară construită dintr-un material care nu absoarbe umiditatea, uşor de curăţat, care permite o zdrobire rapidă şi uniformă, fără a provoca încălzire semnificativă, care evită pe cât posibil contactul cu aerul exterior şi care corespunde cerinţelor menţionate la punctele 4.1.1 şi 4.1.2 (de exemplu, micro-mori cu ciocane sau răcite cu apă, mori conice pliabile sau mori cu mecanism lent sau cu discuri dinţate).

3.2.

Balanţă analitică, cu toleranţă de 1 mg.

3.3.

Recipiente uscate din metal care nu se corodează sau din sticlă cu capace ermetice; suprafaţa de lucru permite împrăştierea eşantionului până la aproximativ 0,3 g/cm2.

3.4.

Cuptor izoterm cu încălzire electrică (± 2 °C), ventilat corespunzător şi care asigură o reglare rapidă a temperaturii (1).

(1) Pentru uscarea cerealelor, a făinii fine, a tărâţelor şi a făinii grunjoase, cuptorul trebuie să aibă o capacitate termică astfel încât, atunci când este prestabilită la 131 °C, va reveni la temperatura respectivă în mai puţin de 45 de minute după ce în interior a fost plasat un număr maxim de eşantioane de testat, în vederea uscării simultane. Ventilaţia trebuie să fie astfel încât, atunci când un număr cât mai mare de eşantioane de grâu comun pe care le poate conţine sunt supuse uscării timp de două ore, rezultatele diferă de cele obţinute după patru ore de uscare cu mai puţin de 0,15 %.

3.5.

Cuptor vidat cu încălzire electrică, reglabil, dotat cu o pompă de ulei şi cu: fie un mecanism de introducere a aerului fierbinte uscat, fie un agent de desicare (de exemplu, oxid de calciu).

3.6.

Desicator cu o placă din metal sau porţelan, groasă, perforată, conţinând un agent de desicare eficient.

4.Procedura
N.B.: Operaţiile descrise în această secţiune se efectuează imediat după deschiderea ambalajelor care conţin eşantioanele. Analizele trebuie să fie efectuate cel puţin în duplicat.
4.1.Preparare
4.1.1.Furaje care nu sunt menţionate la punctele 4.1.2 şi 4.1.3
Se prelevează cel puţin 50 g de eşantion. Dacă este necesar, se zdrobeşte sau se divizează astfel încât să se evite orice variaţie a conţinutului de umiditate (a se vedea punctul 6).
4.1.2.Cereale şi tărâţe
Se prelevează cel puţin 50 g de eşantion. Se macină în particule din care cel puţin 50 % trec printr-o sită cu orificii de 0,5 mm şi care nu determină un reziduu mai mare de 10 % în cazul folosirii unei site cu orificii rotunde cu diametru de 1 mm.
4.1.3.Furaje lichide sau păstoase, furaje constituite în mod predominant din uleiuri şi grăsimi
Se prelevează aproximativ 25 g din eşantion, se cântăreşte cu o abatere de 10 mg, se adaugă o cantitate adecvată de nisip anhidru cântărită cu o abatere de 10 mg şi se amestecă până la obţinerea unui produs omogen.
4.2.Uscare
Se usucă un recipient (punctul 3.3) împreună cu capacul său în cuptorul reglat la 103 °C timp de 30 de minute +/- 1 min. Se scoate din cuptor şi se lasă să se răcească la temperatura ambiantă în desicator (punctul 3.6).
4.2.1.Furaje care nu sunt menţionate la punctele 4.2.2 şi 4.2.3
Se cântăreşte recipientul împreună cu capacul său, cu o abatere de 1 mg. În recipientul respectiv se cântăreşte, cu o abatere de 1 mg, o cantitate de aproximativ 5 g de eşantion şi se împrăştie uniform. Recipientul se introduce, fără capac, în cuptorul preîncălzit la 103 °C. Pentru a împiedica scăderea inadecvată a temperaturii din cuptor, recipientul se introduce cât mai rapid posibil. Se lasă la uscat timp de patru ore, calculate din momentul în care temperatura din cuptor revine la 103 °C. Se deschide cuptorul, se aşază imediat capacul pe recipient, se scoate acesta din urmă din cuptor, se lasă să se răcească timp de 30-45 de minute în desicator (punctul 3.6) şi se cântăreşte cu o abatere de 1 mg.
În cazul furajelor constituite în mod predominant (> 50 %) din uleiuri şi grăsimi de origine animală şi vegetală, uscarea în cuptor se prelungeşte cu 30 de minute, la 103 °C. Diferenţa între cele două cântăriri nu trebuie să depăşească 0,1 % în umiditate.
4.2.2.Cereale, făină fină, tărâţe şi făină grunjoasă
Se cântăreşte recipientul împreună cu capacul său, cu o abatere de 0,5 mg. În recipientul respectiv se cântăreşte, cu o abatere de 1 mg, o cantitate de aproximativ 5 g de eşantion măcinat şi se împrăştie uniform. Recipientul se introduce, fără capac, în cuptorul preîncălzit la 130 °C. Pentru a împiedica scăderea inadecvată a temperaturii din cuptor, recipientul se introduce cât mai rapid posibil. Se lasă la uscat timp de două ore, considerate din momentul în care temperatura din cuptor revine la 130 °C. Se deschide cuptorul, se aşază imediat capacul pe recipient, se scoate acesta din urmă din cuptor, se lasă să se răcească timp de 30-45 de minute în desicator (punctul 3.6) şi se cântăreşte cu o abatere de 1 mg.
4.2.3.Furaje combinate conţinând peste 4 % zaharoză sau lactoză: materii prime furajere precum seminţele de roşcove, produsele cerealiere hidrolizate, seminţele de malţ, bucăţi de sfeclă uscată, solubilizate de peşte şi zaharuri
Se cântăreşte recipientul împreună cu capacul său, cu o abatere de 0,5 mg. În recipientul respectiv se cântăreşte, cu o abatere de 1 mg, o cantitate de aproximativ 5 g de eşantion şi se împrăştie uniform. Recipientul se introduce, fără capac, în cuptorul vidat (punctul 3.5) preîncălzit la o temperatură cuprinsă între 80 °C şi 85 °C. Pentru a împiedica scăderea inadecvată a temperaturii din cuptor, recipientul se introduce cât mai rapid posibil.
Se aduce presiunea la 100 Torr şi se lasă la uscat, la această presiune, timp de patru ore, fie într-un curent de aer uscat şi cald, fie cu ajutorul unui agent de desicare (aproximativ 300 g pentru 20 de eşantioane). În al doilea caz, pompa de vid se deconectează după ce se obţine presiunea recomandată. Durata de uscare se calculează din momentul în care temperatura în cuptor revine la o valoare cuprinsă între 80 °C şi 85 °C. Presiunea cuptorului se readuce cu grijă până la nivelul presiunii atmosferice. Se deschide cuptorul, se aşază imediat capacul pe recipient, se scoate recipientul din cuptor, se lasă să se răcească timp de 30-45 de minute în desicator (punctul 3.6) şi se cântăreşte cu o abatere de 1 mg. Uscarea în cuptorul vidat se prelungeşte cu încă 30 de minute la o temperatură cuprinsă între 80 °C şi 85 °C şi se recântăreşte. Diferenţa între cele două cântăriri nu trebuie să depăşească 0,1 % în umiditate.
4.3.Uscarea prealabilă (parţială)
Este necesară uscarea parţială a furajelor «umede» cu o fracţiune masică mai mică de 85 % substanţă uscată (de exemplu, nutreţ, raţii totale amestecate, furaje nelichide) înainte de măcinarea fină, pentru a analiza substanţele stabile ale acestora; pentru substanţele instabile, uscarea parţială nu este posibilă.
Uscarea parţială se poate efectua cu un cuptor cu aer forţat, cu un cuptor cu microunde sau prin liofilizare. Cu excepţia uscării parţiale prin liofilizare, scopul este uscarea furajului menţinând în acelaşi timp temperatura eşantionului sub 60 °C, astfel încât compoziţia chimică să fie minim afectată. Uscarea la temperaturi mai mari de 60 °C provoacă modificări chimice în furaje (de exemplu, degradarea proteinelor). Furajul uscat se echilibrează la temperatura camerei timp de aproximativ 15 minute înainte de măsurarea materiei uscate parţiale, astfel încât să se reducă la minimum modificarea potenţială a umidităţii care poate apărea în timpul măcinării şi depozitării. Uscarea la temperaturi mai mici de 60 °C nu îndepărtează toată apa din furaj; prin urmare, uscarea parţială (iniţială) nu reprezintă substanţa uscată totală a furajului. După uscare, subeşantionul este măcinat şi analizat pentru a se stabili conţinutul de substanţă uscată (finală) al eşantionului parţial uscat (restul de umiditate între 3 % şi 15 %) atunci când se determină alţi constituenţi chimici.
Prin urmare, se recomandă o procedură în două etape pentru determinarea substanţei uscate. Se determină mai întâi conţinutul parţial de substanţă uscată (în cazul în care acesta este mai mic de 85 %), apoi se determină conţinutul de substanţă uscată rămasă pe un eşantion de testat măcinat şi se înmulţeşte substanţa uscată parţială cu substanţa uscată rămasă pentru a determina conţinutul total de substanţă uscată.
5.Calculul rezultatelor
Conţinutul de umiditate (X) al eşantionului, în procente, se calculează prin utilizarea formulelor următoare:
5.1.Uscare fără uscare prealabilă
unde:

m

=

greutatea iniţială, în grame, a eşantionului de testat,

m0

=

greutatea, în grame, a eşantionului de testat uscat.

5.2.Uscare cu uscare prealabilă (2)
(2)Pentru mai multe detalii privind calculul, se face trimitere la EN ISO 6498 - Hrană pentru animale - Orientări pentru pregătirea eşantioanelor.
unde:

m

=

greutatea iniţială, în grame, a eşantionului de testat,

m1

=

greutatea, în grame, a eşantionului de testat după uscare prealabilă,

m2

=

greutatea, în grame, a eşantionului de testat după zdrobire sau măcinare,

m0

=

greutatea, în grame, a eşantionului de testat uscat.

5.3.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele obţinute în două determinări paralele efectuate pe acelaşi eşantion nu depăşeşte 0,2 % din valoarea absolută pentru umiditate, cu excepţia hranei umede pentru animale de companie şi a produselor de ros pentru câini, în cazul cărora diferenţa nu depăşeşte 0,5 % din valoarea absolută pentru umiditate.
6.Observaţie
Dacă zdrobirea se dovedeşte a fi necesară şi dacă această acţiune poate modifica conţinutul de umiditate al produsului, rezultatele analizei referitoare la componentele furajelor trebuie ajustate în funcţie de conţinutul de umiditate al eşantionului în starea lui iniţială.
(B)DETERMINAREA UMIDITĂŢII DIN GRĂSIMILE ŞI ULEIURILE ANIMALE ŞI VEGETALE
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Această metodă permite determinarea conţinutului în apă şi substanţe volatile din grăsimile şi uleiurile animale şi vegetale.
2.Principiu
Eşantionul se usucă până la atingerea greutăţii constante (pierderea de greutate între două cântăriri succesive trebuie să fie mai mică sau egală cu 1 mg) la 103 °C. Pierderea de greutate se determină prin cântărire.
3.Aparatură

3.1.

Vas cu fund plat, din material rezistent la coroziune, cu diametru de 8-9 cm şi adâncime de aproximativ 3 cm.

3.2.

Termometru cu bulb întărit şi cu tub de expansiune la capătul superior, gradat de la aproximativ 80 °C până la cel puţin 110 °C şi lung de aproximativ 10 cm.

3.3.

Cuvă cu nisip sau plită.

3.4.

Desicator, conţinând un agent de uscare eficient.

3.5.

Balanţă analitică.

4.Procedura
Se cântăresc, cu o abatere de 1 mg, aproximativ 20 g din eşantionul omogenizat, în recipientul uscat şi cântărit (punctul 3.1), conţinând termometrul (punctul 3.2). Se încălzeşte pe cuva cu nisip sau pe plită (punctul 3.3), amestecând continuu cu termometrul, astfel încât temperatura să ajungă la 90 °C în aproximativ 7 minute.
Se reduce intensitatea căldurii, urmărind frecvenţa cu care bulele se ridică de pe fundul vasului. Temperatura nu trebuie să depăşească 105 °C. Se continuă amestecarea, răzuind fundul vasului, până când bulele încetează să se mai formeze.
Pentru a asigura eliminarea completă a umidităţii, se reîncălzeşte de câteva ori la 103 ± 2 °C, răcind la 93 °C între încălziri succesive. În continuare se lasă să se răcească la temperatura camerei în desicator (punctul 3.4) şi se cântăreşte. Se repetă această operaţie până când pierderea de greutate dintre două încălziri succesive nu depăşeşte 2 mg.
N.B. O creştere a greutăţii eşantionului după încălzire repetată indică oxidarea grăsimilor, caz în care rezultatul se calculează prin cântărirea imediat înainte ca greutatea să înceapă să crească.
5.Calculul rezultatelor
Conţinutul de umiditate (X), ca procentaj din eşantion, este dat de următoarea formulă:
unde:

m

=

greutatea, în grame, a eşantionului de testat;

m1

=

greutatea, în grame, a vasului împreună cu conţinutul său înainte de încălzire;

m2

=

greutatea, în grame, a vasului împreună cu conţinutul său după încălzire.

Rezultatele mai mici de 0,05 % se înregistrează ca fiind «sub 0,05 %».
Repetabilitate
Diferenţa de umiditate dintre rezultatele a două determinări paralele efectuate pe acelaşi eşantion nu trebuie să depăşească 0,1 %, în valoare absolută.
(C)DETERMINAREA CONŢINUTULUI DE AZOT ŞI CALCULAREA CONŢINUTULUI DE PROTEINE BRUTE
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Prezenta metodă permite determinarea conţinutului de proteine brute din furaje pe baza conţinutului de azot, determinat conform metodei Kjeldahl (3).
(3)Conţinutul de N poate fi determinat în toate furajele, dar este posibil ca factorul de conversie de 6,25 pentru calcularea conţinutului de proteine brute să nu fie aplicabil pentru materiile prime furajere pe bază de insecte (factor de conversie mai mic) şi în unele cazuri pentru hrana pentru animale de companie şi proteinele din plasmă sanguină (factor de conversie mai ridicat).
2.Principiu
Eşantionul se dizolvă cu acid sulfuric în prezenţa unui catalizator. Soluţia acidă se alcalinizează cu soluţie de hidroxid de sodiu. Amoniacul se distilează şi se colectează într-o cantitate măsurată de acid sulfuric, al cărei exces se titrează cu o soluţie etalon de hidroxid de sodiu.
Ca alternativă, amoniacul eliberat se distilează într-o soluţie de acid boric în exces, urmat de titrare cu o soluţie de acid clorhidric sau acid sulfuric.
3.Reactivi

3.1.

Sulfat de potasiu.

3.2.

Catalizator: oxid de cupru (II) CuO sau sulfat de cupru (II) pentahidrat, CuSO4 5H2O.

3.3.

Zinc granulat.

3.4.

Acid sulfuric, 20 = 1,84 g/ml.

3.5.

Acid sulfuric, soluţie volumetrică standard, c(H2SO4) = 0,25 mol/l.

3.6.

Acid sulfuric, soluţie volumetrică standard, c(H2SO4) = 0,10 mol/l.

3.7.

Acid sulfuric, soluţie volumetrică standard, c(H2SO4) = 0,05 mol/l.

3.8.

Indicator roşu de metil; se dizolvă 300 mg de roşu de metil în 100 ml de etanol, = 95-96 % (v/v).

3.9.

Soluţie de hidroxid de sodiu (se poate utiliza soluţie de calitate tehnică) = 40 g/100 ml (m/v: 40 %).

3.10.

Hidroxid de sodiu, soluţie volumetrică standard, c(NaOH) = 0,25 mol/l.

3.11.

Hidroxid de sodiu, soluţie volumetrică standard, c(NaOH) = 0,10 mol/l.

3.12.

Piatră ponce granulată, spălată în acid clorhidric şi calcinată.

3.13.

Acetanilidă (m.p. = 114 °C, conţinutul în N = 10,36 %).

3.14.

Zaharoză (fără azot).

3.15.

Acid boric (H3BO3).

3.16.

Soluţie de indicator roşu de metil: se dizolvă 100 mg de roşu de metil în 100 ml de etanol sau metanol.

3.17.

Soluţie de verde de bromocrezol: se dizolvă 100 mg de verde de bromocrezol în 100 ml de etanol sau metanol.

3.18.

Soluţie de acid boric (10 g/l-40 g/l, în funcţie de aparatura utilizată)

Când se aplică detectarea prin colorimetrie a punctului final, indicatorii roşu de metil şi bromocrezol trebuie adăugaţi la soluţiile de acid boric. Dacă se prepară 1 litru de soluţie de acid boric, înainte de ajustarea de volum, se adaugă 7 ml de soluţie de indicator roşu de metil (punctul 3.16) şi 10 ml de soluţie verde de bromocrezol (punctul 3.17).

În funcţie de apa utilizată, pH-ul soluţiei de acid boric poate diferi de la lot la lot. pH-ul soluţiei de acid boric trebuie să fie între 4,3 şi 4,7. Adesea este necesară o ajustare cu ajutorul unui mic volum de substanţă alcalină pentru a obţine un martor pozitiv.

Notă: Adăugarea a aproximativ 3-4 ml de NaOH (punctul 3.11) în 1 litru de acid boric 10 g/l oferă, de obicei, ajustări bune. Soluţia se păstrează la temperatura camerei şi, pe durata păstrării, se protejează de lumină şi de surse de vapori de amoniac.

3.19.

Acid clorhidric, soluţie volumetrică standard, c(HCl) = 0,10 mol/l.

Notă: Dacă în calcule se fac ajustările necesare, se pot folosi alte concentraţii de soluţii volumetrice (punctele 3.5, 3.6, 3.7, 3.10, 3.11 şi 3.19). Concentraţiile se exprimă întotdeauna cu patru zecimale.

4.Aparatură
Aparatură adecvată pentru efectuarea dizolvării, distilării şi titrării conform procedurii Kjeldahl.
5.Procedura
5.1.Dizolvarea
Se cântăreşte 1 g de eşantion cu o abatere de 0,001 g şi se transferă eşantionul în vasul aparatului de dizolvare. Se adaugă 15 g de sulfat de potasiu (punctul 3.1), o cantitate adecvată de catalizator (punctul 3.2) [0,3-0,4 g oxid de cupru (II) sau 0,9-1,2 g sulfat de cupru (II) pentahidrat], 25 ml de acid sulfuric (punctul 3.4) şi, dacă este necesar, câteva granule de piatră ponce (punctul 3.12), apoi se amestecă.
Se încălzeşte vasul, la început moderat, agitând circular din când, dacă este cazul, până când materia s-a carbonizat şi spuma a dispărut; apoi se încălzeşte mai intens, până când lichidul fierbe constant. Încălzirea este adecvată dacă acidul aflat în fierbere se condensează pe peretele vasului. Se previne supraîncălzirea marginilor şi lipirea particulelor organice de acestea.
Când soluţia devine limpede şi de culoare verde deschis, se continuă fierberea timp de încă două ore, apoi se lasă să se răcească.
5.2.Distilarea
Se adaugă cu atenţie apă suficientă pentru a asigura dizolvarea completă a sulfaţilor. Se lasă la răcit şi apoi se adaugă, dacă este cazul, câteva granule de zinc (punctul 3.3). Se procedează ca la punctul 5.2.1 sau 5.2.2.
5.2.1.Distilarea în acid sulfuric
În vasul de colectare al aparatului de distilare se introduce o cantitate de 25 ml de acid sulfuric (punctul 3.5) sau (punctul 3.7), măsurată cu exactitate, în funcţie de conţinutul estimat de azot. Se adăugă câteva picături de indicator roşu de metil (punctul 3.8).
Se conectează vasul de dizolvare la condensatorul aparatului de distilare şi se scufundă capătul condensatorului în lichidul din vasul de colectare până la o adâncime de cel puţin 1 cm (a se vedea observaţia 8.3). Se toarnă încet 100 ml de soluţie de hidroxid de sodiu (punctul 3.9) în vasul de dizolvare, fără pierderi de amoniac (a se vedea observaţia 8.1). Se încălzeşte vasul până la distilarea completă a amoniacului.
5.2.2.Distilarea în acid boric
În cazul în care titrarea amoniacului conţinut în distilat se face manual, se aplică procedura de mai jos. În cazul în care unitatea de distilare este complet automatizată, inclusiv titrarea amoniacului conţinut în distilat, se urmează instrucţiunile de operare a unităţii de distilare puse la dispoziţie de fabricant.
Sub orificiul de evacuare al condensatorului se aşază un vas de colectare conţinând 25-30 ml de soluţie de acid boric (punctul 3.18), astfel încât tubul de evacuare se află sub nivelul suprafeţei soluţiei de acid boric în exces. Se reglează unitatea de distilare astfel încât să elibereze 50 ml de soluţie de hidroxid de sodiu (punctul 3.9). Unitatea de distilare se operează în conformitate cu instrucţiunile fabricantului, distilându-se complet amoniacul eliberat prin adăugarea de soluţie de hidroxid de sodiu. Distilatul se colectează în soluţia de acid boric receptoare. Cantitatea de distilat (timpul de distilare în vapori) depinde de cantitatea de azot din eşantion. Se urmează instrucţiunile fabricantului.
Notă: În cazul unei unităţi de distilare semiautomate, adăugarea hidroxidului de sodiu în exces şi distilarea în vapori se efectuează automat.
5.3.Titrarea
Se procedează ca la punctul 5.3.1 sau 5.3.2.
5.3.1.Acid sulfuric
Se titrează excesul de acid sulfuric în vasul de colectare cu soluţie de hidroxid de sodiu (punctul 3.10 sau 3.11), în funcţie de concentraţia acidului sulfuric utilizat, până se atinge punctul final.
5.3.2.Acid boric
Cu ajutorul unei biurete se titrează conţinutul vasului de colectare cu soluţie volumetrică standard de acid clorhidric (punctul 3.19) sau cu soluţie volumetrică standard de acid sulfuric (punctul 3.6) şi se citeşte cantitatea de soluţie de titrare utilizată.
Când se aplică detectarea colorimetrică a punctului final, acesta este atins la prima apariţie în conţinut a culorii roz. Citirea biuretei se estimează cu o abatere de 0,05 ml. Vizualizarea punctului final poate fi facilitată de o placă de agitator magnetic iluminat sau de un detector fotometric.
Aceasta poate fi efectuată automat prin utilizarea unui aparat de distilare cu vapori cu titrare automată.
Operarea specifică a aparatului de distilare sau a celui de distilare/titrare se face conform instrucţiunilor fabricantului.
Notă: În cazul în care se utilizează un sistem automat de titrare, aceasta începe imediat după începerea distilării şi se utilizează soluţia de acid boric 1 % (punctul 3.18).
În cazul care se utilizează o unitate de distilare complet automată, titrarea automată a amoniacului poate fi efectuată, de asemenea, prin detectarea punctului final cu ajutorul unui sistem pH potenţiometric.
În acest caz, se utilizează un aparat de titrare automat, cu pH-metru. pH-metrul se calibrează în mod corespunzător în intervalul de pH 4-7, folosindu-se proceduri de laborator normale de calibrare a pH-ului.
Punctul final al titrării exprimat în pH este atins la valoarea de 4,6, reprezentând punctul cel mai de jos al curbei de titrare (punctul de inflexiune).
5.4.Testul martor
Pentru a confirma faptul că reactivii nu conţin azot, se efectuează un test martor (dizolvare, distilare şi titrare), folosind 1 g de zaharoză (punctul 3.14) în locul eşantionului.
6.Calculul rezultatelor
Calcularea se efectuează în conformitate cu punctul 6.1 sau 6.2.
6.1.Calcularea titrării în conformitate cu punctul 5.3.1
Conţinutul de proteine brute, exprimat ca procent din greutate, se calculează conform următoarei formule:
unde:

V0

=

volumul (ml) de NaOH (punctul 3.10 sau 3.11) folosit în testul martor;

V1

=

volumul (ml) de NaOH (punctul 3.10 sau 3.11) folosit în titrarea eşantionului;

c

=

concentraţia (mol/l) a hidroxidului de sodiu (punctul 3.10 sau 3.11);

m

=

greutatea (g) a eşantionului.

6.2.Calcularea titrării în conformitate cu punctul 5.3.2
6.2.1.Titrare cu acid clorhidric
Conţinutul de proteine brute, exprimat ca procent din greutate, se calculează conform următoarei formule:
unde:

m

=

greutatea (g) a părţii de testat;

c

=

concentraţia (mol/l) a soluţiei volumetrice standard de acid clorhidric (punctul 3.19);

V0

=

volumul (în ml) de acid clorhidric utilizat în testul martor;

V1

=

volumul (în ml) de acid clorhidric utilizat în partea de testat.

6.2.2.Titrare cu acid sulfuric
Conţinutul de proteine brute, exprimat ca procent din greutate, se calculează conform următoarei formule:
unde:

m

=

greutatea (g) a părţii de testat;

c

=

concentraţia (mol/l) a soluţiei volumetrice standard de acid sulfuric (punctul 3.6);

V0

=

volumul (în ml) de acid sulfuric (punctul 3.6) utilizat în testul martor;

V1

=

volumul (în ml) de acid sulfuric (punctul 3.6) utilizat în partea de testat.

7.Verificarea metodei
7.1.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări paralele efectuate pe acelaşi eşantion nu trebuie să depăşească:
- 0,4 % în valoare absolută, pentru un conţinut de proteine brute mai mic de 20 %;
- 2,0 % relativ la valoarea mai mare, pentru un conţinut de proteine brute cuprins între 20 şi 40 %;
- 0,8 % în valoare absolută, pentru un conţinut de proteine brute mai mare de 40 %.
7.2.Reproductibilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări efectuate pe acelaşi eşantion în laboratoare diferite nu trebuie să depăşească:
- 1,8 % în valoare absolută, pentru un conţinut de proteine brute mai mic de 20 %;
- 9,0 % relativ la valoarea mai mare, pentru un conţinut de proteine brute cuprins între 20 şi 40 %;
- 3,6 % în valoare absolută, pentru un conţinut de proteine brute mai mare de 40 %.
7.3.Acurateţea
Analiza (dizolvare, distilare şi titrare) se efectuează pe o cantitate adecvată de acetanilidă (punctul 3.13) (de exemplu, 0,2-0,3 g), în prezenţa a 1 g zaharoză (punctul 3.14); 1 g de acetanilidă consumă 14,80 ml de acid sulfuric (punctul 3.5). Recuperarea trebuie să fie de cel puţin 99 %.
8.Observaţii

8.1.

Aparatura poate fi de tip manual, semiautomat sau automat. Dacă aparatura necesită un transfer între etapele de dizolvare şi distilare, acest transfer trebuie realizat fără pierderi. Dacă vasul aparatului de distilare nu este prevăzut cu o pâlnie de picurare, se adaugă hidroxidul de sodiu imediat înainte de conectarea vasului la condensator, turnând încet lichidul pe marginea vasului.

8.2.

Dacă produsul de dizolvare se solidifică, se reîncepe determinarea folosind o cantitate mai mare de acid sulfuric (punctul 3.4) decât cea menţionată la punctul 5.1.

8.3.

Pentru produsele cu conţinut scăzut de azot, volumul de acidul sulfuric (punctul 3.7) care trebuie introdus în vasul de colectare poate fi redus, dacă este cazul, la 10 sau 15 ml şi completat până la 25 ml cu apă.

8.4.

Pentru analizele curente, în vederea determinării conţinutului de proteine brute se pot aplica metode alternative de analiză, dar metoda Kjeldahl descrisă în prezenta parte C este metoda de referinţă. Echivalenţa dintre rezultatele obţinute cu metoda alternativă (de exemplu, DUMAS) şi cele obţinute prin metoda de referinţă trebuie demonstrată pentru fiecare matrice în mod individual. Întrucât rezultatele obţinute cu o metodă alternativă, chiar şi după verificarea echivalenţei, pot devia uşor faţă de rezultatele obţinute cu metoda de referinţă, este necesar a menţiona în raportul analitic metoda de analiză utilizată pentru determinarea conţinutului de proteine brute.

(D)DETERMINAREA UREEI
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Această metodă permite determinarea conţinutului de uree utilizată ca aditiv furajer în furajele pentru rumegătoare.
2.Principiu
Eşantionul este pus în suspensie în apă, în care s-a adăugat un produs de limpezire. Suspensia se filtrează. Conţinutul în uree al filtratului este determinat după adăugarea de 4-dimetilaminobenzaldehidă (4-DMAB), prin măsurarea densităţii optice la o lungime de undă de 420 nm.
3.Reactivi

3.1.

Soluţie de 4-dimetilaminobenzaldehidă: se dizolvă 1,6 g de 4-DMAB în 100 ml de etanol 96 % şi se adaugă 10 ml de acid clorhidric (20 1,19 g/ml). Acest reactiv se conservă timp de maximum două săptămâni.

3.2.

Soluţie Carrez I: se dizolvă 21,9 g de acetat de zinc, Zn(CH3COO)2 2H2O şi 3 g de acid acetic glacial în apă. Se completează cu apă până la 100 ml.

3.3.

Soluţie Carrez II: se dizolvă 10,6 g de ferocianură de potasiu, K4Fe(CN)6 3H2O în apă. Se completează cu apă până la 100 ml.

3.4.

Cărbune activ care nu absoarbe ureea (de controlat).

3.5.

Uree, soluţie 0,1 % (greutate/volum).

4.Aparatură

4.1.

Mixer (agitator): aproximativ 35-40 rpm.

4.2.

Eprubete: 160 × 16 mm cu dopuri de sticlă şlefuită.

4.3.

Spectrofotometru.

5.Procedura
5.1.Analiza eşantionului
Se cântăresc 2 g de eşantion cu abatere de 1 mg şi se introduc împreună cu 1 g de cărbune activ (punctul 3.4) într-un balon gradat de 500 ml. Se adaugă 400 ml de apă şi 5 ml de soluţie Carrez I (punctul 3.2), se amestecă timp de aproximativ 30 de secunde şi se adaugă 5 ml de soluţie Carrez II (punctul 3.3). Se amestecă timp de 30 de minute în agitator. Se completează volumul cu apă, se agită şi se filtrează.
Se îndepărtează 5 ml de filtrat transparent şi incolor, se introduc în eprubete cu dop de sticlă şlefuită, se adaugă 5 ml de soluţie de 4-DMAB (punctul 3.1) şi se amestecă. Se introduc eprubetele într-o baie de apă la 20 °C (+/- 4 °C). După 15 minute se măsoară densitatea optică a soluţiei de eşantion cu spectrofotometrul la 420 nm. Se compară cu soluţia de reactivi pentru testul martor.
5.2.Curba de calibrare
Se îndepărtează volume de 1, 2, 4, 5 şi 10 ml din soluţia de uree (punctul 3.5), se introduc în baloanele gradate de 100 ml şi se completează volumul cu apă. Se îndepărtează 5 ml din fiecare soluţie, se adaugă în fiecare 5 ml de soluţie 4-DMAB (punctul 3.1), se omogenizează şi se măsoară densitatea optică conform indicaţiilor de mai sus cu o soluţie martor care conţine 5 ml de 4-DMAB şi 5 ml de apă în care nu există uree. Se trasează curba de calibrare.
6.Calculul rezultatelor
Se determină cantitatea de uree din eşantion cu ajutorul curbei de calibrare.
Rezultatul se exprimă în mg de uree per kg eşantion.
7.Evaluarea metodei
7.1.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări efectuate pe acelaşi eşantion în acelaşi laborator şi de către acelaşi laborant nu trebuie să depăşească:
- La 420 nm
- 50 % din valoarea superioară, pentru un conţinut de uree situat între 3 000 mg/kg şi sub 5 000 mg/kg;
- 25 % din valoarea superioară, pentru un conţinut de uree situat între 5 000 mg/kg şi sub 7 000 mg/kg;
- 20 % din valoarea superioară, pentru un conţinut de uree de 7 000 mg/kg sau mai mult.
- La 435 nm
- 40 % din valoarea superioară, pentru un conţinut de uree situat între 3 000 mg/kg şi sub 5 000 mg/kg;
- 25 % din valoarea superioară, pentru un conţinut de uree situat între 5 000 mg/kg şi sub 9 000 mg/kg;
- 5 % din valoarea superioară, pentru un conţinut de uree de 9 000 mg/kg sau mai mult.
7.2.Reproductibilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări efectuate pe acelaşi eşantion în laboratoare diferite şi/sau efectuate de laboranţi diferiţi nu trebuie să depăşească:
- La 420 nm
- 3 000 mg/kg, în valoare absolută, pentru un conţinut de uree situat între 3 000 mg/kg şi sub 12 000 mg/kg;
- 4 500 mg/kg, în valoare absolută, pentru un conţinut de uree de 12 000 mg/kg sau mai mult.
- La 435 nm
- 50 % din valoarea superioară, pentru un conţinut de uree situat între 3 000 mg/kg şi sub 8 000 mg/kg;
- 25 % din valoarea superioară, pentru un conţinut de uree de 8 000 mg/kg sau mai mult.
8.Rezultatele unui studiu colaborativ
A fost organizat un exerciţiu de comparare interlaboratoare la nivelul UE, la care au participat 18 laboratoare. Au fost analizate cinci eşantioane pozitive de furaje combinate pentru rumegătoare (în tabelele 1 şi 2, denumite MAT) (1 analiză) în duplicate oarbe, în timp ce un furaj combinat de rumegătoare martor a fost analizat o singură dată.
Calculele pentru limitele de repetabilitate (r) şi reproductibilitate (R), astfel cum sunt definite în orientările internaţionale, au fost efectuate după eliminarea valorilor excepţionale utilizând analiza varianţei valorilor valabile.
Cifrele privind performanţa calculată a metodei (repetabilitate, reproductibilitate) sunt prezentate în tabelele următoare. Pentru toate eşantioanele testate, inclusiv materialul martor, nu au fost găsite rezultate fals pozitive sau fals negative.
Tabelul 1 Caracteristicile de performanţă ale metodei pentru uree, măsurată la = 420 nm în toate materialele

MAT 2

MAT 5

MAT 3

MAT 4

MAT 6

Ovine

Bovine

Ovine

Ovine

Bovine

Fracţie masică ţintă (mg kg-1)

3 000

5 000

7 001

9 036

11 000

Fracţie masică medie. (mg kg-1)

4 241

6 993

7 830

9 962

12 071

Deviaţia standard a reproductibilităţii sR (mg kg-1)

1 141

1 303

985

994

1 711

Deviaţia standard a repetabilităţii sr (mg kg-1)

723

601

549

712

737

Deviaţia standard relativă a reproductibilităţii RSDR (%)

27

19

13

10

14

Deviaţia standard relativă a repetabilităţii RSDr (%)

17

9

7

7

6

Limita reproductibilităţii, R

[R = 2,8 × sR ]

3 195

3 649

2 759

2 784

4 790

Limita repetabilităţii, r

[r = 2,8 × sr ]

2 024

1 684

1 536

1 994

2 064

Tabelul 2 Caracteristicile de performanţă ale metodei pentru uree, măsurată la = 435 nm în toate materialele

MAT 2

MAT 5

MAT 3

MAT 4

MAT 6

Ovine

Bovine

Ovine

Ovine

Bovine

Fracţie masică ţintă (mg kg-1)

3 000

5 000

7 001

9 036

11 000

Fracţie masică medie. (mg kg-1)

4 101

6 467

7 890

10 062

11 642

Deviaţia standard a reproductibilităţii sR (mg kg-1)

706

1 194

675

745

1 378

Deviaţia standard a repetabilităţii sr (mg kg-1)

570

628

613

196

167

Deviaţia standard relativă a reproductibilităţii RSDR (%)

17

18

9

7

12

Deviaţia standard relativă a repetabilităţii RSDr (%)

14

10

8

2

1

Limita reproductibilităţii, R

[R = 2,8 × sR ]

1 977

3 344

1 889

2 087

3 859

Limita repetabilităţii, r

[r = 2,8 × sr ]

1 596

1 759

1 715

549

467

9.Observaţii

9.1.

În cazul unui conţinut de uree care depăşeşte 3 %, se reduce greutatea eşantionului la 1 g sau se diluează soluţia iniţială astfel încât să nu fie mai mult de 50 mg de uree în 500 ml.

9.2.

În cazul unui conţinut mic în uree, se creşte greutatea eşantionului atâta timp cât filtratul rămâne transparent şi incolor.

9.3.

Rezultatele de mai sus obţinute în urma studiilor colaborative nu indică o diferenţă semnificativă de precizie între ureea măsurată la 420 nm sau la 435 nm.

(E)DETERMINAREA AMINOACIZILOR (CU EXCEPŢIA TRIPTOFANULUI)
Metodele de analiză utilizate pentru determinarea aminoacizilor (cu excepţia triptofanului) sunt:
- EN ISO 13903 Hrană pentru animale - Determinarea conţinutului de aminoacizi;
- EN ISO 17180 Hrană pentru animale - Determinarea lizinei, metioninei şi treoninei în produsele comerciale de aminoacizi şi în preamestecuri (4);
(4)Metoda de analiză prevăzută de EN 17180 este menţionată ca metodă alternativă de utilizat în scopul controalelor oficiale pentru determinarea aminoacizilor din furajele care conţin mai mult de 10 % aminoacizi.
- metoda de analiză descrisă la punctele 1-10 de mai jos.
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Această metodă permite determinarea aminoacizilor liberi (sintetici şi naturali) şi totali (legaţi în peptide şi liberi) din materii prime furajere, furaje combinate şi preamestecuri care conţin mai puţin de 10 % (5) din fiecare aminoacid, folosind un analizator de aminoacizi. Ea este aplicabilă următorilor aminoacizi: cist(e)ină, metionină, lizină, treonină, alanină, arginină, acid aspartic, acid glutamic, glicină, histidină, izoleucină, leucină, fenilalanină, prolină, serină, tirozină şi valină.
(5)Această metodă nu a fost validată printr-un studiu colaborativ pentru preamestecurile care conţin peste 10 % aditivi furajeri. Cu toate acestea, ea se aplică şi acestor matrice, cu mici modificări corespunzătoare, cu condiţia ca metoda să fie apoi validată intern. Pentru informaţii suplimentare, consultaţi https://ec.europa.eu/jrc/en/eurl/feed-additives/authorisation
Metoda nu deosebeşte diferite săruri ale aminoacizilor şi nu permite diferenţierea între formele D şi L ale aminoacizilor. Ea nu este valabilă pentru determinarea triptofanului sau a analogilor hidroxilaţi ai aminoacizilor.
2.Principiu
2.1.Aminoacizi liberi
Aminoacizii liberi se extrag cu acid clorhidric diluat. Macromoleculele azotate coextrase se precipită cu acid sulfosalicilic şi se îndepărtează prin filtrare. Soluţia filtrată se ajustează la pH-ul de 2,20. Aminoacizii se separă prin cromatografie cu schimb de ioni şi se determină prin reacţie cu ninhidrină cu detecţie fotometrică la 570 nm.
2.2.Aminoacizi totali
Procedura aleasă depinde de aminoacizii care sunt analizaţi. Cist(e)ina şi metionina trebuie oxidate la acid cisteic şi, respectiv, metionin sulfonă înainte de hidroliză. Tirozina trebuie determinată în hidrolizate de eşantioane neoxidate. Toţi ceilalţi aminoacizi enumeraţi la punctul 1 (Obiectiv şi domeniu de aplicare) se pot determina fie în eşantionul oxidat, fie în eşantionul neoxidat.
Oxidarea se realizează la 0 °C cu ajutorul unui amestec de acid performic şi fenol. Reactivul de oxidare în exces se descompune cu disulfit de sodiu. Eşantionul oxidat sau neoxidat se hidrolizează cu acid clorhidric (punctul 3.20) timp de 23 de ore. Hidrolizatul se ajustează la pH-ul de 2,20. Aminoacizii se separă prin cromatografie cu schimb de ioni şi se determină prin reacţie cu ninhidrină folosind detecţia fotometrică la 570 nm (440 nm pentru prolină).
3.Reactivi
Trebuie utilizată apă dublu distilată sau apă de calitate echivalentă (conductivitate < 10 S).

3.1.

Peroxid de hidrogen, g (g/g) = 30 %.

3.2.

Acid formic, g (g/g) = 98-100 %.

3.3.

Fenol.

3.4.

Disulfit de sodiu.

3.5.

Hidroxid de sodiu.

3.6.

Acid 5-sulfosalicilic dihidrat.

3.7.

Acid clorhidric, cu densitate de aproximativ 1,18 g/ml.

3.8.

Citrat trisodic dihidrat.

3.9.

2,2’-tiodietanol (tiodiglicol).

3.10.

Clorură de sodiu.

3.11.

Ninhidrină.

3.12.

Eter de petrol, interval de fierbere 40-60 °C.

3.13.

Norleucină sau alt compus adecvat pentru a fi utilizat ca etalon intern.

3.14.

Azot, gaz (< 10 ppm oxigen).

3.15.

1-octanol.

3.16.

Aminoacizi.

3.16.1.

Substanţele standard ale aminoacizilor enumeraţi la punctul 1 (Obiect şi domeniu de aplicare). Compuşi puri care nu conţin deloc apă de cristalizare. Înainte de utilizare, se usucă în vid cu ajutorul P2O5 sau al H2SO4, timp de 1 săptămână.

3.16.2.

Acid cisteic.

3.16.3.

Metionin sulfonă.

3.17.

Soluţie de hidroxid de sodiu, c = 7,5 mol/l:

Se dizolvă 300 g de NaOH (punctul 3.5) în apă şi se completează până la 1 litru.

3.18.

Soluţie de hidroxid de sodiu, c = 1 mol/l:

Se dizolvă 40 g de NaOH (punctul 3.5) în apă şi se completează până la 1 litru.

3.19.

Soluţie de acid formic-fenol:

Se amestecă 889 g de acid formic (punctul 3.2) cu 111 g de apă şi se adaugă 4,73 g de fenol (punctul 3.3).

3.20.

Mixtură de hidroliză, c = 6 mol HCl/l conţinând 1 g de fenol/l:

Se adaugă 1 g de fenol (punctul 3.3) la 492 ml de HCl (punctul 3.7) şi se completează cu apă până la 1 litru.

3.21.

Mixtură de extracţie, c = 0,1 mol HCl/l conţinând 2 % tiodiglicol: se iau 8,2 ml de HCl (punctul 3.7), se diluează cu aproximativ 900 ml de apă, se adaugă 20 ml de tiodiglicol (punctul 3.9) şi se completează cu apă până la 1 litru (nu se amestecă direct 3.7 şi 3.9).

3.22.

Acid 5-sulfosalicilic dihidrat, = 6 %:

Se dizolvă 60 g de acid 5-sulfosalicilic (punctul 3.6) în apă şi se completează cu apă până la 1 litru.

3.23.

Mixtură de oxidare (acid performic-fenol):

Se amestecă 0,5 ml de peroxid de hidrogen (punctul 3.1) cu 4,5 ml soluţie de acid formic-fenol (punctul 3.19) într-un mic pahar de laborator. Se incubează la 20-30 °C timp de 1 oră pentru a se forma acid performic, apoi se răceşte în baie de apă cu gheaţă (15 min) înainte de a se adăuga la eşantion.

Atenţie: a se evita contactul cu pielea şi a se purta îmbrăcăminte protectoare.

3.24.

Soluţie tampon de citrat, c = 0,2 mol Na+/l, pH 2,20:

Se dizolvă 19,61 g de citrat de sodiu (punctul 3.8), 5 ml de tiodiglicol (punctul 3.9), 1 g de fenol (punctul 3.3) şi 16,50 ml de HCl (punctul 3.7) în aproximativ 800 ml de apă. Se ajustează pH-ul la 2,20. Se completează cu apă până la 1 litru.

3.25.

Soluţii tampon de eluţie, preparate în conformitate cu condiţiile pentru analizorul utilizat (punctul 4.9).

3.26.

Reactiv ninhidrină, preparat în conformitate cu condiţiile pentru analizorul utilizat (punctul 4.9).

3.27.

Soluţii etalon de aminoacizi. Aceste soluţii se păstrează la o temperatură sub 5 °C.

3.27.1.

Soluţie etalon stoc de aminoacizi (punctul 3.16.1).

c = 2,5 mol/ml pentru fiecare, în acid clorhidric.

Se pot obţine din surse comerciale.

3.27.2.

Soluţie etalon stoc de acid cisteic şi metionin sulfonă, c = 1,25 mol/ml.

Se dizolvă 0,2115 g de acid cisteic (punctul 3.16.2) şi 0,2265 g de metionin sulfonă (punctul 3.16.3) în soluţie tampon de citrat (punctul 3.24) într-un balon gradat de 1 litru şi se completează până la semn cu soluţie tampon de citrat. Se păstrează la o temperatură sub 5 °C, nu mai mult de 12 luni. Această soluţie nu se utilizează dacă soluţia etalon stoc (punctul 3.27.1) conţine acid cisteic şi metionin sulfonă.

3.27.3.

Soluţie etalon stoc de etalon intern, de exemplu, norleucină, c = 20 mol/ml.

Se dizolvă 0,6560 g de norleucină (punctul 3.13) în soluţie tampon de citrat (punctul 3.24) într-un balon gradat şi se completează cu soluţie tampon de citrat până la 250 ml. Se păstrează la o temperatură sub 5 °C, nu mai mult de 6 luni.

3.27.4.

Soluţie de calibrare a aminoacizilor standard pentru utilizare cu hidrolizate, c = 5 nmol/50 l de acid cisteic şi metionin sulfonă şi c = 10 nmol/50 l din ceilalţi aminoacizi. Se dizolvă 2,2 g de clorură de sodiu (punctul 3.10) într-un pahar de laborator de 100 ml care conţine 30 ml soluţie tampon de citrat (punctul 3.24). Se adaugă 4,00 ml de soluţie etalon stoc de aminoacizi (punctul 3.27.1), 4,00 ml soluţie etalon stoc de acid cisteic şi metionin sulfonă (punctul 3.27.2) şi 0,50 ml soluţie etalon stoc de etalon intern (punctul 3.27.3), dacă este cazul. Se ajustează pH-ul la valoarea 2,20 cu hidroxid de sodiu (punctul 3.18).

Se transferă cantitativ într-un balon gradat de 50 ml, se completează până la semn cu soluţie tampon de citrat (punctul 3.24) şi se amestecă.

Se păstrează la o temperatură sub 5 °C, nu mai mult de 3 luni.

A se vedea şi observaţiile de la punctul 9.1.

3.27.5.

Soluţie de calibrare a aminoacizilor standard pentru utilizare cu hidrolizate preparată în conformitate cu punctul 5.3.3.1 şi pentru utilizare cu extracte (punctul 5.2). Soluţia de calibrare se prepară în conformitate cu punctul 3.27.4, dar omiţând clorura de sodiu.

Se păstrează la o temperatură sub 5 °C, nu mai mult de 3 luni.

4.Aparatură

4.1.

Balon cu fund rotund de 100 sau 250 ml dotat cu un condensator cu reflux.

4.2.

Sticlă din borosilicat, de 100 ml, cu un dop filetat cu căptuşeală de cauciuc/teflon (de exemplu, Duran, Schott) pentru utilizare în cuptor.

4.3.

Cuptor cu ventilaţie forţată şi un regulator de temperatură cu precizie mai mare de ± 2 oC.

4.4.

pH-metru (cu trei zecimale).

4.5.

Filtru cu membrană (0,22 m).

4.6.

Centrifugă.

4.7.

Evaporator rotativ cu vid.

4.8.

Agitator mecanic sau magnetic.

4.9.

Analizor de aminoacizi sau echipament HPLC cu coloană schimbătoare de ioni, dispozitiv pentru ninhidrină, derivare post-coloană şi detector fotometric.

Coloana este umplută cu răşini de polistiren sulfonat capabile să separe aminoacizii unul de altul, precum şi de materiale care conţin ninhidrină. Fluxul din liniile cu soluţie tampon şi ninhidrină este asigurat de pompe care au o stabilitate a fluxului de ± 0,5 % în perioada care include atât funcţionarea în vederea calibrării standardului, cât şi analiza eşantionului.

În cazul unor analizori de aminoacizi se pot utiliza proceduri de hidrolizare în care hidrolizatul are o concentraţie de sodiu de c = 0,8 mol/l şi conţine întreaga cantitate de acid formic rezidual din etapa de oxidare. Alţi analizori nu oferă o separare satisfăcătoare a anumitor aminoacizi dacă hidrolizatul conţine exces de acid formic şi/sau concentraţii mari de ioni de sodiu. În acest caz, volumul de acid se reduce prin evaporare la aproximativ 5 ml după hidroliză şi înainte de ajustarea pH-ului. Evaporarea se face sub vid, la o temperatură maximă de 40 °C.

5.Procedura
5.1.Pregătirea eşantionului
Eşantionul se macină astfel încât poate trece printr-o sită cu ochiuri de 0,5 mm. Înainte de măcinare, eşantioanele cu un conţinut ridicat de umiditate trebuie fie uscate la aer la o temperatură de maximum 50 °C, fie liofilizate. Eşantioanele cu un conţinut ridicat de substanţe grase se extrag cu eter de petrol (punctul 3.12) înainte de măcinare.
5.2.Determinarea aminoacizilor liberi
Se cântăreşte cu o abatere de 0,2 mg o cantitate adecvată (1-5 g) din eşantionul preparat (punctul 5.1), într-un flacon tip Erlenmeyer şi se adaugă 100,0 ml de extract de mixtură (punctul 3.21). Se agită mixtura timp de 60 de minute cu ajutorul agitatorului mecanic sau magnetic (punctul 4.8). Se lasă să se decanteze sedimentul şi se pipetează 10,0 ml din soluţia supernatantă într-un pahar de laborator de 100 ml.
Se adaugă 5,0 ml de soluţie de acid sulfosalicilic (punctul 3.22) în cursul agitării şi se continuă agitarea cu ajutorul agitatorului magnetic timp de 5 minute. Se filtrează sau se centrifughează supernatantul pentru a se îndepărta orice precipitat. Se introduc 10,0 ml din soluţia rezultată într-un pahar de laborator de 100 ml şi se ajustează pH-ul la valoarea de 2,20 cu ajutorul soluţiei de hidroxid de sodiu (punctul 3.18), se transferă într-un balon gradat de volum adecvat utilizându-se soluţie tampon de citrat (punctul 3.24) şi se completează până la semn cu soluţia tampon (punctul 3.24).
Dacă se utilizează etalon intern, se adaugă 1,00 ml de etalon intern (punctul 3.27.3) pentru fiecare 100 ml de soluţie finală şi se completează până la semn cu soluţie tampon (punctul 3.24).
Se trece la etapa de cromatografie conform punctului 5.4.
Dacă extractele nu se examinează în aceeaşi zi, trebuie păstrate la o temperatură sub 5 °C.
5.3.Determinarea aminoacizilor totali
5.3.1.Oxidare
Se cântăresc cu o abatere de 0,2 mg între 0,1 şi 1 g de eşantion preparat (punctul 5.1) într-un (într-o):
- balon cu fund rotund de 100 ml (punctul 4.1) pentru hidroliză în mediu deschis (punctul 5.3.2.3); sau
- balon cu fund rotund de 250 ml (punctul 4.1) dacă este necesară o concentraţie mică de sodiu (punctul 5.3.3.1); sau
- sticlă de 100 ml dotată cu un dop filetat (punctul 4.2) (pentru hidroliză în mediu închis 5.3.2.4).
Porţia de eşantion cântărită are un conţinut de azot de aproximativ 10 mg şi un conţinut de umiditate de maximum 100 mg.
Se introduce balonul/sticla într-o baie de apă cu gheaţă şi se răceşte la 0 °C, se adaugă 5 ml de mixtură de oxidare (punctul 3.23) şi se amestecă cu ajutorul unei spatule de sticlă cu vârf încovoiat. Se etanşeizează balonul/sticla conţinând spatula cu ajutorul unei pelicule ermetizante, se introduce baia de apă cu gheaţă conţinând recipientul etanşeizat într-un frigider la 0 °C şi se lasă timp de 16 ore. După 16 ore, se scoate din frigider, iar excesul de reactiv de oxidare se descompune prin adăugarea a 0,84 g de disulfit de sodiu (punctul 3.4).
Se trece la 5.3.2.1.
5.3.2.Hidroliza

5.3.2.1.

Hidroliza eşantioanelor oxidate

La eşantioanele oxidate preparate în conformitate cu punctul 5.3.1 se adaugă 25 ml de mixtură de hidroliză (punctul 3.20) având grijă să se spele orice reziduu de eşantion de pe pereţii vasului şi de pe spatulă.

În funcţie de procedura de hidrolizare utilizată, se trece la punctul 5.3.2.3 sau 5.3.2.4.

5.3.2.2.

Hidroliza eşantioanelor neoxidate

Se cântăresc 0,1-1 g de eşantion preparat (punctul 5.1), cu o abatere de 0,2 mg, fie într-un balon cu fund rotund de 100 ml sau 250 ml (punctul 4.1), fie într-o sticlă de 100 ml dotată cu dop filetat (punctul 4.2). Porţia de eşantion cântărit trebuie să aibă un conţinut de azot de aproximativ 10 mg. Se adaugă cu grijă 25 ml de mixtură de hidroliză (punctul 3.20) şi se amestecă cu eşantionul. Se procedează ca la punctul 5.3.2.3 sau 5.3.2.4.

5.3.2.3.

Hidroliza în mediu deschis

Se adaugă 3 mărgele de sticlă în mixtura din balon (preparată conform menţiunilor de la punctul 5.3.2.1 sau 5.3.2.2) şi se fierbe în clocot continuu sub reflux timp de 23 de ore. La încheierea hidrolizei, se spală condensatorul cu 5 ml de soluţie tampon de citrat (punctul 3.24). Se deconectează balonul şi se răceşte într-o baie de apă cu gheaţă.

Se procedează ca la punctul 5.3.3.

5.3.2.4.

Hidroliza în mediu închis

Sticla conţinând mixtura preparată conform punctului 5.3.2.1 sau 5.3.2.2 se introduce în cuptor (punctul 4.3) la 110 °C. În timpul primei ore, pentru a se preveni o creştere progresivă a presiunii (datorată expansiunii substanţelor gazoase) şi pentru a se evita o explozie, se plasează dopul filetat la nivelul extremităţii superioare a vasului. A nu se închide vasul cu dopul respectiv. După o oră, se închide vasul cu dopul respectiv şi se lasă în cuptor (punctul 4.3) timp de 23 de ore. La încheierea hidrolizei, se îndepărtează sticla din cuptor, se scoate cu grijă dopul de la nivelul sticlei, iar aceasta se introduce într-o baie de apă cu gheaţă. Se lasă să se răcească.

În funcţie de procedura de ajustare a pH-ului (punctul 5.3.3), se transferă cantitativ conţinutul sticlei într-un pahar de laborator de 250 ml sau într-un balon cu fund rotund de 250 ml, utilizând soluţie tampon de citrat (punctul 3.24).

Se procedează ca la punctul 5.3.3.

5.3.3.Ajustarea pH-ului
În funcţie de toleranţa la sodiu a analizorului de aminoacizi (punctul 4.9), pentru ajustarea pH-ului se procedează ca la punctul 5.3.3.1 sau 5.3.3.2.

5.3.3.1.

Pentru sistemele cromatografice (punctul 4.9) necesitând o concentraţie de sodiu mică.

Este recomandabil să se utilizeze o soluţie etalon stoc internă (punctul 3.27.3) în cazul în care se folosesc analizori de aminoacizi necesitând o concentraţie mică de sodiu (în cazul în care volumul de acid trebuie redus).

În acest caz, la hidrolizat se adaugă 2,00 ml de soluţie etalon stoc internă (punctul 3.27.3) înainte de evaporare.

La hidrolizatul obţinut conform punctului 5.3.2.3 sau 5.3.2.4 se adaugă 2 picături de 1-octanol (punctul 3.15).

Utilizând un evaporator rotativ (punctul 4.7) se reduce volumul la 5-10 ml în condiţii de vid la 40 °C. Dacă volumul este redus accidental la mai puţin de 5 ml, hidrolizatul trebuie aruncat, iar analiza trebuie repetată.

Se ajustează pH-ul la 2,20 cu ajutorul soluţiei de hidroxid de sodiu (punctul 3.18) şi se procedează ca la punctul 5.3.4.

5.3.3.2.

Pentru toţi ceilalţi analizori de aminoacizi (punctul 4.9)

Hidrolizatele obţinute conform punctului 5.3.2.3 sau 5.3.2.4 se neutralizează parţial prin adăugarea cu grijă, în condiţii de agitare continuă, a 17 ml de soluţie de hidroxid de sodiu (punctul 3.17), asigurându-se că temperatura este menţinută sub 40 °C.

Se ajustează pH-ul la valoarea de 2,20 la temperatura camerei prin utilizarea soluţiei de hidroxid de sodiu (punctul 3.17) şi în cele din urmă a soluţiei de hidroxid de sodiu (punctul 3.18). Se trece la punctul 5.3.4.

5.3.4.Soluţia de eşantion pentru cromatografie
Se transferă cantitativ hidrolizatul cu pH ajustat (punctul 5.3.3.1 sau 5.3.3.2) cu soluţie tampon de citrat (punctul 3.24) într-un balon gradat de 200 ml şi se completează până la semn cu soluţie tampon (punctul 3.24).
Dacă nu s-a utilizat deja un etalon intern, se adaugă 2,00 ml de etalon intern (punctul 3.27.3) şi se completează până la semn cu soluţie tampon de citrat (punctul 3.24). Se amestecă minuţios.
Se trece la etapa cromatografică (punctul 5.4).
Dacă soluţiile de eşantion nu se examinează în aceeaşi zi, ele se păstrează la o temperatură sub 5 °C.
5.4.Cromatografia
Înainte de cromatografie se aduce extractul (punctul 5.2) sau hidrolizatul (punctul 5.3.4) la temperatura camerei. Se agită mixtura şi se filtrează o cantitate potrivită printr-un filtru cu membrană cu orificii de 0,22 m (punctul 4.5). Soluţia limpede rezultată se supune cromatografiei prin schimb ionic, utilizând un analizor de aminoacizi (punctul 4.9).
Injectarea poate fi efectuată manual sau automat. Este important ca aceeaşi cantitate de soluţie ± 0,5 % să fie adăugată în coloană pentru analizarea etaloanelor şi a eşantioanelor cu excepţia situaţiilor în care se utilizează un etalon intern şi ca raporturile sodiu:aminoacizi în soluţiile de etalon şi în cele de eşantion să fie cât mai similare posibil.
În general, frecvenţa manevrelor de calibrare depinde de stabilitatea reactivului ninhidrină şi a sistemului analitic. Etalonul sau eşantionul se diluează cu soluţie tampon de citrat (punctul 3.24) pentru a genera o arie a vârfului pentru etalon de 30-200 % din aria vârfului pentru eşantionul de aminoacid.
Cromatografia aminoacizilor va varia uşor în funcţie de tipul analizorului şi de răşina utilizate. Sistemul ales trebuie să fie capabil să separe aminoacizii unul de altul, precum şi de materiale care conţin ninhidrină. În cursul operaţiilor, sistemul cromatografic generează un răspuns linear la modificările cantităţilor de aminoacizi adăugaţi la coloană.
În cursul etapei cromatografice se aplică rapoartele înălţimii corespunzătoare punctului minim:vârfului menţionate mai jos, în cazul în care se analizează o soluţie echimolară (de aminoacizi analizaţi). Această soluţie echimolară trebuie să conţină cel puţin 30 % din cantitatea maximă de aminoacizi care poate fi măsurată cu precizie cu ajutorul sistemului analizor de aminoacizi (punctul 4.9).
Pentru separarea treoninei-serinei, în cazul suprapunerii a doi aminoacizi, raportul punct minim/vârf corespunzător aminoacidului situat mai jos pe cromatogramă nu trebuie să depăşească 2:10. [dacă se determină doar cist(e)ina, metionina, treonina şi lizina, separarea insuficientă a vârfurilor învecinate va influenţa în mod negativ determinarea]. Pentru toţi ceilalţi aminoacizi, separarea trebuie să fie mai bună de 1:10.
Sistemul trebuie să asigure că lizina se separă de «artefactele de lizină» şi de ornitină.
6.Calculul rezultatelor
Aria vârfului pentru eşantion şi etalon se măsoară pentru fiecare aminoacid în parte, iar cantitatea (X) se calculează în g de aminoacid per kg de eşantion.
Dacă se utilizează un etalon intern se multiplică cu:
D/C

A

=

aria vârfului, hidrolizat sau extract

B

=

aria vârfului, soluţia etalon de calibrare

C

=

aria vârfului, etalon intern în hidrolizat sau extract

D

=

aria vârfului, etalon intern, soluţia etalon de calibrare

M

=

greutatea molară a aminoacidului determinat

c

=

concentraţia de standard în mol/ml

m

=

greutatea eşantionului (g) (corectată pentru a obţine greutatea originală dacă produsul este uscat sau degresat)

V

=

total hidrolizat în ml (punctul 5.3.4) sau volumul de diluţie total calculat pentru extract, în ml (6.1)

Cistina şi cisteina se determină amândouă ca acid cisteic în hidrolizate de eşantion oxidat, dar se calculează ca cistină (C6H12N2O4S2, M 240,30 g/mol) folosind M 120,15 g/mol (= 0,5 × 240,30 g/mol).
Metionina se determină ca metionin sulfonă în hidrolizate de eşantion oxidat, dar se calculează ca metionină folosind M pentru metionină: 149,21 g/mol.
Metionina liberă adăugată se determină după extracţie ca metionină, pentru calculare folosindu-se aceeaşi M.

6.1.

Volumul total de diluţie al extractelor (F) pentru determinarea aminoacizilor liberi (punctul 5.2) se calculează după cum urmează:

V

=

volumul extractului final

7.Evaluarea metodei
Metoda a fost testată prin comparaţii la nivel internaţional în 1990 utilizând patru furaje diferite (furaje combinate pentru porcine, furaje combinate pentru pui de carne, concentrate proteice, preamestecuri).
Notă: Metoda a fost testată în cadrul unui al doilea studiu de comparare interlaboratoare la nivel internaţional în 2003 utilizând perechi de duplicate oarbe pe eşantioane de furaje de finisare pentru pui de carne, furaje starter pentru pui de carne, porumb, făină de peşte şi făină de păsări de curte. Pentru detalii, a se vedea EN ISO 13903.
Rezultatele studiului de comparare interlaboratoare din 1990, după eliminarea valorilor extreme, exprimate ca medie şi deviaţie standard sunt prezentate în tabelele de la acest punct:
Medii în g/kg

Material de referinţă

Aminoacid

Treonină

Cist(e)ină

Metionină

Lizină

Furaje mixte pentru porcine

6,94

n = 15

3,01

n = 17

3,27

n = 17

9,55

n = 13

Furaj combinat pentru pui de carne

9,31

n = 16

3,92

n = 18

5,08

n = 18

13,93

n = 16

Concentrat proteic

22,32

n = 16

5,06

n = 17

12,01

n = 17

47,74

n = 15

Preamestec

58,42

n = 16

-

90,21

n = 16

98,03

n = 16

n = număr de laboratoare participante

7.1.Repetabilitate
Repetabilitatea exprimată ca «deviaţie standard intralaborator» a comparaţiei interlaboratoare din tabelul de mai sus este redată în tabelele de mai jos:
Coeficient de variaţie (%) pentru repetabilitate (CVr)

Material de referinţă

Aminoacid

Treonină

Cist(e)ină

Metionină

Lizină

Furaje mixte pentru porcine

1,9

n = 15

3,3

n = 17

3,4

n = 17

2,8

n = 13

Furaj combinat pentru pui de carne

2,1

n = 16

2,8

n = 18

3,1

n = 18

2,1

n = 16

Concentrat proteic

2,7

n = 16

2,6

n = 17

2,2

n = 17

2,4

n = 15

Preamestec

2,2

n = 16

-

2,4

n = 16

2,1

n = 16

n = număr de laboratoare participante

7.2.Reproductibilitate
Rezultatele pentru deviaţia standard interlaboratoare pentru comparaţia interlaboratoare menţionată mai sus sunt prezentate în tabelul de mai jos:
Coeficient de variaţie (%) pentru reproductibilitate (CVR)

Material de referinţă

Aminoacid

Treonină

Cist(e)ină

Metionină

Lizină

Furaje mixte pentru porcine

4,1

n = 15

9,9

n = 17

7,0

n = 17

3,2

n = 13

Furaj combinat pentru pui de carne

5,2

n = 16

8,8

n = 18

10,9

n = 18

5,4

n = 16

Concentrat proteic

3,8

n = 16

12,3

n = 17

13,0

n = 17

3,0

n = 15

Preamestec

4,3

n = 16

-

6,9

n = 16

6,7

n = 16

n = număr de laboratoare participante

8.Utilizarea materialelor de referinţă
Aplicarea corectă a metodei se verifică prin repetarea măsurătorilor pentru materialele de referinţă certificate, atunci când acestea sunt disponibile. Se recomandă calibrarea cu soluţie de calibrare pentru aminoacid certificată.
9.Observaţii

9.1.

Din cauza diferenţelor dintre analizorii de aminoacizi, concentraţiile finale ale soluţiilor de calibrare pentru aminoacizii standard (a se vedea punctele 3.27.4 şi 3.27.5) şi pentru hidrolizat (a se vedea punctul 5.3.4) se consideră orientative.

Intervalul răspunsului liniar al aparatului trebuie verificat pentru toţi aminoacizii.

Soluţia etalon se diluează cu soluţie tampon de citrat pentru a genera arii de vârf situate la mijlocul intervalului.

9.2.

În cazul în care pentru analizarea hidrolizatelor se foloseşte aparatură de cromatografie lichidă de înaltă performanţă, condiţiile experimentale trebuie optimizate în conformitate cu recomandările fabricantului.

9.3.

Prin aplicarea metodei la furajele combinate sau la preamestecurile care conţin peste 1 % clorură (concentrate, furaje minerale, furaje complementare) poate apărea o subestimare a metioninei, ceea ce necesită un tratament special.

10.Criterii de performanţă
Compilarea rezultatelor (cu excepţia tirozinei) care provin din cele două studii colaborative (din 1990 raportate la punctul 7 de mai sus şi din 2005 raportate în EN/ISO 13903) oferă următoarele criterii de repetabilitate şi reproductibilitate. Este posibil ca valorile obţinute din aceste două studii interlaboratoare să nu fie aplicabile altor intervale de concentraţie şi matrice decât cele date.
10.1.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări efectuate pe acelaşi eşantion în acelaşi laborator şi de către acelaşi laborant nu trebuie să depăşească:
- 6 % faţă de valoarea superioară, pentru aminoacizii totali în cazul glicinei, alaninei, lizinei, prolinei, acidului glutamic, izoleucinei şi histidinei;
- 8 % faţă de valoarea superioară, pentru aminoacizii totali în cazul treoninei, fenilalaninei, metioninei, acidului aspartic şi leucinei;
- 10 % faţă de valoarea superioară, pentru aminoacizii totali în cazul argininei şi valinei;
- 12 % în raport cu valoarea superioară, pentru aminoacizii totali în cazul serinei;
- 15 % în raport cu valoarea superioară, pentru aminoacizii totali în cazul cist(e)inei.
10.2.Reproductibilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări efectuate pe acelaşi eşantion în laboratoare diferite şi/sau efectuate de laboranţi diferiţi nu trebuie să depăşească:
- 15 % faţă de valoarea superioară, pentru aminoacizii totali în cazul glicinei, alaninei şi treoninei;
- 20 % faţă de valoarea superioară, pentru aminoacizii totali în cazul lizinei, prolinei, fenilalaninei, metioninei şi acidului aspartic;
- 22 % faţă de valoarea superioară, pentru aminoacizii totali în cazul acidului glutamic şi leucinei;
- 27 % în raport cu valoarea superioară, pentru aminoacizii totali în cazul argininei;
- 32 % în raport cu valoarea superioară, pentru aminoacizii totali în cazul izoleucinei;
- 35 % faţă de valoarea superioară, pentru aminoacizii totali în cazul valinei şi serinei;
- 40 % în raport cu valoarea superioară, pentru aminoacizii totali în cazul histidinei;
- 50 % în raport cu valoarea superioară, pentru aminoacizii totali în cazul cist(e)inei.
(F)DETERMINAREA TRIPTOFANULUI
Metodele de analiză utilizate pentru determinarea triptofanului sunt:
- EN ISO 13904 Hrană pentru animale - Determinarea conţinutului de triptofan;
- metoda de analiză descrisă la punctele 1-9 de mai jos.
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Metoda permite determinarea în furaje a triptofanului total şi liber. Ea nu face distincţie între formele D şi L.
2.Principiu
Pentru determinarea triptofanului total, eşantionul se hidrolizează în mediu bazic cu o soluţie de hidroxid de bariu saturată şi se încălzeşte la 110 °C timp de 20 de ore. După hidroliză, se adaugă etalon intern.
Pentru determinarea triptofanului liber, eşantionul se extrage în mediu uşor acid în prezenţa etalonului intern.
Triptofanul şi etalonul intern din hidrolizat sau din extract se determină prin HPLC prin detectarea fluorescenţei.
3.Reactivi

3.1.

Se utilizează apă dublu distilată sau apă de calitate echivalentă (conductivitate < 10 S/cm).

3.2.

Substanţă etalon: triptofan (puritate/conţinut > = 99 %), uscat sub vid pe pentoxid fosforic.

3.3.

Substanţă etalon intern: -metil-triptofan (puritate/conţinut > = 99 %), uscat sub vid pe pentoxid fosforic.

3.4.

Hidroxid de bariu octahidratat (se evită expunerea excesivă la aer a Ba(OH)2.8 H2O pentru a se evita formarea de BaCO3, care ar putea perturba determinarea) (a se vedea observaţia de la punctul 9.3).

3.5.

Hidroxid de sodiu.

3.6.

Acid ortofosforic, g (g/g) = 85 %.

3.7.

Acid clorhidric, 20 1,19 g/ml.

3.8.

Metanol, de calitate HPLC.

3.9.

Eter de petrol, interval de fierbere 40-60 °C.

3.10.

Soluţie de hidroxid de sodiu, c = 1 mol/l

Se dizolvă 40,0 g de NaOH (punctul 3.5) în apă şi se completează până la 1 litru cu apă (punctul 3.1).

3.11.

Acid clorhidric, c = 6 mol/l:

Se iau 492 ml HCl (punctul 3.7) şi se completează până la 1 litru cu apă.

3.12.

Acid clorhidric, c = 1 mol/l:

Se iau 82 ml HCl (punctul 3.7) şi se completează până la 1 litru cu apă.

3.13.

Acid clorhidric, c = 0,1 mol/l:

Se iau 8,2 ml HCl (punctul 3.7) şi se completează până la 1 litru cu apă.

3.14.

Acid ortofosforic, c = 0,5 mol/l:

Se iau 34 ml de acid ortofosforic (punctul 3.6) şi se completează până la 1 litru cu apă (punctul 3.1).

3.15.

Soluţie concentrată de triptofan (punctul 3.2), c = 2,50 mol/ml:

Într-un balon gradat de 500 ml se dizolvă 0,2553 g de triptofan (punctul 3.2) în acid clorhidric (punctul 3.13) şi se completează până la semn cu acid clorhidric (punctul 3.13). Se păstrează la - 18 °C timp de maximum 4 săptămâni.

3.16.

Soluţie etalon intern concentrată, c = 2,50 mol/ml:

Într-un balon gradat de 500 ml se dizolvă 0,2728 g de -metil-triptofan (punctul 3.3) în acid clorhidric (punctul 3.13) şi se completează până la semn cu acid clorhidric (punctul 3.13). Se păstrează la - 18 °C timp de maximum 4 săptămâni.

3.17.

Soluţie etalon de calibrare pentru triptofan şi etalon intern:

Se iau 2,00 ml din soluţia concentrată de triptofan (punctul 3.15) şi 2,00 ml din soluţia concentrată de etalon intern (-metil-triptofan) (punctul 3.16). Se diluează cu apă (punctul 3.1) şi metanol (punctul 3.8) până se ajunge la un volum aproximativ egal şi la aproximativ aceeaşi concentraţie de metanol (10-30 %) ca şi hidrolizatul final.

Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare.

În timpul preparării se protejează de lumina solară directă.

3.18.

Acid acetic

3.19.

1,1,1-triclor-2-metil-2-propanol.

3.20.

Etanolamină g (g/g) > 98 %.

3.21.

1 g de soluţie de 1,1,1-triclor-2-metil-2-propanol (punctul 3.19) în 100 ml de metanol (punctul 3.8).

3.22.

Fază mobilă pentru HPLC: 3,00 g acetic acid (punctul 3.18) + 900 ml apă (punctul 3.1) + 50,0 ml soluţie (punctul 3.21) de 1,1,1-triclor-2-metil-2-propanol (punctul 3.19) în metanol (punctul 3.8) (1 g/100 ml). Se ajustează pH-ul la valoarea 5,00 utilizând etanolamină (punctul 3.20). Se completează până la 1 000 ml cu apă (punctul 3.1).

4.Aparatură

4.1.

Echipament de HPLC cu detector spectrofluorometric.

4.2.

Coloană pentru cromatografie lichidă, 125 mm × 4 mm, C18, particule de 3 m sau echivalent.

4.3.

pH-metru.

4.4.

Vas de polipropilenă, cu capacitate de 125 ml, cu gât larg şi dop filetat.

4.5.

Filtru cu membrană, 0,45 m.

4.6.

Autoclavă, 110 (± 2) °C, 1.4 (± 0,1) bar.

4.7.

Agitator mecanic sau magnetic.

4.8.

Mixer Vortex.

5.Procedura
5.1.Prepararea eşantioanelor
Eşantionul se macină astfel încât poate trece printr-o sită cu ochiuri de 0,5 mm. Înainte de măcinare, eşantioanele cu un conţinut ridicat de umiditate trebuie fie uscate la aer la o temperatură de maximum 50 °C, fie liofilizate. Înainte de măcinare, eşantioanele cu un conţinut ridicat de substanţe grase se extrag cu eter de petrol (punctul 3.9).
5.2.Determinarea triptofanului liber (extract)
Se cântăreşte cu o abatere de 1 mg o cantitate adecvată (1-5 g) din eşantionul preparat (punctul 5.1), într-un flacon tip Erlenmeyer. Se adaugă 100,0 ml de acid clorhidric (punctul 3.13) şi 5,00 ml din soluţia etalon intern concentrată (punctul 3.16). Se agită sau se amestecă timp de 60 de minute cu ajutorul unui agitator mecanic sau al unui amestecător magnetic (punctul 4.7). Se lasă să se decanteze sedimentul şi se pipetează 10,0 ml din soluţia supernatantă într-un pahar de laborator. Se adaugă 5 ml de acid ortofosforic (punctul 3.14). Se ajustează pH-ul la valoarea 3 utilizând hidroxid de sodiu (punctul 3.10). Se adaugă suficient metanol (punctul 3.8) pentru a obţine o concentraţie de metanol în volumul final de 10-30 %. Se transferă într-un balon gradat de volum corespunzător şi se diluează cu apă până la un volum necesar pentru cromatografie (aproximativ acelaşi volum ca şi soluţia etalon de calibrare (punctul 3.17).
Se filtrează câţiva ml de soluţie printr-un filtru cu membrană cu orificii de 0,45 m (punctul 4.5) înainte de a se injecta în coloana HPLC. Se trece la etapa de cromatografie conform punctului 5.4.
Soluţia etalon şi extractele se protejează de lumina solară directă. Dacă analizarea extractelor nu este posibilă în aceeaşi zi, ele pot fi depozitate la 5 °C, cel mult 3 zile.
5.3.Determinarea triptofanului total (hidrolizat)
Se cântăresc cu o abatere de 0,2 mg între 0,1 şi 1 g din eşantionul preparat (punctul 5.1) într-un vas de polipropilenă (punctul 4.4). Porţia de eşantion cântărit trebuie să aibă un conţinut de azot de aproximativ 10 mg. Se adaugă 8,4 g de hidroxid de bariu octahidrat (punctul 3.4) şi 10 ml de apă. Se amestecă într-un mixer Vortex (punctul 4.8) sau într-un amestecător magnetic (punctul 4.7). Magnetul învelit în teflon se lasă în amestec. Se spală pereţii vasului cu 4 ml de apă. Se pune dopul filetat şi se închide vasul neermetic. Se transferă într-o autoclavă (punctul 4.6) cu apă clocotită şi se expun la vapori de apă timp de 30-60 de minute. Se închide autoclava şi se autoclavează la 110 (± 2) °C timp de 20 de ore.
Înainte de a deschide autoclava se reduce temperatura la o valoare imediat sub 100 °C. Pentru a evita cristalizarea Ba(OH)2.8 H2O, se adaugă la amestecul cald 30 ml apă la temperatura camerei. Se agită sau se amestecă uşor. Se adaugă 2,00 ml din soluţia etalon intern concentrată (-metil-triptofan) (punctul 3.16). Se răcesc vasele într-o baie de apă/gheaţă timp de 15 minute.
Apoi, se adaugă 5 ml de acid ortofosforic (punctul 3.14). Se menţine vasul în baia de răcire şi se neutralizează cu HCl (punctul 3.11) amestecând continuu, apoi se ajustează pH-ul la valoarea 3,0 utilizând HCl (punctul 3.12). Se adaugă suficient metanol pentru a obţine o concentraţie de metanol în volumul final de 10-30 %. Se transferă într-un balon gradat de volum corespunzător şi se diluează cu apă până la volumul definit necesar pentru cromatografie (de exemplu 100 ml). Adăugarea de metanol nu provoacă precipitare.
Se filtrează câţiva ml de soluţie printr-un filtru cu membrană cu orificii de 0,45 m (punctul 4.5) înainte de a se injecta în coloana HPLC. Se trece la etapa de cromatografie conform punctului 5.4.
Soluţia etalon şi hidrolizatele se protejează de lumina solară directă. Dacă analizarea hidrolizatelor nu este posibilă în aceeaşi zi, ele pot fi depozitate la 5 °C, cel mult 3 zile.
5.4.Determinarea prin HPLC
Următoarele condiţii pentru eluţia izocratică sunt oferite în scop orientativ; se pot aplica alte condiţii cu condiţia ca acestea să determine rezultate echivalente (a se vedea, de asemenea, observaţiile de la punctele 9.1 şi 9.2):

Cromatografie lichidă coloană (punctul 4.2):

125 mm × 4 mm, C18, particule de 3 m sau echivalent

Temperatura coloanei:

Temperatura camerei

Faza mobilă (punctul 3.22):

3,00 g acetic acid (punctul 3.18) + 900 ml apă (punctul 3.1) + 50,0 ml soluţie (punctul 3.21) de 1,1,1-triclor-2-metil-2-propanol (punctul 3.19) în metanol (punctul 3.8) (1 g/100 ml). Se ajustează pH-ul la valoarea 5,00 utilizând etanolamină (punctul 3.20). Se completează până la 1 000 ml cu apă (punctul 3.1)

Debit:

1 ml/min

Timpul total de desfăşurare:

aprox. 34 de minute

Lungimea undei de detecţie:

excitaţie: 280 nm, emisie: 356 nm.

Volum de injecţie

20 l

6.Calculul rezultatelor
Se calculează cantitatea de triptofan (X), în g per 100 g de eşantion.

A

=

aria vârfului etalonului intern, soluţia etalon de calibrare (punctul 3.17)

B

=

suprafaţa vârfului pentru triptofan, extract (punctul 5.2) sau hidrolizat (punctul 5.3)

V1

=

volumul în ml (2 ml) al soluţiei concentrate de triptofan (punctul 3.15) adăugată la soluţia de calibrare (punctul 3.17)

c

=

concentraţia în mol/ml (= 2,50) a soluţiei concentrate de triptofan (punctul 3.15) adăugată la soluţia de calibrare (punctul 3.17)

V2

=

volumul în ml al soluţiei etalon intern concentrate (punctul 3.16) adăugată la extract (punctul 5.2) (= 5,00 ml) sau la hidrolizat (punctul 5.3) (= 2,00 ml)

C

=

aria vârfului etalonului intern, extract (punctul 5.2) sau hidrolizat (punctul 5.3)

D

=

aria vârfului pentru triptofan, soluţia etalon de calibrare (punctul 3.17)

V3

=

volumul în ml (= 2,00 ml) al soluţiei de etalon intern concentrate (punctul 3.16) adăugată la soluţia etalon de calibrare (punctul 3.17)

m

=

greutatea eşantionului în g (corectată pentru a obţine greutatea originală dacă produsul este uscat şi/sau degresat)

M

=

masa molară a triptofanului (= 204,23 g/mol).

7.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări paralele realizate pe acelaşi eşantion nu trebuie să depăşească 10 % din rezultatul cel mai mare.
8.Rezultatele unui studiu colaborativ
S-a efectuat un studiu colaborativ la nivelul UE (a 4-a comparaţie interlaboratoare) în care au fost analizate trei eşantioane de către 12 laboratoare pentru a certifica metoda de hidroliză. Fiecare eşantion a fost supus la cinci analize. Rezultatele sunt prezentate în tabelul de mai jos:

Eşantion 1

Furaje pentru porcine

Eşantion 2

Furaje pentru porcine suplimentate cu L-triptofan

Eşantion 3

Furaje concentrate pentru porcine

L

12

12

12

n

Medie (g/kg)

50

2,42

55

3,40

50

4,22

sr [g/kg]

0,05

0,05

0,08

r (g/kg)

0,14

0,14

0,22

CVr [%]

1,9

1,6

1,9

SR [g/kg]

0,15

0,20

0,09

R [g/kg]

0,42

0,56

0,25

CVR [%]

6,3

6,0

2,2

L = numărul de laboratoare care au transmis rezultate

n = numărul de rezultate individuale reţinute după eliminarea extremelor (identificate prin testele Cochran, Dixon pentru extreme)

sr = deviaţia standard a repetabilităţii

SR = deviaţia standard a reproductibilităţii

r = repetabilitate

R = reproductibilitate

CVr = coeficientul de variaţie a repetabilităţii, %

CVR = coeficientul de variaţie a reproductibilităţii, %

S-a efectuat un alt studiu colaborativ la nivelul UE (a 3-a comparaţie interlaboratoare) în care au fost analizate două eşantioane de către 13 laboratoare pentru a certifica metoda de extracţie a triptofanului liber. Fiecare eşantion a fost supus la cinci analize. Rezultatele sunt prezentate în tabelul de mai jos:

Eşantion 4

Amestec de grâu cu soia

Eşantion 5

Amestec de grâu cu soia (= eşantion 4) adăugat cu triptofan (0,457 g/kg)

L

n

12

55

12

60

Medie (g/kg)

0,391

0,931

sr [g/kg]

0,005

0,012

r (g/kg)

0,014

0,034

CVr [%]

1,34

1,34

SR [g/kg]

0,018

0,048

R [g/kg]

0,050

0,134

CVR [%]

4,71

5,11

L = numărul de laboratoare care au transmis rezultate

n = numărul de rezultate individuale reţinute după eliminarea extremelor (identificate prin testele Cochran, Dixon pentru extreme)

sr = deviaţia standard a repetabilităţii

SR = deviaţia standard a reproductibilităţii

r = repetabilitate

R = reproductibilitate

CVr = coeficientul de variaţie a repetabilităţii, %

CVR = coeficientul de variaţie a reproductibilităţii, %

S-a efectuat un alt studiu de comparaţie interlaboratoare la nivelul UE în care au fost analizate patru eşantioane de către 7 laboratoare cu scopul de a certifica metoda de hidroliză pentru triptofan. Rezultatele sunt prezentate mai jos. Fiecare eşantion a fost supus la cinci analize.

Eşantion 1

Furaje mixte pentru porcine (CRM 117)

Eşantion 2

Făină de peşte cu conţinut mic de grăsimi

(CRM 118)

Eşantion 3

Făină din soia

(CRM 119)

Eşantion 4

Lapte praf degresat

(CRM 120)

L

7

7

7

7

n

25

30

30

30

Medie (g/kg)

2,064

8,801

6,882

5,236

sr [g/kg]

0,021

0,101

0,089

0,040

r (g/kg)

0,059

0,283

0,249

0,112

CVr [%]

1,04

1,15

1,30

0,76

SR [g/kg]

0,031

0,413

0,283

0,221

R [g/kg]

0,087

1,156

0,792

0,619

CVR [%]

1,48

4,69

4,11

4,22

L = numărul de laboratoare care au transmis rezultate

n = numărul de rezultate individuale reţinute după eliminarea extremelor (identificate prin testele Cochran, Dixon pentru extreme)

sr = deviaţia standard a repetabilităţii

SR = deviaţia standard a reproductibilităţii

r = repetabilitate

R = reproductibilitate

CVr = coeficientul de variaţie a repetabilităţii, %

CVR = coeficientul de variaţie a reproductibilităţii, %

9.Observaţii

9.1.

Respectarea următoarelor condiţiile speciale de cromatografie poate conduce la o mai bună separare a triptofanului de -metil-triptofan.

Eluţie izocratică urmată de curăţarea coloanei prin gradient:

Coloană pentru cromatografie lichidă:

125 mm × 4 mm, C18, particule de 5 m sau echivalent

Temperatura coloanei:

32 °C

Fază mobilă:

A: 0,01 mol/l KH2PO4/metanol, 95 + 5 (V+V).

B: Metanol

Programul gradientului:

0 min 100 % A

0 % B

15 min 100 % A

0 % B

17 min

60 % A 40 % B

19 min 60 % A

40 % B

21 min 100 % A

0 % B

33 min 100 % A

0 % B

Debit:

1,2 ml/min

Timpul total de desfăşurare:

aproximativ 33 de minute

9.2.

Cromatografia variază în funcţie de tipul de HPLC şi de materialul utilizat la umplerea coloanei. Sistemul ales trebuie să fie capabil să stabilească o separare iniţială de referinţă între triptofan şi etalonul intern. În plus, este important ca produşii de degradare să fie bine separaţi de triptofan şi de etalonul intern. Se efectuează o operaţie de probă pe hidrolizate fără etalon intern pentru a verifica prezenţa impurităţilor la nivelul liniei de bază corespunzătoare etalonului intern. Este important ca durata eluţiei pentru toţi produşii de degradare să fie suficient de lungă, altfel prezenţa unor vârfuri de eluţie întârziate poate interfera cu operaţiile ulterioare de cromatografie.

În cursul operaţiilor, sistemul cromatografic oferă un răspuns linear. Acest răspuns linear se măsoară în condiţii de concentraţie constantă (normalul) a etalonului intern şi de concentraţii variabile a triptofanului. Este important că înălţimea vârfurilor pentru triptofan şi pentru etalonul intern să se situeze în gama lineară a sistemului HPLC/fluorescenţă. Dacă vârfurile pentru triptofan şi/sau pentru etalonul intern sunt prea joase sau prea înalte, analiza se repetă cu un eşantion de o altă dimensiune şi/sau un volum final modificat.

9.3.Hidroxid de bariu
Cu timpul, hidroxidul de bariu devine mai dificil de dizolvat. Aceasta generează o soluţie lipsită de limpezime pentru determinarea HPLC, ceea ce poate duce la rezultate slabe pentru triptofan.
(G)DETERMINAREA CONŢINUTULUI DE ULEIURI ŞI GRĂSIMI BRUTE
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Prezenta metodă este destinată determinării în furaje a conţinutului de uleiuri şi grăsimi brute.
Utilizarea celor două proceduri descrise mai jos depinde de natura şi compoziţia furajului şi de motivul efectuării analizei.
Pentru determinarea uleiurilor şi grăsimilor brute din seminţele oleaginoase şi din fructele oleaginoase, precum şi din hrana pentru animale în care conţinutul de uleiuri/grăsimi este mai mare de 15 %, extracţia trebuie efectuată prin procedura A şi reextracţia prin procedura B (punctul 5.3).
1.1.Procedura A - Uleiuri şi grăsimi brute care pot fi extrase direct
Această metodă este aplicabilă materiilor prime furajere de origine vegetală, cu excepţia celor incluse în sfera de aplicare a procedeului B.
1.2.Procedura B - Uleiuri şi grăsimi brute totale
Această metodă este aplicabilă materiilor prime furajere de origine animală şi tuturor furajelor combinate. Ea trebuie folosită pentru toate materiile din care uleiurile şi grăsimile nu pot fi extrase complet fără hidroliză prealabilă (de exemplu, gluten, drojdie, proteine din cartofi şi produse supuse unor procese cum ar fi extrudarea, transformarea în fulgi şi încălzirea).
1.3.Interpretarea rezultatelor
În toate cazurile în care se obţine un rezultat superior folosind procedura B comparativ cu cel obţinut prin folosirea procedurii A, rezultatul obţinut prin procedura B se acceptă ca valoarea reală.
2.Principiu
2.1.Procedura A
Eşantionul se extrage cu eter de petrol. Solventul se îndepărtează prin distilare, iar reziduul se usucă şi se cântăreşte.
2.2.Procedura B
Eşantionul se tratează la cald cu acid clorhidric. Amestecul se răceşte şi se filtrează. Reziduul se spală şi se usucă, apoi se supune determinării în conformitate cu procedura A.
3.Reactivi

3.1.

Eter de petrol, interval de fierbere: 40-60 °C. Indicele de brom trebuie să fie mai mic de 1, iar reziduul după evaporare sub 2 mg/100 ml.

3.2.

Sulfat de sodiu, anhidru.

3.3.

Acid clorhidric, c = 3 mol/l

3.4.

Agent de filtrare, de exemplu Kieselguhr, Hyflo-supercel.

4.Aparatură

4.1.

Aparat de extracţie. Dacă este dotat cu un sifon (aparat Soxhlet), rata refluxului este astfel încât să producă aproximativ 10 cicluri pe oră; dacă aparatul este de tip fără sifon, rata refluxului este de aproximativ 10 ml pe minut.

4.2.

Cartuşe de extracţie, lipsite de materie solubilă în eter de petrol şi cu o porozitate compatibilă cu cerinţele de la punctul 4.1.

4.3.

Cuptor de uscare, fie cu vid reglat la 75 ± 3 °C, fie cu aer reglat la 100 ± 3 °C.

5.Procedura
5.1.Procedura A (a se vedea punctul 8.1)
Se cântăresc 5 g de eşantion cu o abatere de 1 mg, se transferă într-un cartuş de extracţie (punctul 4.2) şi se acoperă cu un tampon de vată lipsit de grăsimi.
Cartuşul se introduce într-un extractor (punctul 4.1) şi se extrage timp de şase ore cu eter de petrol (punctul 3.1). Se colectează extractul de eter de petrol într-un vas uscat şi cântărit, care conţine fragmente de piatră ponce (6).
(6)În cazul în care uleiurile sau grăsimile trebuie supuse unor teste de calitate ulterioare, fragmentele de piatră ponce se înlocuiesc cu mărgele de sticlă.
Solventul se îndepărtează prin distilare. Se usucă reziduul, păstrând vasul timp de o oră şi jumătate în cuptorul de uscare (punctul 4.3). Se lasă să se răcească într-un desicator şi se cântăreşte. Se usucă din nou timp de 30 de minute pentru a asigura că greutatea uleiurilor şi grăsimilor rămâne constantă (pierderea de greutate între două cântăriri succesive trebuie să fie mai mică sau egală cu 1 mg).
5.2.Procedura B
Se cântăresc 2,5 g de eşantion cu o abatere de 1 mg (a se vedea punctul 8.2), se introduc într-un pahar de laborator de 400 ml sau într-un flacon tip Erlenmeyer de 300 ml şi se adaugă 100 ml de acid clorhidric (punctul 3.3) şi fragmente de piatră ponce. Se acoperă paharul de laborator cu o sticlă de ceas sau se conectează un condensator cu reflux la flaconul tip Erlenmeyer. Se aduce amestecul la fierbere uşoară deasupra unei flăcări mici sau pe o plită şi se păstrează în această stare timp de o oră. Trebuie să se împiedice lipirea produsului de părţile laterale ale recipientului.
Se răceşte şi se adaugă o cantitate de adjuvant de filtrare (punctul 3.4) suficientă pentru a evita orice pierdere de ulei şi grăsime în timpul filtrării. Se filtrează printr-un filtru de hârtie dublă, umezită şi lipsită de grăsimi. Se spală reziduul în apă rece până se obţine un filtrat neutru. Se verifică filtratul ca să nu conţină deloc uleiuri şi grăsimi. Prezenţa acestora indică faptul că eşantionul trebuie extras cu eter de petrol, folosind procedura A, înainte de hidroliză.
Se aşază filtrul de hârtie dublă care conţine reziduul pe o sticlă de ceas şi se usucă timp de o oră şi jumătate în cuptorul cu aer (punctul 4.3) la 100 ± 3 °C.
Se aşază filtrul de hârtie dublă care conţine reziduul uscat într-un cartuş de extracţie (punctul 4.2) şi se acoperă cu un tampon de vată lipsit de grăsimi. Cartuşul se introduce într-un extractor (punctul 4.1) şi se procedează astfel cum se indică la paragrafele doi şi trei de la punctul 5.1.
5.3.Procedura A şi reextragerea prin procedura B.
Pentru determinarea uleiurilor şi grăsimilor brute din seminţele oleaginoase şi din fructele oleaginoase, precum şi din hrana pentru animale în care conţinutul de uleiuri/grăsimi este mai mare de 15 %, extracţia trebuie efectuată prin procedura A şi reextracţia prin procedura B.
Aceasta înseamnă că, după extracţia cu eter de petrol (procedura A), reziduul sau o porţiune din reziduu se reextrage cu acid clorhidric (procedura B). Conţinutul de uleiuri şi de grăsimi brute este suma rezultatelor procedurilor A şi B.
6.Exprimarea rezultatului
Greutatea reziduului se exprimă ca procent din eşantion.
7.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări paralele efectuate pe acelaşi eşantion de către acelaşi laborant nu depăşeşte:
- 0,2 % în valoare absolută, pentru un conţinut în uleiuri şi grăsimi brute mai mic de 5 %;
- 4,0 % relativ la rezultatul cel mai mare pentru un conţinut cuprins între 5 şi 10 %;
- 0,4 % în valoare absolută, pentru un conţinut mai mare de 10 %.
8.Observaţii

8.1.

Pentru produse cu un conţinut mare de uleiuri şi grăsimi, care sunt dificil de măcinat sau care sunt improprii prelevării unui eşantion de testare redus omogen, se procedează după cum urmează.

Se cântăresc 20 g de eşantion cu o abatere de 1 mg şi se amestecă cu o cantitate de 10 g sau mai mare de sulfat de sodiu anhidru (punctul 3.2). Se extrage cu eter de petrol (punctul 3.1) astfel cum se indică la punctul 5.1. Se completează extractul obţinut până la 500 ml cu eter de petrol (punctul 3.1) şi se amestecă. Se iau 50 ml de soluţie şi se introduc într-un vas mic, uscat şi cântărit, care conţine fragmente de piatră ponce. Se elimină solventul prin distilare, se usucă şi se procedează astfel cum se indică la ultimul paragraf al punctului 5.1.

Se elimină solventul din reziduul de extracţie rămas în cartuş, se macină reziduul până la o fineţe de 1 mm, se reintroduce în cartuşul de extracţie (nu se adaugă sulfat de sodiu) şi se procedează astfel cum se indică la punctul 5.1, paragrafele doi şi trei.

Conţinutul de uleiuri şi grăsimi se calculează ca procent din eşantion folosind următoarea formulă:

unde:

m1

=

greutatea în grame a reziduului după prima extracţie (parte alicotă din extract);

m2

=

greutatea în grame a reziduului după a doua extracţie.

8.2.

Pentru anumite produse (de exemplu, cu conţinut mic de uleiuri şi grăsimi) masa eşantionului de testat se poate mări.

8.3.

Este posibil ca, înainte de hidroliză şi extracţie, hrana pentru animalele de companie cu conţinut mare de apă să trebuiască să fie amestecată cu sulfat de sodiu anhidru, conform procedurii B.

8.4.

La punctul 5.2, poate fi mai eficientă folosirea apei calde în locul apei reci pentru spălarea reziduului după filtrare.

8.5.

Este posibil ca timpul de uscare de 1,5 h să necesite a fi prelungit pentru unele furaje. Uscarea excesivă se evită, întrucât acest fapt poate determina rezultate slabe. Se poate folosi, de asemenea, un cuptor cu microunde.

(H)DETERMINAREA CONŢINUTULUI DE FIBRE BRUTE
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Această metodă permite determinarea în furaje a substanţelor organice lipsite de grăsimi care sunt insolubile în mediu acid şi alcalin şi care sunt descrise în mod convenţional ca fibre brute.
Metoda nu se aplică în cazul lignocelulozei şi al carbonului vegetal (particule prea fine).
2.Principiu
Eşantionul, degresat la nevoie, se tratează succesiv cu soluţii de acid sulfuric şi hidroxid de potasiu, de concentraţii specifice, în stare de fierbere. Reziduul se separă prin filtrare printr-un filtru de sticlă sinterizată spălat, uscat, cântărit şi calcinat la o temperatură cuprinsă între 475 şi 500 °C. Pierderea de greutate rezultată prin calcinare corespunde fibrelor brute din eşantionul testat.
3.Reactivi

3.1.

Acid sulfuric, c = 0,13 mol/l.

3.2.

Agent antispumant (de exemplu n-octanol).

3.3.

Agent de filtrare (Celite 545 sau echivalent), încălzit la 500 °C timp de patru ore (8.6).

3.4.

Acetonă.

3.5.

Eter de petrol cu interval de fierbere între 40 şi 60 °C.

3.6.

Acid clorhidric, c = 0,5 mol/l.

3.7.

Soluţie de hidroxid de potasiu, c = 0,23 mol/l.

4.Aparatură

4.1.

Unitate de încălzire pentru dizolvare cu acid sulfuric şi soluţie de hidroxid de potasiu, echipată cu un suport pentru creuzetul filtrant (punctul 4.2) şi dotată cu un tub de evacuare prevăzut cu un dop la orificiul de ieşire pentru lichide şi de creare de vid, posibil şi cu aer comprimat. Înainte de fiecare utilizare zilnică, unitatea se preîncălzeşte cu apă aflată în stare de fierbere, timp de 5 minute.

4.2.

Creuzet filtrant de sticlă cu placă filtrantă de sticlă sinterizată fuzionată, cu pori de 40-90 m. Înainte de prima utilizare se încălzeşte la 500 °C timp de câteva minute, iar apoi se răceşte (8.6).

4.3.

Cilindru de cel puţin 270 ml cu condensator cu reflux, care poate fi supus fierberii.

4.4.

Cuptor de uscare, cu termostat.

4.5.

Cuptor cu muflă, cu termostat.

4.6.

Unitate de extracţie compusă dintr-o placă de sprijin pentru creuzetul filtrant (punctul 4.2) şi cu o ţeavă de evacuare prevăzută cu un dop la orificiul de creare de vid şi de ieşire a lichidelor.

4.7.

Inele de conectare utilizate pentru a asambla unitatea de încălzire (punctul 4.1), creuzetul (punctul 4.2) şi cilindrul (punctul 4.3), precum şi pentru a conecta unitatea de extracţie la rece (punctul 4.6) cu creuzetul.

5.Procedura
Se cântăreşte 1 g de eşantion preparat cu o abatere de 1 mg şi se introduce în creuzet (punctul 4.2), (a se vedea observaţiile 9.1, 9.2 şi 9.3) şi se adaugă 1 g de adjuvant de filtrare (punctul 3.3).
Se asamblează unitatea de încălzire (punctul 4.1) şi creuzetul filtrant (punctul 4.2), apoi se ataşează cilindrul (punctul 4.3) la creuzet. Se toarnă 150 ml de acid sulfuric aflat în stare de fierbere (punctul 3.1) în ansamblul cilindru-creuzet şi, dacă este necesar, se adaugă câteva picături de agent antispumant (punctul 3.2).
Se aduce lichidul la fierbere în decurs de 5 ± 2 minute şi se fierbe viguros exact 30 de minute.
Se deschide dopul ţevii de evacuare (punctul 4.1) şi, în condiţii de vid, se filtrează acidul sulfuric prin creuzetul filtrant, apoi se spală reziduul cu trei porţii consecutive de 30 ml de apă aflată în stare de fierbere, asigurându-se că reziduul se filtrează uscat după fiecare spălare.
Se închide dopul orificiului de evacuare şi se toarnă 150 ml de soluţie de hidroxid de potasiu aflată în stare de fierbere (punctul 3.7) în ansamblul cilindru-creuzet, apoi se adaugă câteva picături de agent antispumant (punctul 3.2). Se aduce lichidul la punctul de fierbere în decurs de 5 ± 2 minute şi se fierbe viguros exact 30 de minute. Se filtrează şi se repetă procedura de spălare utilizată în etapa cu acid sulfuric.
După spălarea şi uscarea finală, se deconectează creuzetul împreună cu conţinutul său şi se reconectează la unitatea de extracţie la rece (punctul 4.6). Se creează vidul, iar reziduul se spală în creuzet cu trei porţii consecutive de acetonă de 25 ml (punctul 3.4), asigurându-se că reziduul se filtrează în starea uscată după fiecare spălare.
Creuzetul se usucă în cuptor la 130 °C până se ajunge la o greutate constantă. După fiecare uscare, se răceşte în desicator şi se cântăreşte rapid. Se introduce creuzetul într-un cuptor cu muflă şi se calcinează până se atinge o greutate constantă (pierderea de greutate între două cântăriri succesive trebuie să fie mai mică sau egală cu 2 mg) la o temperatură cuprinsă între 475 °C şi 500 °C timp de cel puţin 30 de minute.
După fiecare încălzire, înainte de cântărire se răceşte mai întâi în cuptor, iar apoi în desicator.
Se efectuează un test martor fără eşantion. Pierderea de greutate rezultată din calcinare nu trebui să depăşească 4 mg.
6.Calculul rezultatelor
Conţinutul de fibre brute exprimat ca procent din eşantion este dat de formula:
unde:

m

=

greutatea eşantionului în g;

m0

=

pierderea de greutate după calcinare în cursul determinării, în g;

m1

=

pierderea de greutate după calcinare în cursul testului martor, în g.

7.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări paralele efectuate pe acelaşi eşantion nu trebuie să depăşească:
- 0,6 % în valoare absolută pentru un conţinut de fibre brute mai mic de 10 %;
- 6 % relativ la rezultatul mai mare, pentru un conţinut de fibre brute egal sau mai mare de 10 %.
8.Reproductibilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări efectuate pe acelaşi eşantion în laboratoare diferite nu trebuie să depăşească:
- 1,0 % în valoare absolută pentru un conţinut de fibre brute mai mic de 10 %;
- 10 % relativ la rezultatul mai mare, pentru un conţinut de fibre brute egal sau mai mare de 10 %.
9.Observaţii

9.1.

Furajele care au conţinut de grăsimi brute mai mare de 10 % trebuie să fie degresate înainte de a fi supuse analizei cu eter de petrol (punctul 3.5). Creuzetul filtrant (punctul 4.2) împreună cu conţinutul său se conectează la unitatea de extracţie la rece (punctul 4.6) şi se creează vidul, apoi se spală reziduul cu trei porţii consecutive de eter de petrol de 30 ml, asigurându-se că reziduul este uscat. Creuzetul împreună cu conţinutul său se conectează la unitatea de încălzire (punctul 4.1) şi se continuă astfel cum se descrie la punctul 5.

9.2.

Furajele care conţin grăsimi care nu pot fi extrase direct cu eter de petrol (punctul 3.5) trebuie degresate astfel cum se indică la punctul 8.1 şi degresate încă o dată după fierbere cu acid. După fierbere cu acid şi spălare consecutivă, creuzetul împreună cu conţinutul său se conectează la unitatea de extracţie la rece (punctul 4.6), apoi se spală de trei ori cu 30 ml acetonă, urmat de trei spălări suplimentare cu porţii de eter de petrol de 30 ml. Se filtrează sub vid până la uscare, iar analizarea se continuă astfel cum se descrie la punctul 5, începând cu tratamentul cu hidroxid de potasiu.

9.3.

Dacă furajul conţine mai mult de 5 % carbonaţi, exprimaţi ca şi carbonat de calciu, se conectează creuzetul (punctul 4.2) împreună cu eşantionul cântărit la unitatea de încălzire (punctul 4.1). Eşantionul se spală de trei ori cu 30 ml acid clorhidric (punctul 3.6). După fiecare adăugare, se lasă eşantionul să stea timp de aproximativ un minut înainte de filtrare. Se spală o singură dată cu 30 ml apă, iar apoi se continuă astfel cum se descrie la punctul 5.

9.4.

Dacă se utilizează aparatură în formă de stativ (o serie de creuzete ataşate la aceeaşi unitate de încălzire) nu se efectuează două determinări individuale pe acelaşi eşantion de analizat în aceeaşi serie.

9.5.

Dacă după fierbere este dificil să se filtreze soluţiile acide şi alcaline, se utilizează aer comprimat introdus prin ţeava de evacuare a unităţii de încălzire şi apoi se continuă filtrarea.

9.6.

Temperatura de calcinare nu depăşeşte 500 °C pentru a se putea prelungi timpul de utilizare a sticlei creuzetului filtrant. Trebuie acordată atenţie pentru a se evita şocurile termice excesive în cursul ciclurilor de încălzire şi răcire.

(I)DETERMINAREA ZAHARURILOR
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Această metodă permite determinarea cantităţii de zaharuri reductoare şi a zaharurilor totale după inversie, exprimate ca glucoză sau, acolo unde este cazul, ca zaharoză, prin conversie cu factorul 0,95. Ea este aplicabilă furajelor combinate. Pentru alte tipuri de furaje există metode specifice. Dacă este necesar, lactoza se determină separat, ţinându-se cont de aceasta la calcularea rezultatelor.
Această metodă se utilizează pentru determinarea conţinutului de zahăr utilizat la calcularea valorii energetice a furajului.
În cazul în care conţinutul de zahăr trebuie determinat în alte scopuri, se pot utiliza alte metode de analiză.
2.Principiu
Zaharurile se extrag în etanol diluat; soluţia se limpezeşte cu soluţii Carrez I şi II. După eliminarea etanolului, cantităţile pre- şi post-inversie se determină prin metoda Luff-Schoorl.
3.Reactivi

3.1.

Etanol, soluţie cu concentraţie de 40 % (v/v): 0,948 g/ml la 20 °C, neutralizată cu fenolftaleină.

3.2.

Soluţie Carrez I: se dizolvă 21,9 g de acetat de zinc, Zn(CH3COO)2 2H2O şi 3 g de acid acetic glacial în apă. Se completează cu apă până la 100 ml.

3.3.

Soluţie Carrez II: se dizolvă 10,6 g de ferocianură de potasiu, K4 Fe (CN)6 3H2O în apă. Se completează cu apă până la 100 ml.

3.4.

Metiloranj, soluţie 0,1 % (greutate/volum).

3.5.

Acid clorhidric 4 mol/litru.

3.6.

Acid clorhidric 0,1 mol/litru.

3.7.

Soluţie de hidroxid de sodiu 0,1 mol/litru.

3.8.

Reactiv Luff-Schoorl:

Amestecând cu grijă, se toarnă soluţia de acid citric (punctul 3.8.2) în soluţia de carbonat de sodiu (punctul 3.8.3). Se adaugă soluţia de sulfat de cupru (punctul 3.8.1) şi se completează până la 1 litru cu apă. Se lasă la decantare peste noapte şi se filtrează.

Se verifică concentraţia reactivului obţinut astfel (Cu 0,05 mol/litru; Na2 CO3 1 mol/litru), a se vedea (punctul 5.4) ultimul paragraf. pH-ul soluţiei este aproximativ 9,4.

3.8.1.

Soluţie de sulfat de cupru: se dizolvă 25 g de sulfat de cupru, Cu SO4 5H2O, lipsită de fier, în 100 ml apă.

3.8.2.

Soluţie de acid citric: se dizolvă 50 g de acid citric, C6H8O7*H2O, în 50 ml de apă.

3.8.3.

Soluţie de carbonat de sodiu: se dizolvă 143,8 g de carbonat de sodiu anhidru în aproximativ 300 ml de apă caldă. Se lasă să se răcească.

3.9.

Soluţie de tiosulfat de sodiu 0,1 mol/litru.

3.10.

Soluţie de amidon: se adaugă un amestec de 5 g de amidon solubil cu 30 ml de apă la 1 litru de apă în stare de fierbere. Se fierbe timp de 3 minute, se lasă să se răcească şi, dacă este necesar, se adaugă 10 mg de iodură de mercur ca agent de conservare.

3.11.

Acid sulfuric 3 mol/litru.

3.12.

Iodură de potasiu, soluţie 30 % (greutate/volum).

3.13.

Granule de piatră ponce fierte în acid clorhidric, spălate în apă şi uscate.

3.14.

3-metilbutan-1-ol.

4.Aparatură
Mixer (agitator): aproximativ 35-40 rpm.
5.Procedura
5.1.Extracţia eşantionului
Se cântăresc 2,5 g de eşantion cu o abatere de 1 mg şi se introduc într-un balon gradat de 250 ml. Se adaugă 200 ml etanol (punctul 3.1) şi se amestecă timp de o oră în agitator. Se adaugă 5 ml de soluţie Carrez I (punctul 3.2) şi se amestecă timp de aproximativ 30 de secunde. Se adaugă aproximativ 5 ml de soluţie Carrez II (punctul 3.3) şi se amestecă din nou timp de un minut. Se completează până la volum cu etanolul (punctul 3.1), se omogenizează şi se filtrează. Se îndepărtează 200 ml de filtrat şi se evaporă până la aproximativ jumătate din volum în scopul eliminării majorităţii etanolului. Reziduul rămas după evaporare se transferă cantitativ într-un balon gradat de 200 ml cu ajutorul apei calde, se răceşte, se completează până la volum cu apă, se omogenizează şi, dacă este necesar, se filtrează. Această soluţie se va utiliza pentru determinarea cantităţii zaharurilor reductoare şi, după inversie, a zaharurilor totale.
5.2.Determinarea zaharurilor reductoare
Cu ajutorul unei pipete se îndepărtează maximum 25 ml din soluţia care conţine mai puţin de 60 mg de zaharuri reductoare exprimate ca glucoză. Dacă este necesar, se completează până la 25 ml cu apă distilată şi se determină conţinutul în zaharuri reductoare prin metoda Luff-Schoorl. Rezultatul se exprimă sub formă de conţinut procentual de glucoză în eşantion.
5.3.Determinarea zaharurilor totale după inversie
Cu ajutorul unei pipete se recoltează 50 ml de soluţie şi se transferă într-un balon gradat de 100 ml. Se adaugă câteva picături de soluţie de metiloranj (punctul 3.4), apoi, amestecând continuu, se adaugă cu grijă acid clorhidric (punctul 3.5) până când lichidul virează într-un roşu bine definit. Se adaugă 15 ml de acid clorhidric (punctul 3.6), se scufundă balonul într-o baie de apă clocotindă şi se menţine acolo timp de 30 de minute. Se răceşte rapid la aproximativ 20 °C şi se adaugă 15 ml de soluţie de hidroxid de sodiu (punctul 3.7). Se completează cu apă până la 100 ml şi se omogenizează. Se îndepărtează maximum 25 ml din soluţia care conţine mai puţin de 60 mg de zaharuri reductoare exprimate ca glucoză. Dacă este necesar, se completează până la 25 ml cu apă distilată şi se determină conţinutul în zaharuri reductoare prin metoda Luff-Schoorl. Rezultatul se exprimă în procente de glucoză sau, dacă este cazul, de zaharoză, prin multiplicare cu factorul 0,95.
5.4.Titrare prin metoda Luff-Schoorl
Cu ajutorul unei pipete se recoltează 25 ml de reactiv Luff-Schoorl (punctul 3.8) şi se transferă într-un flacon Erlenmeyer de 300 ml; se adaugă exact 25 ml din soluţia de zaharuri limpezită. Se adaugă 2 granule de piatră ponce (punctul 3.13), se încălzeşte, amestecând manual, deasupra unei flăcări libere cu înălţime medie, aducându-se lichidul la fierbere în aproximativ 2 minute. Flaconul Erlenmeyer se aşază imediat pe o plasă de sârmă acoperită cu azbest având un orificiu cu diametru de aproximativ 6 cm sub care există o flacără aprinsă. Flacăra se reglează astfel încât să se încălzească doar baza flaconului Erlenmeyer. La flaconul Erlenmeyer se montează un condensator cu reflux. Se fierbe exact 10 minute. Se răceşte imediat în apă rece şi, după aproximativ 5 minute, se titrează după cum urmează:
Se adaugă 10 ml de soluţie de iodură de potasiu (punctul 3.12) şi, imediat după aceea (cu grijă, din cauza riscului formării unei spume abundente), se adaugă 25 ml de acid sulfuric (punctul 3.11). Se titrează în continuare cu soluţie de tiosulfat de sodiu (punctul 3.9) până la apariţia unei coloraturi galben şters, adăugând ca indicator soluţia de amidon (punctul 3.10) şi încheind titrarea.
Se efectuează aceeaşi titrare pe un amestec de 25 ml de reactiv Luff-Schoorl (punctul 3.8) cu 25 ml de apă, măsurat cu precizie, după ce s-au adăugat 10 ml de soluţie de iodură de potasiu (punctul 3.12) şi 25 ml de acid sulfuric (punctul 3.11), fără a se fierbe.
6.Calculul rezultatelor
Utilizând tabelul, se stabileşte cantitatea de glucoză în mg care corespunde diferenţei dintre valorile celor două titrări, exprimate în ml de tiosulfat de sodiu 0,1 mol/litru. Rezultatul se exprimă ca procent din eşantion.
7.Proceduri speciale

7.1.

În cazul furajelor bogate în melase şi al altor furaje care nu sunt în mod particular omogene, se cântăresc 20 g şi se introduc, împreună cu 500 ml de apă, într-un balon gradat de 1 litru. Se amestecă timp de o oră în agitator. Se limpezeşte cu ajutorul soluţiilor reactiv Carrez I (punctul 3.2) şi II (punctul 3.3) astfel cum se descrie la punctul 5.1, utilizând, de data aceasta, o cantitate de patru ori mai mare din fiecare reactiv. Se completează până la volum cu etanol 80 % (v/v).

Se omogenizează şi se filtrează. Se elimină etanolul astfel cum se descrie la punctul 5.1. În absenţa amidonului dextrinizat, se completează până la volum cu apă distilată.

7.2.

În cazul melaselor şi al materiilor prime pentru furaje bogate în zaharuri şi cvasi lipsite de amidon (roşcove, fulgi de rădăcină de sfeclă uscaţi etc.), se cântăresc 5 g, se introduc într-un balon gradat de 250 ml, se adaugă 200 ml apă distilată şi se amestecă în agitator timp de o oră sau, dacă este necesar, mai mult. Se limpezeşte cu ajutorul soluţiilor reactiv Carrez I (punctul 3.2) şi II (punctul 3.3) astfel cum se descrie la punctul 5.1. Se completează până la volum cu apă rece, se omogenizează şi se filtrează. Pentru determinarea cantităţii totale de zaharuri, se continuă astfel cum se descrie la punctul 5.3.

8.Observaţii

8.1.

În scopul prevenirii formării de spumă este recomandabil să se adauge (indiferent de volum) aproximativ 1 ml de 3-metilbutan-1-ol (punctul 3.14) înainte de fierbere cu reactiv Luff-Schoorl.

8.2.

Diferenţa dintre conţinutul total de zaharuri după inversie exprimat ca glucoză şi conţinutul de zaharuri reductoare exprimat ca glucoză, multiplicată cu 0,95, reprezintă conţinutul procentual de zaharoză.

8.3.

Pentru a determina conţinutul de zaharuri reductoare, cu excepţia lactozei, se pot adopta două metode:

8.3.1.

Pentru un calcul aproximativ, conţinutul de lactoză stabilit printr-o metodă de analiză diferită se multiplică cu 0,675, iar rezultatul obţinut se scade din conţinutul de zaharuri reductoare.

8.3.2.

Pentru un calcul precis al zaharurilor reductoare, cu excepţia lactozei, se utilizează acelaşi eşantion în cele două determinări finale. Una dintre analize se efectuează pe o parte din soluţia obţinută în conformitate cu punctul 5.1, alta pe o parte din soluţia obţinută în cursul determinării lactozei prin metoda stabilită în acest sens (după fermentarea celorlalte tipuri de zaharuri şi limpezire).

În ambele cazuri, cantitatea de zaharuri prezentă se determină prin metoda Luff-Schoorl şi se calculează în mg de glucoză. Una dintre valori se scade din cealaltă, iar diferenţa se exprimă ca procent din eşantion.

Exemplu

Cele două volume considerate corespund, pentru fiecare determinare, unui eşantion de 250 mg.

În primul caz, se consumă 17 ml de soluţie de tiosulfat de sodiu 0,1 mol/litru, ceea ce corespunde la 44,2 mg de glucoză; în al doilea, 11 ml, ceea ce corespunde la 27,6 mg de glucoză.

Diferenţa este 16,6 mg de glucoză.

Prin urmare, conţinutul de zaharuri reductoare (cu excepţia lactozei), calculat ca glucoză, este:

Tabel de valori pentru 25 ml de reactiv Luff-Schoorl

ml de Na2 S2 O3 0,1 mol/litru, 2 minute încălzire, 10 minute fierbere

Na2 S2 O3

0,1 mol/litru

Glucoză, fructoză zaharuri invertite

C6 H12 O6

Lactoză

C12 H22 O11

Na2 S2 O3

0,1 mol/litru

ml

mg

diferenţă

mg

diferenţă

ml

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

13

14

15

16

17

18

19

20

21

22

23

2,4

4,8

7,2

9,7

12,2

14,7

17,2

19,8

22,4

25,0

27,6

30,3

33,0

35,7

38,5

41,3

44,2

47,1

50,0

53,0

56,0

59,1

62,2

2,4

2,4

2,5

2,5

2,5

2,5

2,6

2,6

2,6

2,6

2,7

2,7

2,7

2,8

2,8

2,9

2,9

2,9

3,0

3,0

3,1

3,1

3,6

7,3

11,0

14,7

18,4

22,1

25,8

29,5

33,2

37,0

40,8

44,6

48,4

52,2

56,0

59,9

63,8

67,7

71,7

75,7

79,8

83,9

88,0

3,7

3,7

3,7

3,7

3,7

3,7

3,7

3,7

3,8

3,8

3,8

3,8

3,8

3,8

3,9

3,9

3,9

4,0

4,0

4,1

4,1

4,1

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

13

14

15

16

17

18

19

20

21

22

23

(J)DETERMINAREA LACTOZEI
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Această metodă permite determinarea conţinutului de lactoză în furajele care au un conţinut de lactoză mai mare de 0,5 %.
2.Principiu
Zaharurile se dizolvă în apă. Soluţia este supusă fermentaţiei de către drojdia Saccharomyces cerevisiae care nu descompune lactoza. După limpezire şi filtrare, conţinutul de lactoză al filtratului se determină prin metoda Luff-Schoorl.
3.Reactivi

3.1.

Suspensie de Saccharomyces cerevisiae: se suspendă 25 g de drojdie proaspătă în 100 ml de apă. Suspensia se păstrează în frigider o perioadă de maximum o săptămână.

3.2.

Soluţie Carrez I: se dizolvă 21,9 g de acetat de zinc, Zn (CH3 COO)2 2H2O şi 3 g de acid acetic glacial în apă. Se completează cu apă până la 100 ml.

3.3.

Soluţie Carrez II: se dizolvă 10,6 g de ferocianură de potasiu, K4 Fe (CN)6 3H2O în apă. Se completează cu apă până la 100 ml.

3.4.

Reactiv Luff-Schoorl:

Amestecând cu grijă, se toarnă soluţia de acid citric (punctul 3.4.2) în soluţia de carbonat de sodiu (punctul 3.4.3). Se adaugă soluţia de sulfat de cupru (punctul 3.4.1) şi se completează până la 1 litru cu apă. Se lasă la decantare peste noapte şi se filtrează. Se verifică concentraţia reactivului obţinut astfel (Cu 0,05 mol/litru; Na2 CO3 1 mol/litru). pH-ul soluţiei este aproximativ 9,4.

3.4.1.

Soluţie de sulfat de cupru: se dizolvă 25 g de sulfat de cupru, Cu SO4 5H2O, lipsită de fier, în 100 ml apă.

3.4.2.

Soluţie de acid citric: se dizolvă 50 g de acid citric, C6H8O7*H2O, în 50 ml de apă.

3.4.3.

Soluţie de carbonat de sodiu: se dizolvă 143,8 g de carbonat de sodiu anhidru în aproximativ 300 ml de apă caldă. Se lasă să se răcească.

3.5.

Granule de piatră ponce fierte în acid clorhidric, spălate în apă şi uscate.

3.6.

Iodură de potasiu, soluţie 30 % (greutate/volum).

3.7.

Acid sulfuric 3 mol/litru.

3.8.

Soluţie de tiosulfat de sodiu 0,1 mol/litru.

3.9.

Soluţie de amidon: se adaugă un amestec de 5 g de amidon solubil cu 30 ml de apă la 1 litru de apă în stare de fierbere. Se fierbe timp de 3 minute, se lasă să se răcească şi, dacă este necesar, se adaugă 10 mg de iodură de mercur ca agent de conservare.

4.Aparatură
Baie de apă cu termostat reglat la 38-40 °C.
5.Procedura
Se cântăreşte 1 g de eşantion cu o abatere de 1 mg şi se introduce într-un balon gradat de 100 ml. Se adaugă 25-30 ml de apă. Balonul se introduce într-o baie de apă aflată la temperatura de fierbere, timp de 30 de minute, apoi se răceşte la aproximativ 35 °C. Se adaugă 5 ml de suspensie de drojdie (punctul 3.1) şi se omogenizează. Balonul se lasă să stea timp de două ore într-o baie de apă la temperatura de 38-40 °C. Se răceşte la aproximativ 20 °C.
Se adaugă 2,5 ml de soluţie Carrez I (punctul 3.2) şi se amestecă timp de 30 de secunde, apoi se adaugă 2,5 ml de soluţie Carrez II (punctul 3.3) şi se amestecă din nou timp de 30 de secunde. Se completează cu apă până la 100 ml, se amestecă şi se filtrează. Cu ajutorul unei pipete, se îndepărtează o cantitate de filtrat care nu depăşeşte 25 ml şi care conţine, de preferinţă, 40-80 mg de lactoză, apoi se transferă într-un flacon Erlenmeyer de 300 ml. Dacă este necesar, se completează cu apă până la 25 ml.
Se efectuează un test martor în acelaşi mod cu 5 ml de suspensie de drojdie (punctul 3.1). Se determină conţinutul de lactoză prin metoda Luff-Schoorl, după cum urmează: se adaugă exact 25 ml de reactiv Luff-Schoorl (punctul 3.4) şi două granule de piatră ponce (punctul 3.5). Se amestecă manual concomitent cu încălzirea deasupra unei flăcări libere de înălţime medie, iar lichidul se aduce la fierbere în aproximativ 2 minute. Flaconul Erlenmeyer se aşază imediat pe o plasă de sârmă acoperită cu azbest având un orificiu cu diametru de aproximativ 6 cm sub care există o flacără aprinsă. Flacăra se reglează astfel încât să se încălzească doar baza flaconului Erlenmeyer. La flaconul Erlenmeyer se montează un condensator cu reflux. Se fierbe exact 10 minute. Se răceşte imediat în apă rece şi, după aproximativ 5 minute, se titrează după cum urmează:
Se adaugă 10 ml de soluţie de iodură de potasiu (punctul 3.6) şi, imediat după aceea (cu grijă, din cauza riscului formării unei spume abundente), se adaugă 25 ml acid sulfuric (punctul 3.7). Se titrează în continuare cu soluţie de tiosulfat de sodiu (punctul 3.8) până la apariţia unei coloraturi galben şters, adăugând ca indicator soluţia de amidon (punctul 3.9) şi încheind titrarea.
Se efectuează aceeaşi titrare pe un amestec de 25 ml de reactiv Luff-Schoorl (punctul 3.4) cu 25 ml de apă, măsurat cu precizie, după ce s-au adăugat 10 ml de soluţie de iodură de potasiu (punctul 3.6) şi 25 ml de acid sulfuric (punctul 3.7), fără a se fierbe.
6.Calculul rezultatelor
Utilizând tabelul ataşat, se stabileşte cantitatea de lactoză în mg care corespunde diferenţei dintre rezultatele celor două titrări, exprimate în ml de tiosulfat de sodiu 0,1 mol/litru.
Rezultatul pentru lactoza anhidră se exprimă ca procent din eşantion.
7.Observaţie

1.

Pentru produsele care conţin mai mult de 40 % zahăr fermentescibil, se utilizează mai mult de 5 ml de suspensie de drojdie (punctul 3.1).

2.

În hrana «cu conţinut redus de lactoză» (de exemplu, laptele pentru pisici), lactoza este convertită în fructoză, care nu este complet fermentată în decurs de două ore, ceea ce duce la rezultate pozitive mai mari sau false (deoarece reziduurile de fructoză rămân în extract).

Tabel de valori pentru 25 ml de reactiv Luff-Schoorl

ml de Na2 S2 O3 0,1 mol/litru, două minute încălzire, 10 minute fierbere

Na2 S2 O3

0,1 mol/litru

Glucoză, fructoză zaharuri invertite

C6 H12 O6

Lactoză

C12 H22 O11

Na2 S2 O3

0,1 mol/litru

ml

mg

diferenţă

mg

diferenţă

ml

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

13

14

15

16

17

18

19

20

21

22

23

2,4

4,8

7,2

9,7

12,2

14,7

17,2

19,8

22,4

25,0

27,6

30,3

33,0

35,7

38,5

41,3

44,2

47,1

50,0

53,0

56,0

59,1

62,2

2,4

2,4

2,5

2,5

2,5

2,5

2,6

2,6

2,6

2,6

2,7

2,7

2,7

2,8

2,8

2,9

2,9

2,9

3,0

3,0

3,1

3,1

3,6

7,3

11,0

14,7

18,4

22,1

25,8

29,5

33,2

37,0

40,8

44,6

48,4

52,2

56,0

59,9

63,8

67,7

71,7

75,7

79,8

83,9

88,0

3,7

3,7

3,7

3,7

3,7

3,7

3,7

3,7

3,8

3,8

3,8

3,8

3,8

3,8

3,9

3,9

3,9

4,0

4,0

4,1

4,1

4,1

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

13

14

15

16

17

18

19

20

21

22

23

(K)DETERMINAREA AMIDONULUI
METODA POLARIMETRICĂ
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Această metodă permite determinarea în furaje a conţinutului de amidon şi a produselor de degradare a amidonului cu masă moleculară mare cu scopul de a se verifica conformitatea cu valoarea energetică declarată (prevederile din anexa VII) şi cu Regulamentul (CE) nr. 767/2009.
Această metodă se utilizează pentru determinarea conţinutului de amidon utilizat la calcularea valorii energetice a furajului.
În cazul în care conţinutul de amidon trebuie determinat în alte scopuri, se pot utiliza alte metode de analiză.
2.Principiu
Metoda cuprinde două determinări. În prima, eşantionul este tratat cu acid clorhidric diluat. După limpezire şi filtrare, se măsoară rotaţia optică a soluţiei prin polarimetrie.
În cea de-a doua, eşantionul este extras cu etanol 40 %. După acidificarea filtratului cu acid clorhidric, limpezire şi filtrare, se măsoară rotaţia optică la fel ca în prima determinare.
Diferenţa dintre cele două măsurători, multiplicată cu un factor cunoscut, oferă conţinutul de amidon al eşantionului.
3.Reactivi

3.1.

Acid clorhidric, soluţie cu concentraţie 25 % (g/g): 1,126 g/ml.

3.2.

Acid clorhidric, soluţie 1,13 % (greutate/volum)

Concentraţia se verifică prin titrare folosind o soluţie de hidroxid de sodiu 0,1 mol/litru în prezenţa roşului de metil 0,1 % (greutate/volum) în etanol 94 % (v/v). Pentru neutralizarea a 10 ml sunt necesari 30,94 ml de NaOH 0,1 mol/litru.

3.3.

Soluţie Carrez I: se dizolvă 21,9 g de acetat de zinc, Zn (CH3 COO)2 2H2O şi 3 g de acid acetic glacial în apă. Se completează cu apă până la 100 ml.

3.4.

Soluţie Carrez II: se dizolvă 10,6 g de ferocianură de potasiu, K4 Fe (CN)6 3H2O în apă. Se completează cu apă până la 100 ml.

3.5.

Etanol, soluţie cu concentraţie de 40 % (v/v): 0,948 g/ml la 20 °C.

4.Aparatură

4.1.

Flacon Erlenmeyer de 250 ml cu îmbinare de sticlă şlefuită standard şi cu condensator cu reflux.

4.2.

Polarimetru sau zaharimetru.

5.Procedura
5.1.Pregătirea eşantionului
Eşantionul se zdrobeşte până când devine suficient de fin pentru a trece complet printr-o sită cu orificii rotunde de 0,5 mm.
5.2.Determinarea rotaţiei optice totale (P sau S) (a se vedea observaţia de la punctul 7.1)
Se cântăresc 2,5 g din eşantionul zdrobit cu abatere de 1 mg şi se introduc într-un balon gradat de 100 ml. Se adaugă 25 ml de acid clorhidric (punctul 3.2), se agită pentru a obţine o distribuţie uniformă a eşantionului de testat şi se adaugă încă 25 ml de acid clorhidric (punctul 3.2). Se scufundă balonul într-o baie de apă care fierbe, agitându-se cu putere şi în mod constant în primele trei minute pentru a preveni formarea de aglomerări. Cantitatea de apă din baia de apă trebuie să fie suficientă pentru ca baia să rămână la punctul de fierbere atunci când balonul este introdus în ea. Balonul nu trebuie să fie scos din baie în timp ce este agitat. După exact 15 minute, se scoate din baie, se adaugă 30 ml de apă rece şi se răceşte imediat la 20 °C.
Se adaugă 5 ml de soluţie Carrez I (punctul 3.3) şi se agită timp de aproximativ 30 de secunde. Apoi se adaugă 5 ml de soluţie Carrez II (punctul 3.4) şi se agită din nou timp de aproximativ 30 de secunde. Se completează cu apă până la volum, se amestecă şi se filtrează. Dacă filtratul nu este perfect limpede (ceea ce se întâmplă rar), se repetă determinarea folosind o cantitate mai mare din soluţiile Carrez I şi II, de exemplu 10 ml.
Se măsoară rotaţia optică a soluţiei într-un tub de 200 mm cu polarimetrul sau cu zaharimetrul.
5.3.Determinarea rotaţiei optice (P’ sau S’) a substanţelor solubile în etanol 40 %
Se cântăresc 5 g din eşantion cu abatere de 1 mg, se introduc într-un balon gradat de 100 ml şi se adaugă aproximativ 80 ml de etanol (punctul 3.5) (a se vedea observaţia de la punctul 7.2). Se lasă balonul să stea timp de 1 oră la temperatura camerei; în acest timp, se agită cu putere de şase ori astfel încât eşantionul de testat să se amestece complet cu etanolul. Se completează până la volum cu etanol (punctul 3.5), se amestecă şi se filtrează.
Se pipetează 50 ml de filtrat (corespunde la 2,5 g de eşantion) într-un flacon Erlenmeyer de 250 ml, se adaugă 2,1 ml de acid clorhidric (punctul 3.1) şi se agită puternic. La flaconul Erlenmeyer se montează un condensator cu reflux, iar vasul se scufundă într-o baie de apă în fierbere. După exact 15 minute, se scoate flaconul Erlenmeyer din baie, se transferă conţinutul într-un balon gradat de 100 ml, clătind cu puţină apă rece şi se răceşte la 20 °C.
Se limpezeşte folosind soluţiile Carrez I (punctul 3.3) şi II (punctul 3.4), se completează până la volum cu apă, se amestecă, se filtrează şi se măsoară rotaţia optică astfel cum se indică la punctul 5.2 paragrafele doi şi trei.
6.Calculul rezultatelor
Conţinutul de amidon (%) se calculează după cum urmează:
6.1.Măsurare cu polarimetrul

P

=

rotaţia optică totală în grade unghiulare

P’

=

rotaţia optică în grade unghiulare a substanţelor solubile în etanol 40 % (V/V)

=

rotaţia optică specifică a amidonului pur. Valorile numerice acceptate în mod convenţional pentru acest factor sunt următoarele:

+ 185,9°

:

amidon din orez

+ 185,7°

:

amidon din cartofi

+ 184,6°

:

amidon din porumb

+ 182,7°

:

amidon din grâu

+ 181,5°

:

amidon din orz

+ 181,3°

:

amidon din ovăz

+ 184,0°

:

alte tipuri de amidon şi amestecuri de amidon în furaje combinate

6.2.Măsurare cu zaharimetrul

S

=

rotaţia optică totală în grade zaharimetrice

S’

=

rotaţia optică în grade zaharimetrice a substanţelor solubile în etanol 40 % (v/v)

N

=

greutatea (g) a zaharozei în 100 ml de apă determinând o rotaţie optică de 100 grade zaharimetrice măsurată cu un tub de 200 mm

16,29 g pentru zaharimetrele franceze

26,00 g pentru zaharimetrele germane

20,00 g pentru zaharimetrele mixte.

=

rotaţia optică specifică a amidonului pur (a se vedea punctul 6.1)

6.3.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări paralele efectuate pe acelaşi eşantion nu trebuie să depăşească 0,4 în valoare absolută pentru un conţinut de amidon mai mic de 40 % şi 1 % în valoare relativă în cazul conţinutului de amidon egal sau mai mare de 40 %.
7.Observaţii

7.1.

În cazul în care eşantionul conţine mai mult de 6 % carbonaţi, calculaţi sub formă de carbonat de calciu, aceştia trebuie distruşi prin tratare cu o cantitate perfect adecvată de acid sulfuric diluat înaintea determinării rotaţiei optice totale.

7.2.

În cazul produselor cu un conţinut mare de lactoză, cum ar fi zerul praf sau laptele praf degresat, se procedează după cum urmează după adăugarea a 80 ml etanol (punctul 3.5). La balon se fixează un condensator cu reflux, iar balonul se scufundă într-o baie de apă la 50 °C timp de 30 de minute. Se lasă să se răcească şi se continuă analiza astfel cum se indică la punctul 5.3.

7.3.

În cazul în care sunt prezente în cantităţi semnificative în furaje, următoarele materii prime furajere sunt cunoscute ca dând naştere la interferenţe atunci când conţinutul de amidon se determină prin metoda polarimetrică şi, din acest motiv, se pot obţine rezultate incorecte:

- produse din sfeclă (de zahăr), precum pulpă de sfeclă (de zahăr), melasă de sfeclă (de zahăr), pulpă melasată de sfeclă (de zahăr), vinasă de sfeclă (de zahăr), zahăr (din sfeclă);

- pulpă de citrice;

- seminţe de in; şrot de seminţe de in; şrot de seminţe de in rezultat după extracţie;

- seminţe de rapiţă; şrot de seminţe de rapiţă; şrot de seminţe de rapiţă rezultat după extracţie; coji de seminţe de rapiţă;

- seminţe de floarea soarelui; şrot de seminţe de floarea soarelui rezultat după extracţie; seminţe de floarea soarelui parţial decorticate, rezultate după extracţie;

- şrot de copra; şrot de copra rezultat după extracţie;

- pulpă de cartofi;

- drojdie deshidratată;

- produse bogate în inulină (de exemplu, fulgi şi făină de topinambur);

- jumări;

- produse din soia

În aceste cazuri, se poate aplica metoda de analiză prevăzută de Regulamentul (CE) nr. 121/2008 al Comisiei (7). Această metodă poate fi utilizată şi pentru furajele care conţin mai puţin de 1 % amidon.

(7)Regulamentul (CE) nr. 121/2008 al Comisiei din 11 februarie 2008 de stabilire a metodei de analiză pentru determinarea conţinutului de amidon din preparatele de tipul celor utilizate pentru hrana animalelor (cod NC 2309) (JO L 37, 12.2.2008, p. 3).

(L)DETERMINAREA CONŢINUTULUI DE CENUŞĂ BRUTĂ
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Această metodă permite determinarea în furaje a conţinutului de cenuşă brută.
2.Principiu
Eşantionul se calcinează la 550 °C; reziduul se cântăreşte.
3.Reactivi
Nitrat de amoniu, soluţie 20 % (greutate/volum).
4.Aparatură

4.1.

Plită.

4.2.

Cuptor electric cu muflă, dotat cu termostat.

4.3.

Creuzete pentru calcinare fabricate din silice, porţelan sau platină, de formă rectangulară (aproximativ 60 × 40 × 25 mm) sau circulară (diametru: 60-75 mm, înălţime: 20-40 mm).

5.Procedura
Se cântăresc aproximativ 5 g de eşantion cu o abatere de 1 mg (2,5 g pentru produsele cu tendinţă de umflare) şi se introduc într-un creuzet pentru calcinare, care în prealabil a fost încălzit la 550 °C, răcit şi tarat. Se aşază creuzetul pe plită şi se încălzeşte progresiv până la carbonizarea materialului. Se calcinează în conformitate cu menţiunile de la punctul 5.1 sau 5.2.

5.1.

Se introduce creuzetul în cuptorul cu muflă calibrat, reglat la 550 °C. Se menţine la această temperatură până la obţinerea unei cenuşi albe, gri deschis sau roşiatice, aparent lipsită de particule carbonizate. Se introduce creuzetul într-un desicator, se lasă să se răcească şi se cântăreşte imediat.

5.2.

Se introduce creuzetul în cuptorul cu muflă calibrat, reglat la 550 °C. Se calcinează timp de 3 ore. Se introduce creuzetul într-un desicator, se lasă să se răcească şi se cântăreşte imediat. Se calcinează din nou timp de 30 de minute pentru a asigura că greutatea cenuşii rămâne constantă (pierderea de greutate între două cântăriri succesive trebuie să fie mai mică sau egală cu 1 mg).

6.Calculul rezultatelor
Se calculează greutatea reziduului prin deducerea tarei.
Rezultatul se exprimă ca procent din eşantion.
7.Observaţii

7.1.

Cenuşa substanţelor dificil de calcinat trebuie supusă unei calcinări iniţiale timp de cel puţin trei ore, urmată de răcire şi de adăugarea câtorva picături de soluţie de nitrat de amoniu 20 % sau de apă (cu grijă, pentru a evita dispersarea cenuşii şi formarea de aglomerări). Se continuă calcinarea după uscarea în cuptor. Operaţia se repetă până când calcinarea este completă.

7.2.

În cazul substanţelor rezistente la tratamentul descris la punctul 7.1, se procedează în felul următor: după calcinare timp de trei ore, se introduce cenuşa în apă caldă şi se filtrează printr-un filtru mic, lipsit de cenuşă. Filtrul şi conţinutul său se calcinează în creuzetul iniţial. Filtratul se introduce în creuzetul răcit, se evaporă până la uscare, se calcinează şi se cântăreşte.

7.3.

În cazul uleiurilor şi grăsimilor, se cântăresc cu precizie 25 g de eşantion într-un creuzet de dimensiuni adecvate. Se carbonizează prin aprinderea materialului cu ajutorul unei benzi de filtru de hârtie, lipsit de cenuşă. După combustie, se umectează cu cât mai puţină apă. Se usucă şi se calcinează astfel cum se descrie la punctul 5.

(M)DETERMINAREA CENUŞII INSOLUBILE ÎN ACID CLORHIDRIC
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Această metodă permite determinarea în furaje a conţinutului de substanţe minerale insolubile în acid clorhidric. Se pot utiliza două metode, în funcţie de natura eşantionului.

1.1.

Metoda A: aplicabilă materiilor prime furajere organice furaje şi majorităţii furajelor combinate;

1.2.

Metoda B: aplicabilă compuşilor şi amestecurilor minerale, precum furajelor combinate al căror conţinut de substanţe insolubile în acid clorhidric, determinat conform metodei A, este mai mare de 1 %.

2.Principiu

2.1.

Metoda A: eşantionul se calcinează, cenuşa se fierbe în acid clorhidric, iar reziduul insolubil se filtrează şi se cântăreşte.

2.2.

Metoda B: eşantionul se tratează cu acid clorhidric. Soluţia se filtrează, reziduul se calcinează, iar cenuşa astfel obţinută se tratează conform metodei A.

3.Reactivi

3.1.

Acid clorhidric 3 mol/litru.

3.2.

Acid tricloracetic, soluţie 20 % (greutate/volum).

3.3.

Acid tricloracetic, soluţie 1 % (greutate/volum).

4.Aparatură

4.1.

Plită.

4.2.

Cuptor electric cu muflă, dotat cu termostat.

4.3.

Creuzete pentru calcinare fabricate din silice, porţelan sau platină, de formă rectangulară (aproximativ 60 × 40 × 25 mm) sau circulară (diametru: 60-75 mm, înălţime: 20-40 mm).

4.4.

Filtre lipsite de cenuşă

5.Procedura
5.1.Metoda A:
Eşantionul se calcinează prin metoda descrisă la determinarea cenuşii brute. Se poate utiliza şi cenuşă obţinută din analiza respectivă.
Se introduce cenuşa într-un pahar de laborator de 250-400 ml, utilizând 75 ml de acid clorhidric (punctul 3.1). Se aduce lent la fierbere şi se fierbe încet timp de 15 minute. Soluţia caldă se filtrează printr-un filtru de hârtie lipsit de cenuşă, iar reziduul se spală cu apă caldă până când reacţia acidă nu mai este vizibilă. Filtrul care conţine reziduul se usucă şi se calcinează într-un creuzet tarat, la o temperatură de minimum 550 °C şi maximum 700 °C. Se lasă să se răcească într-un desicator şi se cântăreşte.
5.2.Metoda B
Se cântăresc 5 g de eşantion cu o abatere de 1 mg şi se introduc într-un pahar de laborator de 250-400 ml. Se adaugă succesiv 25 ml apă şi 25 ml acid clorhidric (punctul 3.1), se amestecă şi se aşteaptă ca efervescenţa să înceteze. Se adaugă încă 50 ml de acid clorhidric (punctul 3.1). Se aşteaptă ca degajarea de gaz să înceteze, apoi se introduce paharul de laborator într-o baie de apă la temperatura de fierbere şi se menţine acolo timp de 30 de minute sau, dacă este necesar, mai mult, pentru ca amidonul eventual prezent să se hidrolizeze complet. Se filtrează până este încă cald, printr-un filtru lipsit de cenuşă, iar filtrul se spală în 50 ml de apă caldă (a se vedea observaţia 7). Se introduce filtrul care conţine reziduul într-un creuzet pentru calcinare, se usucă şi se calcinează la o temperatură de minimum 550 °C şi maximum 700 °C. Se introduce cenuşa într-un pahar de laborator de 250-400 ml, utilizând 75 ml de acid clorhidric (punctul 3.1); se continuă astfel cum se descrie la punctul 5.1, al doilea paragraf.
6.Calculul rezultatelor
Se calculează greutatea reziduului prin deducerea tarei. Rezultatul se exprimă ca procent din eşantion.
7.Observaţie
Dacă filtrarea se dovedeşte dificilă, se reia analiza, înlocuind cei 50 ml de acid clorhidric (punctul 3.1) cu 50 ml de acid tricloracetic, soluţie 20 % (greutate/volum) (punctul 3.2) şi spălând filtrul într-o soluţie caldă de acid tricloracetic 1 % (punctul 3.3).
(N)DETERMINAREA FOSFORULUI TOTAL
Fosforul total se determină prin:
- metoda de analiză prevăzută de EN 15510 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea calciului, sodiului, fosforului, magneziului, potasiului, fierului, zincului, cuprului, manganului, cobaltului, molibdenului şi plumbului prin ICP-AES; sau
- metoda de analiză prevăzută de EN 15621 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea calciului, sodiului, fosforului, magneziului, potasiului, sulfului, fierului, zincului, cuprului, manganului şi cobaltului după dizolvarea sub presiune prin ICP-AES; sau
- metoda fotometrică, astfel cum este descrisă în continuare.
METODA FOTOMETRICĂ
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Această metodă permite determinarea în furaje a conţinutului de fosfor total. Ea este indicată în special pentru analiza produselor sărace în fosfor. În anumite cazuri (produs bogat în fosfor), se poate utiliza o metodă gravimetrică.
2.Principiu
Eşantionul se mineralizează, fie prin combustie uscată (în cazul furajelor organice), fie prin dizolvare în mediu acid (în cazul furajelor combinate conţinând minerale şi al celor lichide), iar apoi se introduce în soluţie acidă. Soluţia se tratează cu reactivul molibdovanadat. Densitatea optică a soluţiei galbene astfel formate se măsoară cu un spectrofotometru la 430 nm.
3.Reactivi

3.1.

Carbonat de calciu.

3.2.

Acid clorhidric, 20 = 1,10 g/ml (aproximativ 6 mol/litru).

3.3.

Acid azotic, 20 = 1,045 g/ml.

3.4.

Acid azotic, 20 = 1,38-1,42 g/ml.

3.5.

Acid sulfuric, 20 = 1,84 g/ml.

3.6.

Reactiv molibdovanadat: se amestecă 200 ml de soluţie de heptamolibdat de amoniu (punctul 3.6.1), 200 ml de soluţie de monovanadat de amoniu (punctul 3.6.2) şi 134 ml de acid azotic (punctul 3.4) într-un balon gradat de 1 litru. Se completează până la volum cu apă.

3.6.1.

Soluţie de heptamolibdat de amoniu: se dizolvă în apă fierbinte 100 g de heptamolibdat de amoniu (NH4) 6Mo7O24.4H2O. Se adaugă 10 ml de amoniac (concentraţie 0,91 g/ml) şi se completează cu apă până la 1 litru.

3.6.2.

Soluţie de monovanadat de amoniu: se dizolvă 2,35 g de monovanadat de amoniu NH4VO3 în 400 ml de apă fierbinte. Amestecând constant, se adaugă lent 20 ml de acid azotic diluat [7 ml de HNO3 (punctul 3.4) + 13 ml de H2O] şi se completează cu apă până la 1 litru.

3.7.

Soluţie etalon de 1 mg de fosfor per ml: se dizolvă 4,387 g de fosfat diacid de potasiu KH2PO4 în apă. Se completează cu apă până la 1 litru.

4.Aparatură

4.1.

Creuzete pentru calcinare din silice, porţelan sau platină.

4.2.

Cuptor cu muflă electric, dotat cu termostat reglat la 550 °C.

4.3.

Flacon Kjeldahl de 250 ml.

4.4.

Baloane gradate şi pipete de precizie.

4.5.

Spectrofotometru.

4.6.

Eprubete cu diametru de aproximativ 16 mm, cu dopuri gradate la un diametru de 14,5 mm; capacitate: 25-30 ml.

5.Procedura
5.1.Prepararea soluţiei
În funcţie de natura eşantionului, soluţia se prepară astfel cum se indică la punctul 5.1.1 sau 5.1.2.
5.1.1.Procedura uzuală
Se cântăreşte 1 g de eşantion, sau mai mult, cu o abatere de 1 mg. Se introduce eşantionul de testat într-un flacon Kjeldahl, se adaugă 20 ml de acid sulfuric (punctul 3.5), se agită pentru a impregna complet substanţa cu acid şi pentru a preveni ca substanţa să adere pe pereţii flaconului, se încălzeşte şi se menţine la punctul de fierbere timp de 10 minute. Se lasă să se răcească uşor, se adaugă 2 ml de acid azotic (punctul 3.4), se încălzeşte uşor, se lasă să se răcească uşor, se mai adaugă puţin acid azotic (punctul 3.4) şi se readuce la punctul de fierbere. Se repetă această procedură până se obţine o soluţie incoloră. Se răceşte, se adaugă puţină apă, se decantează lichidul într-un balon gradat de 500 ml clătind flaconul Kjeldahl cu apă fierbinte. Se lasă să se răcească, se completează până la volum cu apă, se omogenizează şi se filtrează.
5.1.2.Eşantioane care conţin substanţe organice şi sunt lipsite de fosfaţi diacizi de calciu şi magneziu
Se cântăresc aproximativ 2,5 g de eşantion cu abatere de 1 mg într-un creuzet de calcinare. Se amestecă eşantionul de testat cu 1 g de carbonat de calciu (punctul 3.1) până când se obţine un amestec complet omogen. Se calcinează în cuptor la 550 °C până se obţine o cenuşă albă sau gri (o cantitate mică de cărbune se ignoră). Se transferă cenuşa într-un pahar de laborator de 250 ml. Se adaugă 20 ml de apă şi acid clorhidric (punctul 3.2) până când efervescenţa încetează. Se adaugă încă 10 ml de acid clorhidric (punctul 3.2). Se aşază paharul de laborator pe o baie de nisip şi se evaporă până la uscare, pentru a face silicea insolubilă. Se redizolvă reziduul în 10 ml de acid azotic (punctul 3.3) şi se fierbe pe baia de nisip sau pe o plită timp de 5 minute, fără a se evapora până la uscare. Se decantează lichidul într-un balon gradat de 500 ml, clătind paharul de mai multe ori cu apă fierbinte. Se lasă să se răcească, se completează până la volum cu apă, se omogenizează şi se filtrează.
5.2.Apariţia coloraţiei şi măsurarea densităţii optice
Se diluează o parte alicotă de filtrat obţinut ca la punctul 5.1.1 sau 5.1.2 pentru a obţine o concentraţie de fosfor de maximum 40 g/ml. Se introduc 10 ml din această soluţie într-o eprubetă (punctul 4.6) şi se adaugă 10 ml de reactiv molibdovanadat (punctul 3.6). Se omogenizează şi se lasă să stea timp de cel puţin 10 minute la 20 °C. Densitatea optică se măsoară cu un spectrofotometru la 430 nm, prin comparaţie cu o soluţie obţinută prin adăugarea de 10 ml de reactiv molibdovanadat (punctul 3.6) la 10 ml de apă.
5.3.Curba de calibrare
Din soluţia etalon (punctul 3.7) se prepară soluţii care conţin 5, 10, 20, 30 şi 40 g de fosfor per ml, respectiv. Se iau 10 ml din fiecare din aceste soluţii şi se adaugă la 10 ml de reactiv molibdovanadat (punctul 3.6). Se omogenizează şi se lasă să stea timp de cel puţin 10 minute la 20 °C. Densitatea optică se măsoară astfel cum se indică la punctul 5.2. Se trasează curba de calibrare prin înscrierea grafică a densităţilor optice în raport cu cantităţile corespunzătoare de fosfor. Pentru concentraţii cuprinse între 0 şi 40 g/ml, curba va fi liniară.
6.Calculul rezultatelor
Cantitatea de fosfor din eşantionul de testat se determină prin utilizarea curbei de calibrare.
Rezultatul se exprimă ca procent din eşantion.
Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele obţinute în două determinări paralele efectuate pe acelaşi eşantion nu depăşesc:
- 3 %, relativ la rezultatul mai mare, pentru un conţinut de fosfor mai mic de 5 %;
- 0,15 % în valoare absolută, pentru un conţinut de fosfor egal sau mai mare de 5 %.
(O)DETERMINAREA CLORULUI DIN CLORURI
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Această metodă permite determinarea cantităţii de clor din clorurile solubile în apă, exprimate convenţional ca clorură de sodiu. Este aplicabilă tuturor furajelor.
2.Principiu
Clorurile se dizolvă în apă. Dacă produsul conţine materii organice, se limpezeşte. Soluţia se acidifică uşor cu acid azotic, iar clorurile precipită sub formă de clorură de argint cu ajutorul unei soluţii de nitrat de argint. Excesul de nitrat de argint se titrează cu o soluţie de tiocianat de amoniu, prin metoda Volhard.
3.Reactivi

3.1.

Soluţie de tiocianat de amoniu 0,1 mol/litru.

3.2.

Soluţie de nitrat de argint 0,1 mol/litru.

3.3.

Soluţie saturată de sulfat feric de amoniu (NH4)Fe(SO4)2.

3.4.

Acid azotic, concentraţie: 1,38 g/ml.

3.5.

Eter dietilic.

3.6.

Acetonă.

3.7.

Soluţie Carrez I: se dizolvă 21,9 g de acetat de zinc, Zn (CH3COO)2·2H2O şi 3 g de acid acetic glacial în apă. Se completează cu apă până la 100 ml.

3.8.

Soluţie Carrez II: se dizolvă 10,6 g de ferocianură de potasiu, K4Fe(CN)6·3H2O în apă. Se completează cu apă până la 100 ml.

3.9.

Cărbune activ, lipsit de cloruri şi fără a le absorbi.

4.Aparatură
Mixer (agitator): aproximativ 35-40 rpm.
5.Procedura
5.1.Prepararea soluţiei
În funcţie de natura eşantionului, se prepară o soluţie conform indicaţiilor de la punctul 5.1.1, 5.1.2 sau 5.1.3.
În acelaşi timp, se efectuează un test martor fără eşantionul de analizat.
5.1.1.Eşantioane fără materii organice
Se cântăresc maximum 10 g de eşantion cu o abatere de 1 mg, care conţin maximum 3 g de clor sub formă de cloruri. Se introduc, împreună cu 400 ml de apă, într-un balon gradat de 500 ml la aproximativ 20 °C. Se amestecă timp de 30 de minute în agitator, se aduce la volum, se omogenizează şi se filtrează.
5.1.2.Eşantioane care conţin materii organice, exceptând produsele menţionate la punctul 5.1.3
Se cântăresc aproximativ 5 g de eşantion cu o abatere de 1 mg şi se introduc, împreună cu 1 g de cărbune activ, într-un balon gradat de 500 ml. Se adaugă 400 ml apă la aproximativ 20 °C şi 5 ml de soluţie Carrez I (punctul 3.7), se amestecă timp de 30 de secunde, apoi se adaugă 5 ml de soluţie Carrez II (punctul 3.8). Se amestecă timp de 30 de minute în agitator, se aduce la volum, se omogenizează şi se filtrează.
5.1.3.Furaje preparate termic, turte şi făină de in, produse bogate în făină de in şi alte produse bogate în mucilagii sau în substanţe coloidale (de exemplu amidon dextrinat)
Se prepară soluţia astfel cum se descrie la punctul 5.1.2, dar nu se filtrează. Se decantează (dacă este necesar, se centrifughează), se îndepărtează 100 ml lichid supernatant şi se transferă într-un flacon de măsurare de 200 ml. Se amestecă cu acetonă (punctul 3.6) şi se aduce la volum cu acest solvent, se omogenizează şi se filtrează.
5.2.Titrarea
Cu ajutorul unei pipete, se transferă într-un flacon Erlenmeyer o cantitate cuprinsă între de 25 şi 100 ml de filtrat (în funcţie de conţinutul anticipat de clor), obţinut astfel cum se descrie la punctul 5.1.1, 5.1.2 sau 5.1.3. Porţia alicotă nu trebuie să conţină mai mult de 150 mg de clor (Cl). Dacă este necesar, se diluează cu maximum 50 ml de apă, se adaugă 5 ml acid azotic (punctul 3.4), 2 ml de soluţie saturată de sulfat feric de amoniu (punctul 3.3) şi două picături de soluţie de tiocianat de amoniu (punctul 3.1) transferată cu ajutorul unei biurete umplute până la gradaţia zero. Cu ajutorul unei biurete, se transferă soluţia de nitrat de argint (punctul 3.2) astfel încât să se obţină un exces de 5 ml. Se adaugă 5 ml de eter dietilic (punctul 3.5) şi se agită puternic pentru a coagula precipitatul. Excesul de nitrat de argint se titrează cu soluţia de tiocianat de amoniu (punctul 3.1) până când coloraţia maro-roşcat a persistat timp de un minut.
6.Calculul rezultatelor
Cantitatea de clor (X), exprimată ca % de clorură de sodiu, se calculează cu ajutorul următoarei formule:
unde:

V1

=

ml de soluţie de nitrat de argint 0,1 mol/l adăugată;

V2

=

ml de soluţie de tiocianat de amoniu 0,1 mol/l utilizată la titrare;

m

=

g din greutatea eşantionului în partea alicotă.

Dacă testul martor indică un consum de soluţie de nitrat de argint 0,1 mol/l, se deduce această valoare din volum (V1 - V2).
7.Observaţii

7.1.

Titrarea se poate face şi prin potenţiometrie sau amperometrie.

7.2.

În cazul produselor foarte bogate în uleiuri şi grăsimi, se procedează mai întâi la o degresare cu eter dietilic sau cu eter de petrol.

7.3.

În cazul făinii de peşte, titrarea se poate efectua prin metoda Mohr."

ANEXA IV:
"- ANEXA IV: METODE DE ANALIZĂ PENTRU CONTROLAREA NIVELULUI AUTORIZAT DE ADITIVI DIN FURAJE
(A)DETERMINAREA VITAMINEI A
Vitamina A se determină prin:
- Metoda de analiză prevăzută de EN 17547 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea conţinutului de vitamine A, E şi D (1) - Metodă care utilizează extracţia în fază solidă (SPE) şi cromatografia lichidă de înaltă performanţă (HPLC); sau
(1)Metoda de analiză prevăzută de EN 17547 este menţionată ca metodă alternativă care trebuie utilizată în scopul controlului oficial pentru determinarea vitaminei A şi E în locul metodei descrise pentru determinarea vitaminei A în partea A din prezenta anexă şi pentru vitamina E în partea B din prezenta anexă.
- prin cromatografie lichidă de înaltă performanţă (RP-HPLC) cu fază inversată, utilizând un detector UV sau un detector de fluorescenţă, astfel cum se descrie la punctele 1-9 de mai jos.
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Această metodă permite determinarea nivelului de vitamină A (retinol) din furaje. Vitamina A include alcoolul all-trans-retinil şi izomerii săi cis, care se determină prin această metodă. Conţinutul de vitamină A se exprimă în unităţi internaţionale (UI) per kg O UI corespunde activităţii a 0,300 g de alcool all-trans-vitamină A sau a 0,344 g all-trans-vitamină A acetat sau 0,550 g all-trans-vitamină A palmitat.
Limita de cuantificare este 2 000 UI de vitamină A/kg.
2.Principiu
Eşantionul se hidrolizează cu o soluţie de hidroxid de potasiu etanolic, iar vitamina A se extrage cu eter de petrol. Solventul se îndepărtează prin evaporare, iar reziduul se dizolvă în metanol şi, dacă este necesar, se diluează până la concentraţia necesară. Conţinutul de vitamină A se determină prin cromatografie lichidă de înaltă performanţă cu fază inversată (RP-HPLC) cu ajutorul unui detector de UV sau de fluorescenţă. Parametrii cromatografiei se aleg astfel încât să nu existe separaţie între alcoolul all-trans-vitamina A şi izomerii săi cis.
3.Reactivi

3.1.

Etanol, = 96 %

3.2.

Eter de petrol, interval de fierbere 40-60 °C

3.3.

Metanol

3.4.

Soluţie de hidroxid de potasiu, c = 50 g/100 ml

3.5.

Soluţie de ascorbat de sodiu, c = 10 g/100 ml (a se vedea observaţiile de la punctul 7.7)

3.6.

Sulfură de sodiu, Na2S · x H2O (x = 7 - 9)

3.6.1.

Soluţie de sulfură de sodiu, c = 0,5 mol/l în glicerol, = 120 g/l (pentru x = 9) (a se vedea observaţiile de la punctul 7.8)

3.7.

Soluţie de fenolftaleină, c = 2 g/100 ml în etanol (punctul 3.1)

3.8.

2-propanol

3.9.

Fază mobilă pentru HPLC: amestec de metanol (punctul 3.3) şi apă, de exemplu 980 + 20 (v + v). Proporţia exactă este determinată de caracteristicile coloanei folosite.

3.10.

Azot, lipsit de oxigen

3.11.

All-trans-vitamină A acetat, extra pură, cu activitate certificată, de exemplu, 2,80 × 106 UI/g

3.11.1.

Soluţie stoc de all-trans-vitamină A acetat: Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 50 mg de vitamină A acetat (punctul 3.11) într-un balon gradat de 100 ml. Se dizolvă în 2-propanol (punctul 3.8) şi se completează până la semn cu acelaşi solvent. Concentraţia nominală a acestei soluţii este de 1 400 UI vitamină A per ml. Conţinutul exact se determină în conformitate cu indicaţiile de la punctul 5.6.3.1.

3.12.

All-trans-vitamină A palmitat, extra pură, cu activitate certificată, de exemplu 1,80 × 106 UI/g

3.12.1.

Soluţie stoc de all-trans-vitamină A palmitat: Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 80 mg de vitamină A palmitat (punctul 3.12) într-un balon gradat de 100 ml. Se dizolvă în 2-propanol (punctul 3.8) şi se completează până la semn cu acelaşi solvent. Concentraţia nominală a acestei soluţii este de 1 400 UI vitamină A per ml. Conţinutul exact se determină în conformitate cu indicaţiile de la punctul 5.6.3.2.

3.13.

2,6-di-terţ-butil-4-metilfenol (BHT) (a se vedea observaţiile de la punctul 7.5)

4.Aparatură

4.1.

Evaporator rotativ cu vid

4.2.

Sticlărie laborator brună

4.2.1.

Baloane cu fund plat sau flacoane tip Erlenmeyer, 500 ml, cu orificiu din sticlă şlefuită.

4.2.2.

Baloane gradate cu dopuri de sticlă şlefuită, cu gât îngust, de 10, 25, 100 şi 500 ml.

4.2.3.

Pâlnii de separare, conice, 1 000 ml, cu dopuri de sticlă şlefuită.

4.2.4.

Flacoane piriforme, 250 ml, cu orificiu din sticlă şlefuită.

4.3.

Condensator Allihn, cu lungime a mantalei de 300 mm, cu îmbinare de sticlă şlefuită şi cu adaptor pentru conductă de alimentare cu gaz

4.4.

Filtru de hârtie plisată pentru separarea fazelor, cu diametru de 185 mm (de exemplu Schleicher & Schuell 597 HY 1/2)

4.5.

Echipament HPLC cu sistem de injecţie

4.5.1.

Coloană pentru cromatografie lichidă, 250 mm × 4 mm, C18, cu particule de 5 sau 10 m, sau echivalent (criteriu de performanţă: un singur vârf pentru toţi izomerii de retinol în condiţiile HPLC).

4.5.2.

Detector de UV sau de fluorescenţă, cu ajustare variabilă a lungimii de undă.

4.6.

Spectrofotometru cu celule de cuarţ de 10 mm.

4.7.

Baie de apă cu agitator magnetic.

4.8.

Aparat de extracţie (a se vedea figura 1) compus din:

4.8.1.

Cilindru din sticlă cu capacitate de 1 l prevăzut cu gât şi dop de sticlă şlefuite.

4.8.2.

Piesă din sticlă şlefuită echipată cu o tijă laterală şi un tub reglabil care trece prin centru. Tubul ajustabil are un capăt inferior în formă de «U» şi o duză la capătul opus, astfel încât stratul superior de lichid din cilindru să poată fi transferat într-o pâlnie de separare.

5.Procedura
Notă: Vitamina A este sensibilă la lumină (UV) şi la oxidare. Toate operaţiunile se efectuează în absenţa luminii (în recipiente de sticlă brună sau protejate cu folie de aluminiu) şi în absenţa oxigenului (se expune unui flux de azot). În timpul extracţiei, aerul de deasupra lichidului se înlocuieşte cu azot (a se evita excesul de presiune slăbind din când în când dopul).
5.1.Pregătirea eşantionului
Se macină eşantionul pentru a trece printr-o sită cu ochiuri de 1 mm, evitându-se producerea de căldură. Măcinarea trebuie efectuată imediat înainte de cântărire şi saponificare, în caz contrar riscându-se pierderi de vitamina A. Nu se macină eşantionul (eşantioanele) în cazul în care distribuţia granulometrică este adecvată (de exemplu, preamestecuri şi aditivi furajeri).
5.2.Saponificarea
În funcţie de conţinutul de vitamină A, se cântăresc 2-25 g de eşantion cu o abatere de 1 mg într-un balon cu fund plat sau într-un flacon tip Erlenmeyer de 500 ml (punctul 4.2.1). În cazul concentraţiilor scăzute, greutatea eşantionului poate fi mărită pentru a avea suficiente particule în porţiunea de testare. Se adaugă, agitând circular, 130 ml de etanol (punctul 3.1), aproximativ 100 mg de BHT (punctul 3.13), 2 ml de soluţie de ascorbat de sodiu (punctul 3.5) şi 2 ml de soluţie de sulfură de sodiu (punctul 3.6). Se montează un condensator (punctul 4.3) la balon şi acesta se scufundă într-o baie de apă cu agitator magnetic (punctul 4.7). Se încălzeşte până la fierbere şi se lasă să reflueze timp de 5 minute. Apoi se adaugă 25 ml de soluţie de hidroxid de potasiu (punctul 3.4) prin condensator (punctul 4.3) şi se lasă să reflueze timp de încă 25 min, amestecând sub un flux uşor de azot. Apoi se clăteşte condensatorul cu circa 20 ml de apă şi se răceşte conţinutul vasului la temperatura camerei.
5.3.Extracţie
Se transferă cantitativ prin decantare soluţia saponificată, prin clătire cu un volum total de 250 ml de apă într-o pâlnie de separare de 1 000 ml (punctul 4.2.3) sau în aparatul de extracţie (punctul 4.8). Se clăteşte succesiv vasul de saponificare cu 25 ml de etanol (punctul 3.1) şi 100 ml de eter de petrol (punctul 3.2) şi se transferă lichidul de clătire în pâlnia de separare sau în aparatul de extracţie. Proporţia de apă şi etanol în soluţiile combinate trebuie să fie de cca 2:1. Se agită energic timp de 2 minute şi se lasă să se sedimenteze timp de 2 minute.
5.3.1.Extracţia folosind o pâlnie de separare (punctul 4.2.3)
Când straturile s-au separat (a se vedea observaţia de la punctul 7.3), se transferă stratul de eter de petrol într-o altă pâlnie de separare (punctul 4.2.3). Se repetă această extracţie de două ori cu 100 ml eter de petrol (punctul 3.2) şi de două ori cu 50 ml eter de petrol (punctul 3.2).
Se spală de două ori extractele combinate în pâlnia de separare amestecând uşor (pentru a se evita formarea de emulsii) cu cantităţi de 100 ml de apă şi din nou, prin agitare repetată cu alte cantităţi de apă de 100 ml până când apa rămâne incoloră după adăugarea unei soluţii de fenolftaleină (punctul 3.7) (patru spălări sunt în general suficiente). Se filtrează extractul spălat cu un filtru cutat uscat pentru separarea fazelor (punctul 4.4) pentru a se elimina apa în suspensie şi se transferă într-un balon gradat de 500 ml (punctul 4.2.2). Se clătesc pâlnia de separare şi filtrul cu 50 ml eter de petrol (punctul 3.2), se completează până la semn cu eter de petrol (punctul 3.2) şi se amestecă bine.
5.3.2.Extracţia folosind un aparat de extracţie (punctul 4.8)
Când straturile s-au separat (a se vedea observaţia de la punctul 7.3), se înlocuieşte dopul cilindrului de sticlă (punctul 4.8.1) prin inserţie de sticlă şlefuită (punctul 4.8.2) şi se amplasează extremitatea inferioară în formă de «U» a tubului reglabil astfel încât să se afle exact deasupra nivelului interfeţei. Aplicând o presiune de la generatorul de azot prin braţul lateral, se transferă stratul superior de eter de petrol într-o pâlnie de separare de 1 000 ml (punctul 4.2.3). Se adaugă 100 ml de eter de petrol (punctul 3.2) în cilindrul de sticlă, se pune dopul şi se agită energic. Se lasă straturile să se separe şi se transferă stratul superior în pâlnia de separare, la fel ca înainte. Se repetă procedura de extracţie cu încă 100 ml eter de petrol (punctul 3.2), apoi de două ori cu cantităţi de 50 ml eter de petrol (punctul 3.2) şi se adaugă straturile de eter de petrol în pâlnia de separare.
Se spală extractele combinate de eter de petrol conform procedurii descrise la punctul 5.3.1 şi se procedează conform punctului menţionat.
5.4.Prepararea soluţiei de eşantion pentru HPLC
Se pipetează o parte alicotă din soluţia de eter de petrol (de la punctul 5.3.1 sau 5.3.2) într-un balon piriform de 250 ml (punctul 4.2.4). Se evaporă solventul aproape în totalitate pe evaporatorul rotativ (punctul 4.1), cu presiune redusă, la o temperatură a băii de apă de maximum 40 °C. Se restabileşte presiunea atmosferică prin admisia azotului (punctul 3.10) şi se îndepărtează flaconul din evaporatorul rotativ. Se elimină restul de solvent cu un jet de azot (punctul 3.10), iar reziduul se dizolvă imediat într-un volum cunoscut (10-100 ml) de metanol (punctul 3.3) (concentraţia de vitamină A trebuie să fie cuprinsă în intervalul 5-30 UI/ml).
5.5.Determinarea prin HPLC
Vitamina A se separă pe o coloană cu fază inversată C18 (punctul 4.5.1), iar concentraţia se măsoară cu un detector de UV (punctul 325 nm) sau un detector de fluorescenţă (excitaţie: 325 nm, emisie: 475 nm) (punctul 4.5.2).
Se injectează o porţie alicotă (de exemplu 20 l) din soluţia metanolică obţinută la punctul 5.4 şi se eluează cu faza mobilă (punctul 3.9). Se calculează înălţimea medie a vârfului (aria) mai multor injectări ale aceleiaşi soluţii de eşantion şi înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor mai multor injectări ale soluţiilor de calibrare (punctul 5.6.2).
Condiţii HPLC
Următoarele condiţii sunt propuse cu titlu orientativ; se pot aplica şi alte condiţii, dacă acestea duc la rezultate echivalente.

Coloană pentru cromatografie lichidă (punctul 4.5.1):

250 mm × 4 mm, C18, particule de 5 sau 10 m sau echivalent

Faza mobilă (punctul 3.9):

Amestec de metanol (punctul 3.3) şi apă de exemplu 980 + 20 (v + v).

Debit:

1-2 ml/min

Detector (punctul 4.5.2):

detector de UV (punctul 325 nm) sau detector de fluorescenţă (excitaţie: 325 nm/emisie: 475 nm)

5.6.Calibrarea
5.6.1.Prepararea soluţiilor etalon de lucru
Se pipetează 20 ml de soluţie stoc de vitamină A acetat (punctul 3.11.1) sau 20 ml de soluţie stoc de vitamină A palmitat (punctul 3.12.1) într-un balon cu fund plat sau într-un flacon tip Erlenmeyer de 500 ml (punctul 4.2.1) şi se hidrolizează astfel cum se descrie la punctul 5.2, dar fără a se adăuga BHT. În continuare se extrage cu eter de petrol (punctul 3.2) conform punctului 5.3 şi se completează până la 500 ml cu eter de petrol (punctul 3.2). Se lasă să se evaporeze 100 ml din acest extract aproape în totalitate în evaporatorul rotativ (a se vedea punctul 5.4), se îndepărtează solventul rămas într-un curent de azot (punctul 3.10) şi se dizolvă din nou reziduul în 10,0 ml de metanol (punctul 3.3). Concentraţia nominală a acestei soluţii este de 560 UI vitamină A per ml. Conţinutul exact se determină în conformitate cu indicaţiile de la punctul 5.6.3.3. Soluţia etalon de lucru trebuie să fie preparată imediat înainte de utilizare.
Se pipetează 2,0 ml din această soluţie etalon de lucru într-un balon gradat de 20 ml, se completează până la semn cu metanol (punctul 3.3) şi se amestecă. Concentraţia nominală a acestei soluţii etalon de lucru diluate este de 56 UI de vitamină A per ml.
5.6.2.Prepararea soluţiilor de calibrare şi a curbei de calibrare
Se transferă 1,0, 2,0, 5,0 şi 10,0 ml din soluţia etalon de lucru diluată într-o serie de baloane gradate de 20 ml, se completează până la semn cu metanol (punctul 3.3) şi se amestecă. Concentraţiile nominale ale acestor soluţii sunt de 2,8, 5,6, 14,0 şi respectiv 28,0 UI de vitamină A per ml.
Se injectează de mai multe ori câte 20 l din fiecare soluţie de calibrare şi se determină înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor. Utilizând înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor, se trasează o curbă de calibrare ţinând cont de rezultatele obţinute cu soluţia de control UV (punctul 5.6.3.3).
5.6.3.Standardizarea UV a soluţiilor etalon
5.6.3.1.Soluţia stoc de vitamină A acetat
Se pipetează 2,0 ml din soluţia stoc de vitamină A acetat (punctul 3.11.1) într-un balon gradat de 50 ml (punctul 4.2.2) şi se completează până la semn cu 2-propanol (punctul 3.8). Concentraţia nominală a acestei soluţii este de 56 UI vitamină A per ml. Se pipetează 3,0 ml din această soluţie diluată de vitamină A acetat într-un balon gradat de 25 ml şi se completează până la semn cu 2-propanol (punctul 3.8). Concentraţia nominală a acestei soluţii este de 6,72 UI vitamină A per ml. Se măsoară spectrul UV al acestei soluţii comparativ cu cel al soluţiei de 2-propanol (punctul 3.8), în spectrofotometru (punctul 4.6), în intervalul 300-400 nm. Maximumul de extincţie trebuie să fie între 325 şi 327 nm.
Calculul conţinutului de vitamină A:
5.6.3.2.Soluţia stoc de vitamină A palmitat
Se pipetează 2,0 ml de soluţie stoc de vitamină A palmitat (punctul 3.12.1) într-un balon gradat de 50 ml (punctul 4.2.2) şi se completează până la gradaţie cu propanol-2 (punctul 3.8). Concentraţia nominală a acestei soluţii este de 56 UI vitamină A per ml. Se pipetează 3,0 ml din această soluţie diluată de vitamină A palmitat într-un balon gradat de 25 ml şi se completează până la semn cu 2-propanol (punctul 3.8). Concentraţia nominală a acestei soluţii este de 6,72 UI vitamină A per ml. Se măsoară spectrul UV al acestei soluţii comparativ cu cel al soluţiei de 2-propanol (punctul 3.8), în spectrofotometru (punctul 4.6), în intervalul 300-400 nm. Maximumul de extincţie trebuie să fie între 325 şi 327 nm.
Calculul conţinutului de vitamină A:
5.6.3.3.Soluţia etalon de lucru de vitamină A
Se pipetează 3,0 ml din soluţia etalon de lucru nediluată de vitamină A, preparată conform punctului 5.6.1, într-un balon gradat de 50 ml (punctul 4.2.2) şi se completează până la semn cu 2-propanol (punctul 3.8). Se pipetează 5,0 ml din această soluţie într-un balon gradat de 25 ml şi se completează până la semn cu 2-propanol (punctul 3.8). Concentraţia nominală a acestei soluţii este de 6,72 UI vitamină A per ml. Se măsoară spectrul UV al acestei soluţii comparativ cu cel al soluţiei de 2-propanol (punctul 3.8), în spectrofotometru (punctul 4.6), în intervalul 300-400 nm. Maximumul de extincţie trebuie să fie între 325 şi 327 nm.
Calculul conţinutului de vitamină A:
6.Calculul rezultatelor
Din înălţimea (aria) medie a vârfurilor de vitamină A ale soluţiei de eşantion se determină concentraţia soluţiei de eşantion în UI/ml prin referire la curba de calibrare (punctul 5.6.2).
Conţinutul w de vitamină A al eşantionului, în UI/kg, este dat de următoarea formulă:
unde:

c

=

concentraţia de vitamină A a soluţiei de eşantion (punctul 5.4), în UI/ml;

V1

=

volumul soluţiei de eşantion (punctul 5.4), în ml;

V2

=

volumul de alicotă prelevat la punctul 5.4, în ml;

m

=

greutatea porţiunii de testat, în g.

7.Observaţii

7.1.

Pentru eşantioanele cu concentraţii mici de vitamină A poate fi utilă combinarea extractelor cu eter de petrol provenite din două operaţii de saponificare (cantitate cântărită: 25 g) într-o soluţie de eşantion pentru determinare prin HPLC.

7.2.

Eşantionul prelevat pentru analiză nu conţine mai mult de 2 g de grăsime.

7.3.

Dacă nu are loc separaţia fazelor, se adaugă cca 10 ml de etanol (punctul 3.1) pentru a fragmenta emulsia.

7.4.

În cazul uleiului din ficat de cod şi al altor grăsimi pure, timpul de saponificare se prelungeşte la 45-60 minute.

7.5.

BHT poate fi înlocuit cu hidrochinonă.

7.6.

Utilizându-se o coloană cu fază normală, separarea izomerilor de retinol este posibilă. Dar în acest caz, înălţimile (ariile) vârfurilor izomerilor all-cis şi all-trans trebuie însumate pentru a face calcule.

7.7.

Soluţia de ascorbat de sodiu poate fi înlocuită cu cca 150 mg de acid ascorbic.

7.8.

Soluţia de sulfură de sodiu poate fi înlocuită cu cca 50 mg de EDTA.

7.9.

În cazul analizării vitaminei A în înlocuitorii de lapte, se acordă o atenţie deosebită la

- saponificare (punctul 5.2): din cauza cantităţii de grăsimi prezente în eşantion, poate fi necesară creşterea cantităţii de soluţie de hidroxid de potasiu (punctul 3.4);

- extracţie (punctul 5.3): din cauza prezenţei emulsiilor, poate fi necesară adaptarea valorii raportului de 2:1 pentru apă/etanol.

Pentru a verifica dacă metoda de analizare aplicată generează rezultate fiabile pentru această matrice specifică (înlocuitor de lapte), se aplică un test de recuperare pe o porţie suplimentară de testat. Dacă rata de recuperare este mai mică de 80 %, rezultatul analitic trebuie corectat în funcţie de recuperare.

8.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări paralele realizate pe acelaşi eşantion nu trebuie să depăşească 15 % din rezultatul superior.
9.Rezultatele unui studiu colaborativ (2)
(2)Studiu realizat de Grupul de lucru pentru furaje Verband Deutscher Landwirtschaftlicher Untersuchungs- und Forschungsanstalten (VDLUFA).

Preamestec

Furaje de tip preamestec

Concentrate minerale

Furaje proteice

Hrană pentru purcei

L

13

12

13

12

13

n

48

45

47

46

49

medie (UI/kg)

17,02 × 106

1,21 × 106

537 100

151 800

18 070

sr (UI/kg)

0,51 × 106

0,039 × 106

22 080

12 280

682

r (UI/kg)

1,43 × 106

0,109 × 106

61 824

34 384

1 910

CVr [%]

3,0

3,5

4,1

8,1

3,8

sR (UI/kg)

1,36 × 106

0,069 × 106

46 300

23 060

3 614

R (UI/kg)

3,81 × 106

0,193 × 106

129 640

64 568

10 119

CVR [%]

8,0

6,2

8,6

15

20

L: număr de laboratoare

n: număr de valori unice

sr: deviaţia standard a repetabilităţii

sR: deviaţia standard a reproductibilităţii

r: repetabilitate

R: reproductibilitate

CVr: coeficientul de variaţie a repetabilităţii

CVR: coeficientul de variaţie a reproductibilităţii

Figura 1 Aparat de extracţie (punctul 4.8)
(B)DETERMINAREA VITAMINEI E
Vitamina E se determină prin:
- Metoda de analiză prevăzută de EN 17547 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea conţinutului de vitamine A, E şi D (3) - Metodă care utilizează extracţia în fază solidă (SPE) şi cromatografia lichidă de înaltă performanţă (HPLC); sau
(3)Metoda de analiză prevăzută de EN 17547 este menţionată ca metodă alternativă care trebuie utilizată în scopul controlului oficial pentru determinarea vitaminei A şi E în locul metodei descrise pentru determinarea vitaminei A în partea A din prezenta anexă şi pentru vitamina E în partea B din prezenta anexă.
- prin cromatografie lichisdă de înaltă performanţă (RP-HPLC) cu fază inversată, utilizând un detector UV sau un detector de fluorescenţă, astfel cum se descrie la punctele 1-9 de mai jos.
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Această metodă permite determinarea nivelului de vitamină E din furaje. Conţinutul de vitamină E se exprimă ca mg DL--tocoferol acetat per kg 1 mg DL--tocoferol acetat corespunde la 0,91 mg DL--tocoferol (vitamină E).
Limita de cuantificare este 2 mg de vitamină E/kg Această limită de cuantificare se obţine doar cu detectorul de fluorescenţă. Cu un detector de UV, limita de cuantificare este 10 mg/kg
2.Principiu
Eşantionul se hidrolizează cu o soluţie etanolică de hidroxid de potasiu, iar vitamina E se extrage cu eter de petrol. Solventul se îndepărtează prin evaporare, iar reziduul se dizolvă în metanol şi, dacă este necesar, se diluează până la concentraţia necesară. Conţinutul de vitamina E se determină prin cromatografie lichidă de înaltă performanţă cu fază inversată (RP-HPLC), utilizând un detector de fluorescenţă sau de UV.
3.Reactivi

3.1.

Etanol, = 96 %

3.2.

Eter de petrol, interval de fierbere 40-60 °C

3.3.

Metanol

3.4.

Soluţie de hidroxid de potasiu, c = 50 g/100 ml

3.5.

Soluţie de ascorbat de sodiu, c = 10 g/100 ml (a se vedea observaţiile de la punctul 7.7)

3.6.

Sulfură de sodiu, Na2S · x H2O (x = 7 - 9)

3.6.1.

Soluţie de sulfură de sodiu, c = 0,5 mol/l în glicerol, = 120 g/l (pentru x = 9) (a se vedea observaţiile de la punctul 7.8)

3.7.

Soluţie de fenolftaleină, c = 2 g/100 ml în etanol (punctul 3.1)

3.8.

Fază mobilă pentru HPLC: amestec de metanol (punctul 3.3) şi apă, de exemplu 980 + 20 (v + v). Proporţia exactă este determinată de caracteristicile coloanei folosite.

3.9.

Azot, lipsit de oxigen

3.10.

DL--tocoferol acetat, extra pur, cu activitate certificată

3.10.1.

Soluţie stoc de DL--tocoferol acetat: Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 100 mg de DL--tocoferol acetat (punctul 3.10) într-un balon gradat de 100 ml. Se dizolvă în etanol (punctul 3.1) şi se completează până la semn cu acelaşi solvent. 1 ml din această soluţie conţine 1 mg de DL--tocoferol acetat. (pentru control UV a se vedea punctul 5.6.1.3; pentru stabilizare a se vedea observaţiile de la punctul 7.4).

3.11.

DL--tocoferol, extra pur, cu activitate certificată

3.11.1.

Soluţie stoc de DL--tocoferol: Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 100 mg de DL--tocoferol (punctul 3.11) într-un balon gradat de 100 ml. Se dizolvă în etanol (punctul 3.1) şi se completează până la semn cu acelaşi solvent. 1 ml din această soluţie conţine 1 mg de DL--tocoferol. (pentru control UV a se vedea punctul 5.6.2.3; pentru stabilizare a se vedea observaţiile de la punctul 7.4).

3.12.

2,6-di-terţ-butil-4-metilfenol (BHT) (a se vedea observaţiile de la punctul 7.5)

4.Aparatură

4.1.

Evaporator rotativ cu generare de film.

4.2.

Sticlărie laborator brună

4.2.1.

Baloane cu fund plat sau flacoane tip Erlenmeyer, 500 ml, cu orificiu din sticlă şlefuită;

4.2.2.

Baloane gradate cu dopuri de sticlă şlefuită, cu gât îngust, de 10, 25, 100 şi 500 ml;

4.2.3.

Pâlnii de separare, conice, 1 000 ml, cu dopuri de sticlă şlefuită;

4.2.4.

Flacoane piriforme, 250 ml, cu orificiu din sticlă şlefuită.

4.3.

Condensator Allihn, cu lungime a mantalei de 300 mm, cu îmbinare de sticlă şlefuită şi cu adaptor pentru conductă de alimentare cu gaz.

4.4.

Filtru de hârtie plisată pentru separarea fazelor, cu diametru de 185 mm (de exemplu Schleicher & Schuell 597 HY 1/2).

4.5.

Echipament HPLC cu sistem de injecţie

4.5.1.

Coloană pentru cromatografie lichidă, 250 mm × 4 mm, C18, particule de 5 sau 10 m, sau echivalent;

4.5.2.

Detector de fluorescenţă sau de UV, cu ajustare variabilă a lungimii de undă.

4.6.

Spectrofotometru cu celule de cuarţ de 10 mm.

4.7.

Baie de apă cu agitator magnetic.

4.8.

Aparat de extracţie (a se vedea figura 1) compus din:

4.8.1.

Cilindru din sticlă cu capacitate de 1 l prevăzut cu gât şi dop de sticlă şlefuite;

4.8.2.

Piesă din sticlă şlefuită echipată cu o tijă laterală şi un tub reglabil care trece prin centru. Tubul ajustabil are un capăt inferior în formă de «U» şi o duză la capătul opus, astfel încât stratul superior de lichid din cilindru să poată fi transferat într-o pâlnie de separare.

5.Procedura
Notă: Vitamina E este sensibilă la lumină (UV) şi la oxidare. Toate operaţiunile se efectuează în absenţa luminii (în recipiente de sticlă brună sau protejate cu folie de aluminiu) şi în absenţa oxigenului (se expune unui flux de azot). În timpul extracţiei, aerul de deasupra lichidului se înlocuieşte cu azot (a se evita excesul de presiune slăbind din când în când dopul).
5.1.Pregătirea eşantionului
Se macină eşantionul pentru a trece printr-o sită cu ochiuri de 1 mm, evitându-se producerea de căldură. Măcinarea trebuie efectuată imediat înainte de cântărire şi saponificare, în caz contrar riscându-se pierderi de vitamina E.
5.2.Saponificarea
În funcţie de greutatea conţinutului de vitamina E, se cântăresc, cu o abatere de 0,01 g, 2-25 g de eşantion într-un balon cu fund plat sau într-un flacon tip Erlenmeyer, de 500 ml (punctul 4.2.1). Se adaugă, agitând circular, 130 ml de etanol (punctul 3.1), aproximativ 100 mg de BHT (punctul 3.12), 2 ml de soluţie de ascorbat de sodiu (punctul 3.5) şi 2 ml de soluţie de sulfură de sodiu (punctul 3.6). Se montează un condensator (punctul 4.3) la vas şi se introduce vasul într-o baie de apă cu agitator magnetic (punctul 4.7). Se încălzeşte până la fierbere şi se lasă să reflueze timp de 5 minute. Apoi se adaugă 25 ml de soluţie de hidroxid de potasiu (punctul 3.4) prin condensator (punctul 4.3) şi se lasă să reflueze timp de încă 25 min, amestecând sub un flux uşor de azot. Apoi se clăteşte condensatorul cu circa 20 ml de apă şi se răceşte conţinutul vasului la temperatura camerei.
5.3.Extracţie
Se transferă cantitativ prin decantare soluţia saponificată, prin clătire cu un volum total de 250 ml de apă într-o pâlnie de separare de 1 000 ml (punctul 4.2.3) sau în aparatul de extracţie (punctul 4.8). Se clăteşte succesiv vasul de saponificare cu 25 ml de etanol (punctul 3.1) şi 100 ml de eter de petrol (punctul 3.2) şi se transferă lichidul de clătire în pâlnia de separare sau în aparatul de extracţie. Proporţia de apă şi etanol în soluţiile combinate trebuie să fie de cca 2:1. Se agită energic timp de 2 minute şi se lasă să se sedimenteze timp de 2 minute.
5.3.1.Extracţia folosind o pâlnie de separare (punctul 4.2.3)
Când straturile s-au separat (a se vedea observaţia de la punctul 7.3), se transferă stratul de eter de petrol într-o altă pâlnie de separare (punctul 4.2.3). Se repetă această extracţie de două ori cu 100 ml eter de petrol (punctul 3.2) şi de două ori cu 50 ml eter de petrol (punctul 3.2).
Se spală de două ori extractele combinate în pâlnia de separare amestecând uşor (pentru a se evita formarea de emulsii) cu cantităţi de 100 ml de apă şi din nou, prin agitare repetată cu alte cantităţi de apă de 100 ml până când apa rămâne incoloră după adăugarea unei soluţii de fenolftaleină (punctul 3.7) (patru spălări sunt în general suficiente). Se filtrează extractul spălat cu un filtru cutat uscat pentru separarea fazelor (punctul 4.4) pentru a se elimina apa în suspensie şi se transferă într-un balon gradat de 500 ml (punctul 4.2.2). Se clătesc pâlnia de separare şi filtrul cu 50 ml eter de petrol (punctul 3.2), se completează până la semn cu eter de petrol (punctul 3.2) şi se amestecă bine.
5.3.2.Extracţia folosind un aparat de extracţie (punctul 4.8)
Când straturile s-au separat (a se vedea observaţia de la punctul 7.3), se înlocuieşte dopul cilindrului de sticlă (punctul 4.8.1) prin inserţie de sticlă şlefuită (punctul 4.8.2) şi se amplasează extremitatea inferioară în formă de «U» a tubului reglabil astfel încât să se afle exact deasupra nivelului interfeţei. Aplicând o presiune de la generatorul de azot prin braţul lateral, se transferă stratul superior de eter de petrol într-o pâlnie de separare de 1 000 ml (punctul 4.2.3). Se adaugă 100 ml de eter de petrol (punctul 3.2) în cilindrul de sticlă, se pune dopul şi se agită energic. Se lasă straturile să se separe şi se transferă stratul superior în pâlnia de separare, la fel ca înainte. Se repetă procedura de extracţie cu încă 100 ml eter de petrol (punctul 3.2), apoi de două ori cu cantităţi de 50 ml eter de petrol (punctul 3.2) şi se adaugă straturile de eter de petrol în pâlnia de separare.
Se spală extractele combinate de eter de petrol conform procedurii descrise la punctul 5.3.1 şi se procedează conform punctului menţionat.
5.4.Prepararea soluţiei de eşantion pentru HPLC
Se pipetează o parte alicotă din soluţia de eter de petrol (de la punctul 5.3.1 sau 5.3.2) într-un balon piriform de 250 ml (punctul 4.2.4). Se evaporă solventul aproape în totalitate pe evaporatorul rotativ (punctul 4.1), cu presiune redusă, la o temperatură a băii de apă de maximum 40 °C. Se restabileşte presiunea atmosferică prin admisia azotului (punctul 3.9) şi se îndepărtează flaconul din evaporatorul rotativ. Se elimină restul de solvent cu un curent de azot (punctul 3.9) şi se dizolvă imediat reziduul într-un volum cunoscut (10-100 ml) de metanol (punctul 3.3) (concentraţia de DL--tocoferol trebuie să fie în intervalul 5-30 g/ml).
5.5.Determinarea prin HPLC
Vitamina E se separă pe o coloană cu fază inversată C18 (punctul 4.5.1), iar concentraţia se măsoară cu un detector de fluorescenţă (excitaţie: 295 nm, emisie: 330 nm) sau un detector UV (292 nm) (punctul 4.5.2).
Se injectează o porţie alicotă (de exemplu, 20 l) din soluţia metanolică obţinută la punctul 5.4 şi se eluează cu faza mobilă (punctul 3.8). Se calculează înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor pentru mai multe injectări ale aceleiaşi soluţii eşantion şi înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor pentru mai multe injectări ale soluţiilor de calibrare (punctul 5.6.2).
Condiţii HPLC
Următoarele condiţii sunt propuse cu titlu orientativ; se pot aplica şi alte condiţii, dacă acestea duc la rezultate echivalente.

Coloană pentru cromatografie lichidă (punctul 4.5.1):

250 mm × 4 mm, C18, particule de 5 sau 10 m sau echivalent

Faza mobilă (punctul 3.8):

Amestec de metanol (punctul 3.3) şi apă de exemplu, 980 + 20 (v + v).

Debit:

1-2 ml/min

Detector (punctul 4.5.2)

Detector de fluorescenţă (excitaţie: 295 nm/ emisie: 330 nm) sau detector UV (292 nm)

5.6.Calibrare (DL--tocoferol acetat sau DL--tocoferol)
5.6.1.Etalon de DL--tocoferol acetat
5.6.1.1.Prepararea soluţiei etalon de lucru
Se picură din pipetă 25 ml din soluţia stoc de Dl--tocoferol-tocoferol acetat (punctul 3.10.1) într-un balon cu fundul plat sau într-un flacon tip Erlenmeyer, de 500 ml (punctul 4.2.1) şi se hidrolizează conform procedurii descrise la punctul 5.2. Se realizează apoi extracţia cu eter de petrol (punctul 3.2) conform punctului 5.3 şi se completează până la 500 ml cu eter de petrol. Se lasă să se evaporeze 25 ml din acest extract aproape în totalitate în evaporatorul rotativ (a se vedea punctul 5.4), se îndepărtează solventul rămas într-un curent de azot (punctul 3.9) şi se dizolvă din nou reziduul în 25,0 ml de metanol (punctul 3.3). Concentraţia nominală a acestei soluţii este de 45,5 g DL--tocoferol per ml, echivalent cu 50 g DL--tocoferol acetat per ml. Soluţia etalon de lucru trebuie să fie preparată imediat înainte de utilizare.
5.6.1.2.Prepararea soluţiilor de calibrare şi a curbei de calibrare
Se transferă 1,0, 2,0, 4,0 şi 10,0 ml din soluţia etalon de lucru într-o serie de baloane gradate de 20 ml, se completează până la semn cu metanol (punctul 3.3) şi se amestecă. Concentraţiile nominale ale acestor soluţii sunt 2,5, 5,0, 10,0 şi 25,0 g/ml DL--tocoferol acetat, echivalent cu 2,28, 4,55, 9,10 g/ml şi 22,8 g/ml DL--tocoferol.
Se injectează de mai multe ori câte 20 l din fiecare soluţie de calibrare şi se determină înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor. În funcţie de înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor, se trasează o curbă de calibrare.
5.6.1.3.Standardizarea UV a soluţiei stoc de DL--tocoferol acetat (punctul 3.10.1)
Se diluează 5,0 ml din soluţia stoc de DL--tocoferol acetat (punctul 3.10.1) în 25,0 ml de etanol şi se măsoară spectrul UV al acestei soluţii faţă de etanol (punctul 3.1) în spectrofotometru (punctul 4.6), între 250 nm şi 320 nm.
Absorbţia maximă este de 284 nm:
La această diluţie trebuie să se obţină o valoare de extincţie între 0,84 şi 0,88.
5.6.2.Etalonul de DL--tocoferol
5.6.2.1.Prepararea soluţiei etalon de lucru
Se pun cu pipeta 2 ml din soluţia stoc de DL--tocoferol (punctul 3.11.1) într-un balon gradat de 50 ml, se dizolvă în metanol (punctul 3.3) şi se completează până la semn cu metanol. Concentraţia nominală a acestei soluţii este de 40 g DL--tocoferol per ml, echivalent cu 44,0 g DL--tocoferol acetat per ml. Soluţia etalon de lucru trebuie să fie preparată imediat înainte de utilizare.
5.6.2.2.Prepararea soluţiilor de calibrare şi a curbei de calibrare
Se transferă 1,0, 2,0, 4,0 şi 10,0 ml din soluţia etalon de lucru într-o serie de baloane gradate de 20 ml, se completează până la semn cu metanol (punctul 3.3) şi se amestecă. Concentraţiile nominale ale acestor soluţii sunt 2,0, 4,0, 8,0 şi 20,0 g/ml DL--tocoferol, echivalent cu 2,20, 4,40, 8,79 g/ml şi 22,0 g/ml DL--tocoferol acetat.
Se injectează de mai multe ori câte 20 l din fiecare soluţie de calibrare şi se determină înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor. În funcţie de înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor, se trasează o curbă de calibrare.
5.6.2.3.Standardizarea UV a soluţiei stoc de DL--tocoferol (punctul 3.11.1)
Se diluează 2,0 ml din soluţia stoc de DL--tocoferol (punctul 3.11.1) în 25,0 ml de etanol şi se măsoară spectrul UV al acestei soluţii faţă de etanol (punctul 3.1) în spectrofotometru (punctul 4.6) între 250 nm şi 320 nm. Absorbţia maximă este de 292 nm:
La această diluţie trebuie să se obţină o valoare de extincţie de 0,6.
6.Calculul rezultatelor
Pornindu-se de la înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor de vitamina E ale soluţiei de eşantion, se determină concentraţia soluţiei de eşantion în g/ml (calculată ca DL--tocoferol acetat) prin referire la curba de calibrare (punctul 5.6.1.2 sau 5.6.2.2).
Conţinutul w de vitamina E al eşantionului, exprimat în mg/kg, este dat de următoarea formulă:
unde:

c

=

concentraţia de vitamina E (ca DL--tocoferol acetat) al soluţiei de eşantion (punctul 5.4) în g/ml

V1

=

volumul soluţiei de eşantion (punctul 5.4), în ml

V2

=

volumul de alicotă prelevat la punctul 5.4, în ml

m

=

greutatea porţiunii de testat, în g

7.Observaţii

7.1.

Pentru eşantioanele cu concentraţii mici de vitamină E poate fi utilă combinarea extractelor cu eter de petrol provenite din două operaţii de saponificare (cantitate cântărită: 25 g) într-o soluţie de eşantion pentru determinare prin HPLC.

7.2.

Eşantionul prelevat pentru analiză nu conţine mai mult de 2 g de grăsime.

7.3.

Dacă nu are loc separaţia fazelor, se adaugă cca 10 ml de etanol (punctul 3.1) pentru a fragmenta emulsia.

7.4.

Odată efectuată măsurătoarea spectrofotometrică a soluţiei de DL--tocoferol acetat sau de DL--tocoferol, conform punctului 5.6.1.3 sau 5.6.2.3, se adaugă cca 10 mg de BHT (punctul 3.12) la soluţie (punctul 3.10.1 sau 3.10.2) şi se conservă soluţia la frigider (durata maximă de stocare patru săptămâni).

7.5.

BHT poate fi înlocuit cu hidrochinonă.

7.6.

Utilizându-se o coloană în fază normală este posibilă separarea tocoferolilor , , şi .

7.7.

Soluţia de ascorbat de sodiu poate fi înlocuită cu cca 150 mg de acid ascorbic.

7.8.

Soluţia de sulfură de sodiu poate fi înlocuită cu cca 50 mg de EDTA.

7.9.

Acetatul de vitamina E hidrolizează foarte rapid în condiţii alcaline fiind, prin urmare, foarte sensibil la oxidare, mai ales în prezenţa oligoelementelor, cum ar fi fierul sau cuprul. Determinarea vitaminei E în preamestecuri la niveluri de peste 5 000 mg/kg ar avea drept consecinţă o degradare a vitaminei E. Prin urmare, pentru confirmare se recomandă o metodă HPLC care include o digestie enzimatică a preparatului de vitamina E fără o etapă de saponificare alcalină

8.Repetabilitate.
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări paralele realizate pe acelaşi eşantion nu trebuie să depăşească 15 % din rezultatul superior.
9.Rezultatele unui studiu colaborativ (4)
(4)Studiu realizat de Grupul de lucru pentru furaje Verband Deutscher Landwirtschaftlicher Untersuchungs- und Forschungsanstalten (VDLUFA).

Preamestec

Furaje de tip preamestec

Concentrate minerale

Furaje proteice

Hrană pentru purcei

L

12

12

12

12

12

n

48

48

48

48

48

medie (mg/kg)

17 380

1 187

926

315

61,3

sr (mg/kg)

384

45,3

25,2

13,0

2,3

r (mg/kg)

1 075

126,8

70,6

36,4

6,4

CVr [%]

2,2

3,8

2,7

4,1

3,8

sR (mg/kg)

830

65,0

55,5

18,9

7,8

R (mg/kg)

2 324

182,0

155,4

52,9

21,8

CVR [%]

4,8

5,5

6,0

6,0

12,7

L: număr de laboratoare

n: număr de valori unice

sr: deviaţia standard a repetabilităţii

sR: deviaţia standard a reproductibilităţii

r: repetabilitate

R: reproductibilitate

CVr: coeficientul de variaţie a repetabilităţii

CVR: coeficientul de variaţie a reproductibilităţii

Figura 2 Aparat de extracţie (punctul 4.8)
(C)DETERMINAREA OLIGOELEMENTELOR FIER, CUPRU, MANGAN ŞI ZINC
Conţinutul de fier, cupru, mangan şi zinc se determină prin:
- Metoda de analiză prevăzută de EN 15510 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea calciului, sodiului, fosforului, magneziului, potasiului, fierului, zincului, cuprului, manganului, cobaltului, molibdenului şi plumbului prin ICP-AES; sau
- Metoda de analiză prevăzută de EN 15621 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea calciului, sodiului, fosforului, magneziului, potasiului, sulfului, fierului, zincului, cuprului, manganului şi cobaltului după dizolvarea sub presiune prin ICP-AES; sau
- Metoda de analiză prevăzută de EN 17053 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea oligoelementelor, a metalelor grele şi a altor elemente din furaje prin ICP-MS (multimetodă); sau
- Metoda de analiză prevăzută de EN ISO 6869 Hrană pentru animale: Determinarea conţinutului de calciu, cupru, fier, magneziu, mangan, potasiu, sodiu şi zinc. Metoda care utilizează spectrometria de absorbţie atomică; sau
- Metoda spectrometriei de absorbţie atomică cu flacără (FAAS), descrisă la punctele 1-8 de mai jos.
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Metoda permite determinarea oligoelementelor fier, cupru, mangan şi zinc din furaje (5). Limitele de cuantificare sunt:
(5)Această metodă a fost validată prin intermediul unui test colaborativ pentru diferite matrice de furaje. Pentru informaţii suplimentare, consultaţi https://ec.europa.eu/jrc/en/eurl/feed-additives/authorisation.
- fier (Fe): 20 mg/kg
- cupru (Cu): 10 mg/kg
- mangan (Mn): 20 mg/kg
- zinc (Zn): 20 mg/kg
2.Principiu
Eşantionul este pus în soluţie de acid clorhidric după distrugerea materiei organice, dacă aceasta este prezentă. Se determină elementele fier, cupru, mangan şi zinc, după o diluare corespunzătoare, cu ajutorul spectrometriei de absorbţie atomică.
3.Reactivi
Comentarii introductive
Pentru prepararea reactivilor şi a soluţiilor analitice se foloseşte apă fără cationii care urmează să fie determinaţi, obţinută fie prin distilarea dublă a apei într-un distilator din sticlă borosilicat sau din cuarţ, fie prin dublu tratament cu răşină schimbătoare de ioni.
Reactivii trebuie să fie cel puţin de calitate analitică. Absenţa elementului care urmează să fie determinat trebuie verificată într-un experiment martor. Dacă este necesar, reactivii trebuie să fie purificaţi în continuare.
În locul soluţiilor etalon descrise mai jos pot fi folosite soluţii etalon din comerţ, cu condiţia ca ele să fie garantate şi să fi fost verificate înainte de utilizare.

3.1.

Acid clorhidric. (d:1,19 g/ml).

3.2.

Acid clorhidric. (6 mol/litru).

3.3.

Acid clorhidric. (0,5 mol/litru).

3.4.

Acid fluorhidric 38-40 % (v/v) cu un conţinut de fier (Fe) de mai puţin de 1 mg/litru şi un reziduu după evaporare de mai puţin de 10 mg (ca sulfat)/litru.

3.5.

Acid sulfuric. (d: 1,84 g/ml).

3.6.

Peroxid de hidrogen. [circa 100 volume de oxigen (punctul 30 % în greutate)].

3.7.

Soluţie etalon de fier (1 000 g Fe/ml) preparată conform indicaţiilor de mai jos sau o soluţie echivalentă din comerţ: se dizolvă 1 g de sârmă de fier în 200 ml de acid clorhidric 6 mol/litru (punctul 3.2), se adaugă 16 ml de peroxid de hidrogen (punctul 3.6) şi se completează până la un litru cu apă.

3.7.1.

Soluţie etalon de lucru de fier (100 g Fe/ml) preparată diluând o parte din soluţia etalon (punctul 3.7) cu 9 părţi de apă.

3.8.

Soluţie etalon de cupru (1 000 g Cu/ml) preparată conform indicaţiilor de mai jos sau o soluţie echivalentă din comerţ:

- se dizolvă 1 g de praf de cupru în 25 ml de acid clorhidric 6 mol/litru (punctul 3.2), se adaugă 5 ml de peroxid de hidrogen (punctul 3.6) şi se completează până la un litru cu apă.

3.8.1.

Soluţie etalon de cupru de lucru (10 g Cu/ml) preparată diluând o parte din soluţia standard (punctul 3.8) cu 9 părţi de apă şi apoi diluând o parte din soluţia rezultată cu 9 părţi de apă.

3.9.

Soluţie etalon de mangan (1 000 g Mn/ml) preparată conform indicaţiilor de mai jos sau o soluţie echivalentă din comerţ:

- se dizolvă 1 g de praf de mangan în 25 ml de acid clorhidric 6 mol/litru (punctul 3.2) şi se completează până la un litru cu apă.

3.9.1.

Soluţie etalon de lucru de mangan (10 g Mn/ml) preparată diluând o parte din soluţia etalon (punctul 3.9) cu 9 părţi de apă şi apoi diluând o parte din soluţia rezultată cu 9 părţi de apă.

3.10.

Soluţie etalon de zinc (1 000 g Zn/ml) preparată conform indicaţiilor de mai jos sau o soluţie echivalentă din comerţ:

- se dizolvă 1 g de zinc sub formă de benzi sau folii în 25 ml de acid clorhidric 6 mol/litru (punctul 3.2) şi se completează până la un litru cu apă.

3.10.1.

Soluţie etalon de lucru de zinc (10 g Zn/ml) preparată diluând o parte din soluţia etalon (punctul 3.10) cu 9 părţi de apă şi apoi diluând o parte din soluţia rezultată cu 9 părţi de apă.

3.11.

Soluţie de clorură de lantan: se dizolvă 12 g de oxid de lantan în 150 ml de apă, se adaugă 100 ml de acid clorhidric 6 mol/litru (punctul 3.2) şi se completează până la un litru cu apă.

4.Aparatură

4.1.

Cuptor cu muflă cu reglare de temperatură şi, preferabil, cu dispozitiv de înregistrare.

4.2.

Sticlăria trebuie să fie de tip borosilicat rezistent şi se recomandă folosirea aparaturii rezervate exclusiv pentru determinarea oligoelementelor.

4.3.

Spectrofotometru de absorbţie atomică care îndeplineşte cerinţele metodei cu privire la sensibilitatea şi precizia în intervalul necesar.

5.Procedura (6)
(6)Se pot folosi alte metode de dizolvare, cu condiţia ca acestea să fi fost demonstrate şi să aibă rezultate similare (cum ar fi dizolvarea sub presiune cu microunde).
5.1.Eşantioane care conţin materie organică
5.1.1.Arderea şi prepararea soluţiei pentru analiză (7)
(7)Furajul verde (proaspăt sau uscat) poate conţine cantităţi mari de silice vegetală, care ar putea reţine oligoelemente şi trebuie eliminată. Prin urmare, pentru eşantioane din aceste furaje trebuie urmată următoarea procedură modificată. Se efectuează operaţia 5.1.1.1 până la filtrare. Hârtia de filtru care conţine reziduul insolubil se spală de două ori cu apă clocotită şi se aşază într-un creuzet de cuarţ sau platină.
Se încălzeşte în cuptorul cu muflă (punctul 4.1) la o temperatură sub 550 °C, până când materialul carbonic a dispărut complet. Se lasă să se răcească, se adaugă câteva picături de apă urmate de 10-15 ml de acid fluorhidric (punctul 3.4) şi se evaporează până la uscare la circa 150 °C. Dacă reziduul încă mai conţine silice, aceasta se dizolvă din nou în câţiva mililitri de acid fluorhidric (punctul 3.4) şi se evaporă până la uscare. Se adaugă cinci picături de acid sulfuric (punctul 3.5) şi se încălzeşte până când emisiile de fum alb încetează. După ce se adaugă 5 ml de acid clorhidric 6 mol/litru (punctul 3.2) şi circa 30 ml de apă, se încălzeşte, se filtrează soluţia într-un balon gradat de 250 ml şi se completează până la semn cu apă (concentraţie a HCl circa 0,5 mol/l). Se trece apoi la determinarea de la punctul 5.1.2.

5.1.1.1.

Se introduc 5-10 g de eşantion cântărit cu o abatere de 0,2 mg într-un creuzet de cuarţ sau platină [a se vedea nota (b)], se usucă într-un cuptor la 105 °C şi se introduce creuzetul în cuptorul cu muflă neîncălzit (punctul 4.1). Se închide cuptorul [a se vedea nota (c)] şi se măreşte treptat temperatura până la 450-475 °C, timp de circa 90 de minute. Se menţine temperatura timp de 4-16 ore (de exemplu, peste noapte) pentru a îndepărta materialul carbonic şi apoi se deschide cuptorul şi se lasă să se răcească [a se vedea nota (d)].

Se umezeşte cenuşa cu apă şi se transferă substanţa obţinută într-un pahar de laborator de 250 ml. Se spală creuzetul cu o cantitate totală de circa 5 ml de acid clorhidric (punctul 3.1) şi se adaugă acesta din urmă încet şi cu atenţie în paharul de laborator (poate apărea o reacţie puternică din cauza formării de CO2). Se adaugă acid clorhidric (punctul 3.1), picătură cu picătură, agitându-se, până când efervescenţa încetează. Se evaporă până la uscare, agitându-se din când în când cu o baghetă de sticlă.

Se adaugă apoi 15 ml de acid clorhidric 6 mol/litru (punctul 3.2) la reziduu, apoi circa 120 ml de apă. Se amestecă cu bagheta de sticlă, care se lasă în paharul de laborator, şi se acoperă paharul cu o sticlă de ceas. Se aduce încet la fierbere şi se menţine la punctul de fierbere până când cenuşa se dizolvă complet. Se filtrează cu hârtie de filtru lipsită de cenuşă şi se colectează filtratul într-un balon gradat de 250 ml. Se spală paharul de laborator şi se filtrează cu 5 ml de acid clorhidric 6 mol/litru fierbinte (punctul 3.2) şi de două ori cu apă fiartă. Se umple balonul gradat cu apă până la semn (concentraţia de HCl: circa 0,5 mol/litru).

5.1.1.2.

Dacă reziduul din filtru este negru (cărbune), se reintroduce în cuptor şi se calcinează din nou la 450-475 °C. Calcinarea, care necesită numai câteva ore (între trei şi cinci ore), este completă când cenuşa este albă sau aproape albă. Se dizolvă reziduul cu aproximativ 2 ml de acid clorhidric (punctul 3.1), se evaporă până la uscare şi se adaugă 5 ml de acid clorhidric 6 mol/litru (punctul 3.2). Se încălzeşte, se filtrează soluţia în balonul gradat şi se umple cu apă până la semn (concentraţia HCl: circa 0,5 mol/litru).

Note:

(a) Este important ca atunci când se măsoară oligoelementele să se ţină cont de riscul de contaminare, în special cu zinc, cupru şi fier. Din acest motiv, echipamentul folosit în cursul preparării eşantioanelor trebuie să nu conţină aceste metale.

Pentru reducerea riscului general de contaminare, se lucrează într-o atmosferă fără praf, folosind un echipament curăţat cu mare atenţie şi o sticlărie spălată cu grijă. Determinarea zincului este în mod special sensibilă la multe tipuri de contaminare, de exemplu prin intermediul sticlăriei, al reactivilor, al prafului etc.

(b) Greutatea eşantionului care urmează să fie calcinat rezultă din cantitatea aproximativă de oligoelemente din furaje în raport cu sensibilitatea spectrofotometrului folosit. Pentru anumite tipuri de furaje, sărace în oligoelemente, poate fi necesar să se înceapă cu un eşantion de 10-20 g şi să se completeze soluţia finală numai până la 100 ml.

(c) Arderea trebuie efectuată într-un cuptor închis fără injectare de aer sau de oxigen.

(d) Temperatura indicată de pirometru nu trebuie să depăşească 475 °C.

5.1.2.Determinarea spectrofotometrică
5.1.2.1.Pregătirea soluţiilor de calibrare
Pentru fiecare dintre elementele care urmează să fie determinate se prepară din soluţiile etalon de lucru de la punctele 3.7.1, 3.8.1, 3.9.1 şi 3.10.1 o gamă de soluţii de calibrare, fiecare soluţie de calibrare având o concentraţie de HCl de aproximativ 0,5 mol/litru şi (în cazul fierului, manganului şi zincului) o concentraţie de clorură de lantan echivalentă cu 0,1 % La (g/v).
Concentraţiile de oligoelemente selectate trebuie să se situeze în intervalul sensibilităţii spectrofotometrului utilizat. Tabelele prezentate în continuare indică, de exemplu, compoziţiile unor seturi tipice de soluţii de calibrare; totuşi, în funcţie de tipul şi sensibilitatea spectrofotometrului folosit, poate fi necesar să se selecteze alte concentraţii.
Fier

g Fe/ml

0

0,5

1

2

3

4

5

ml de soluţie etalon de lucru (punctul 3.7.1) (1 ml = 100 g Fe)

0

0,5

1

2

3

4

5

ml HCl (punctul 3.2)

7

7

7

7

7

7

7

+ 10 ml de soluţie de clorură de lantan (punctul 3.11) şi se completează până la 100 ml cu apă

Cupru

g Cu/ml

0

0,1

0,2

0,4

0,6

0,8

1,0

ml de soluţie etalon de lucru (punctul 3.8.1) (1 ml = 10 g Cu)

0

1

2

4

6

8

10

ml HCl (punctul 3.2)

8

8

8

8

8

8

8

Mangan

g Mn/ml

0

0,1

0,2

0,4

0,6

0,8

1,0

ml de soluţie etalon de lucru (punctul 3.9.1) (1 ml = 10 g Mn)

0

1

2

4

6

8

10

ml HCl (punctul 3.2)

7

7

7

7

7

7

7

+ 10 ml de soluţie de clorură de lantan (punctul 3.11) şi se completează până la 100 ml cu apă

Zinc

g Zn/ml

0

0,05

0,1

0,2

0,4

0,6

0,8

ml de soluţie etalon de lucru (punctul 3.10.1) (1 ml = 10 g Zn)

0

0,5

1

2

4

6

8

ml HCl (punctul 3.2)

7

7

7

7

7

7

7

+ 10 ml de soluţie de clorură de lantan (punctul 3.11) şi se completează până la 100 ml cu apă

5.1.2.2.Prepararea soluţiei pentru analiză
Pentru determinarea cuprului, soluţia preparată la punctul 5.1.1 poate fi, în mod normal, folosită direct. Dacă este necesar să se obţină o concentraţie situată în intervalul soluţiilor de calibrare, o parte alicotă poate fi pipetată într-un balon gradat de 100 ml şi completată până la semn cu acid clorhidric 0,5 mol/litru (punctul 3.3).
Pentru determinarea fierului, manganului şi zincului, se pipetează o parte alicotă din soluţia preparată la punctul 5.1.1 într-un balon gradat de 100 ml, se adaugă 10 ml de soluţie de clorură de lantan (punctul 3.11) şi se completează până la semn cu acid clorhidric 0,5 mol/litru (punctul 3.3) (a se vedea şi punctul 8, «Observaţii»).
5.1.2.3.Experiment martor
Experimentul martor trebuie să includă toate etapele prevăzute în procedură, cu excepţia faptului că materialul de eşantion este omis. Soluţia de calibrare «0» nu trebuie să fie folosită ca martor.
5.1.2.4.Măsurarea absorbţiei atomice
Se măsoară absorbţia atomică a soluţiilor de calibrare şi a soluţiei care urmează să fie analizată folosind o flacără aer-acetilenă oxidantă, la următoarele lungimi de undă:
Fe: 248,3 nm
Cu: 324,8 nm
Mn: 279,5 nm
Zn: 213,8 nm
Fiecare măsurătoare se realizează de patru ori.
5.2.Furaje minerale
Dacă eşantionul nu conţine materie organică, calcinarea prealabilă nu este necesară. Se procedează conform descrierii de la punctul 5.1.1.1, începând de la al doilea paragraf. Evaporarea cu acid fluorhidric poate fi omisă.
6.Calculul rezultatelor
Folosind o curbă de calibrare, se calculează concentraţia de oligoelemente în soluţia care urmează să fie analizată şi se exprimă rezultatul în mg de oligoelemente per kg de eşantion (ppm).
7.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări paralele efectuate pe acelaşi eşantion de către acelaşi laborant nu depăşeşte:
- 5 mg/kg, în valoare absolută, pentru conţinutul de oligoelement în cauză până la 50 mg/kg;
- 10 % din valoarea superioară, pentru un conţinut de oligoelement în cauză de la 50 până la 100 mg/kg;
- 10 mg/kg, în valoare absolută, pentru un conţinut de oligoelement în cauză de la 100 până la 200 mg/kg;
- 5 % din valoarea superioară, pentru un conţinut de oligoelement în cauză mai mare de 200 mg/kg.
8.Observaţie
Prezenţa de cantităţi mari de fosfaţi ar putea interfera cu determinarea fierului, manganului şi zincului. Astfel de interferenţe trebuie să fie corectate adăugând soluţie de clorură de lantan (punctul 3.11). Dacă, însă, în eşantion, raportul de greutate Ca + Mg/P este > 2, adăugarea soluţiei de clorură de lantan (punctul 3.11) la soluţia de analizat şi la soluţiile de calibrare poate fi omisă.
(D)DETERMINAREA CONŢINUTULUI DE HALOFUGINONĂ
DL-trans-7-brom-6-clor-3-[3-(3-hidroxi-2-piperidil)acetonil]-chinazolin-4-(3H)-onă hidrobromid
Conţinutul de halofuginonă se determină prin:
- Metoda de analiză prevăzută de EN 17299 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - screeningul şi determinarea coccidiostaticelor autorizate la nivel de aditiv şi de contaminare încrucişată de 1 % şi 3 %, precum şi a coccidiostaticelor neînregistrate şi a unui antibiotic la niveluri de subaditiv, în furajele combinate cu cromatografie lichidă de înaltă performanţă - detecţie spectrometrică de masă în tandem (LC-MS/MS); sau
- prin cromatografie lichidă de înaltă performanţă (HPLC) cu fază inversată, utilizând un detector UV, astfel cum se descrie la punctele 1-8 de mai jos.
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Metoda permite determinarea conţinutului de halofuginonă din furaje. Limita de cuantificare este de 1 mg/kg
2.Principiu
După tratarea cu apă fierbinte, halofuginona se extrage ca bază liberă în acetat de etil şi ulterior se separă ca clorhidrat, într-o soluţie apoasă de acid. Extractul se purifică prin cromatografie prin schimb ionic. Conţinutul de halofuginonă se determină prin cromatografie lichidă de înaltă performanţă cu fază inversată (RP-HPLC), prin utilizarea unui detector de raze UV.
3.Reactivi

3.1.

Acetonitril, de calitate HPLC

3.2.

Răşină Amberlit XAD-2

3.3.

Acetat de amoniu

3.4.

Acetat de etil

3.5.

Acid acetic glacial

3.6.

Substanţa etalon halofuginonă (DL-trans-7-brom-6-clor-3-[3-(3-hidroxi-2-piperidil)acetonil]chinazolin-4-(3H)-onă hidrobromid, E 764)

3.6.1.

Soluţie etalon stoc de halofuginonă, 100 g/ml

Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 50 mg de halofuginonă (punctul 3.6) într-un balon gradat de 500 ml, apoi se dizolvă în soluţie tampon de acetat de amoniu (punctul 3.18), se completează până la semn cu soluţie tampon şi se amestecă. Această soluţie este stabilă timp de trei săptămâni, la 5 °C, dacă este depozitată la întuneric.

3.6.2.

Soluţii de calibrare

Se transferă 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 şi 6,0 ml de soluţie etalon stoc (punctul 3.6.1) într-o serie de baloane gradate de 100 ml. Se completează până la semn cu fază mobilă (punctul 3.21) şi se amestecă. Soluţiile au concentraţii de 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 şi 6,0 g/ml de halofuginonă. Soluţiile se prepară imediat înainte de a fi utilizate.

3.7.

Acid clorhidric (20 aproximativ 1,16 g/ml).

3.8.

Metanol

3.9.

Nitrat de argint

3.10.

Ascorbat de sodiu

3.11.

Carbonat de sodiu

3.12.

Clorură de sodiu

3.13.

EDTA (acid etilendiaminotetraacetic, sare disodică)

3.14.

Apă, de calitate HPLC

3.15.

Soluţie de carbonat de sodiu, c = 10 g/100 ml

3.16.

Soluţie de carbonat de sodiu saturată cu clorură de sodiu, c = 5 g/100 ml

Se dizolvă 50 g de carbonat de sodiu (punctul 3.11) în apă, se diluează până la 1 litru şi se adaugă clorură de sodiu (punctul 3.12) până la saturarea soluţiei.

3.17.

Acid clorhidric, aproximativ 0,1 mol/l

Se diluează 10 ml de HCl (punctul 3.7) în apă până la 1 litru.

3.18.

Soluţie tampon de acetat de amoniu, aproximativ 0,25 mol/l

Se dizolvă 19,3 g de acetat de amoniu (punctul 3.3) şi 30 ml de acid acetic (punctul 3.5) în apă (punctul 3.14) şi se diluează până la 1 litru.

3.19.

Prepararea răşinii de Amberlit XAD-2

Se spală cu apă o cantitate corespunzătoare de Amberlit (punctul 3.2), până la îndepărtarea tuturor ionilor de clor, după cum indică testul cu nitrat de argint (punctul 3.20) efectuat pe faza apoasă eliminată. Apoi se spală răşina cu 50 ml de metanol (punctul 3.8), se elimină metanolul şi se depozitează răşina în metanol proaspăt.

3.20.

Soluţie de nitrat de argint, aproximativ 0,1 mol/l

Se dizolvă 0,17 g de nitrat de argint (punctul 3.9) în 10 ml de apă.

3.21.

Fază mobilă HPLC

Se amestecă 500 ml de acetonitril (punctul 3.1) cu 300 ml soluţie tampon de acetat de amoniu (punctul 3.18) şi 1 200 ml de apă (punctul 3.14). Se aduce pH-ul la valoarea 4,3 folosind acid acetic (punctul 3.5). Se trece printr-un filtru de 0,22 m (punctul 4.8) şi se degazează soluţia (de exemplu, prin ultrasonare timp de 10 minute). Această soluţie este stabilă timp de o lună dacă este depozitată într-un recipient închis, la întuneric.

4.Aparatură

4.1.

Baie cu ultrasunete

4.2.

Evaporator rotativ cu generare de film

4.3.

Centrifugă

4.4.

Echipament HPLC cu detector de raze UV cu lungimi de undă variabile sau detector cu grup de diode

4.4.1.

Coloană pentru cromatografie lichidă, 300 mm × 4 mm, C18, particule de 10 m sau o coloană echivalentă

4.5.

Coloană de sticlă (300 mm × 10 mm) prevăzută cu filtru de sticlă sinterizată şi cu robinet de închidere

4.6.

Filtre din fibră de sticlă, cu diametru de 150 mm

4.7.

Filtre cu membrană, 0,45 m

4.8.

Filtre cu membrană, 0,22 m

5.Procedura
Notă Halofuginona ca bază liberă este instabilă în soluţii alcaline sau de acetat de etil. Ea nu trebuie să rămână în acetat de etil mai mult de 30 de minute.
5.1.Generalităţi

5.1.1.

Se analizează un furaj martor pentru a verifica absenţa halofuginonei şi a substanţelor interferente.

5.1.2.

Se efectuează un test de recuperare prin analiza furajului martor care a fost îmbogăţit prin adăugarea unei cantităţi de halofuginonă, similară cu cea prezentă în eşantion. Pentru a obţine o concentraţie de 3 mg/kg se adaugă 300 l din soluţia etalon stoc (punctul 3.6.1) la 10 g de furaj martor, se amestecă şi se aşteaptă 10 minute înainte de a se începe etapa de extracţie (punctul 5.2).

Notă: Conform acestei metode, furajul martor este similar, ca tip, cu eşantionul, iar la analiză nu se detectează halofuginonă.

5.2.Extracţie
Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 g, 10 g de eşantion preparat, într-un tub de centrifugă de 200 ml, se adaugă 0,5 g de ascorbat de sodiu (punctul 3.10), 0,5 g de EDTA (punctul 3.13) şi 20 ml de apă, apoi se amestecă. Se plasează tubul într-o baie de apă timp de 5 minute (80 °C). După răcire la temperatura camerei se adaugă 20 ml soluţie de carbonat de sodiu (punctul 3.15) şi se amestecă. Se adaugă imediat 100 ml de acetat de etil (punctul 3.4) şi se agită energic cu mâna timp de 15 secunde. Apoi tubul se aşază într-o baie cu ultrasunete (punctul 4.1) timp de 3 minute şi se slăbeşte dopul. Se centrifughează timp de 2 minute şi se decantează faza de acetat de etil printr-un filtru de fibră de sticlă (punctul 4.6), într-o pâlnie de separare de 500 ml. Se repetă extracţia eşantionului cu o a doua cantitate de 100 ml acetat de etil. Se spală extractele combinate timp de un minut cu 50 ml de soluţie de carbonat de sodiu saturată cu clorură de sodiu (punctul 3.16) şi se îndepărtează stratul apos.
Se extrage stratul organic timp de 1 minut cu 50 ml de acid clorhidric (punctul 3.17). Se trece stratul inferior de acid printr-o pâlnie de separare de 250 ml. Se extrage din nou stratul organic timp de 1,5 minute, cu o altă cantitate de 50 ml acid clorhidric, apoi se combină cu primul extract. Se spală extractele de acid combinate prin agitare circulară timp de aproximativ 10 secunde cu 10 ml de acetat de etil (punctul 3.4).
Se transferă cantitativ stratul apos într-un balon cu fund rotund de 250 ml şi se îndepărtează faza organică. Se evaporă din soluţia acidă tot acetatul de etil rămas utilizând un evaporator rotativ cu generare de film (punctul 4.2). Temperatura băii de apă nu trebuie să depăşească 40 °C. Sub vid la o presiune de aproximativ 25 mbar întreaga cantitate de acetat de etil rezidual se îndepărtează în 5 minute la 38 °C.
5.3.Curăţare
5.3.1.Pregătirea coloanei de Amberlit
Pentru fiecare extract de eşantion se pregăteşte câte o coloană XAD-2. Se transferă 10 g de Amberlit preparat (punctul 3.19) într-o coloană de sticlă (punctul 4.5) cu metanol (punctul 3.8). Se adaugă un dop mic de vată de sticlă deasupra patului de răşină. Se scurge metanolul din coloană şi se spală răşina cu 100 ml de apă, oprind fluxul pe măsură ce lichidul ajunge la partea superioară a patului de răşină. Se lasă coloana să se echilibreze timp de 10 minute înainte de utilizare. Niciodată nu se lasă coloana să se usuce.
5.3.2.Curăţarea eşantionului
Se transferă cantitativ extractul (punctul 5.2) în partea superioară a coloanei de Amberlit preparată (punctul 5.3.1) şi se eluează, îndepărtând apoi eluatul. Rata de eluare nu trebuie să depăşească 20 ml/min. Se clăteşte balonul cu fund rotund cu 20 ml de acid clorhidric (punctul 3.17), apoi acesta se foloseşte pentru spălarea coloanei de răşină. Se suflă orice urmă de soluţie acidă rămasă cu ajutorul unui curent de aer. Se îndepărtează lichidele de spălare. Se adaugă 100 ml de metanol (punctul 3.8) în coloană şi se eluează 5-10 ml; se colectează eluatul într-un balon cu fundul rotund de 250 ml. Se lasă metanolul rămas timp de 10 minute să se echilibreze cu răşina şi se continuă eluarea la o rată care să nu depăşească 20 ml/min, colectând eluatul în acelaşi balon cu fundul rotund. Se evaporă metanolul pe evaporatorul rotativ cu generare de film (punctul 4.2); temperatura băii de apă trebuie să nu depăşească 40 °C. Se transferă cantitativ reziduul într-un balon gradat de 10 ml, utilizând faza mobilă (punctul 3.21). Se completează până la semn cu ajutorul fazei mobile şi se amestecă. Se filtrează o parte alicotă printr-un filtru cu membrană (punctul 4.7). Această soluţie se păstrează pentru determinarea prin HPLC (punctul 5.4).
5.4.Determinarea prin HPLC
5.4.1.Parametri
Următoarele condiţii sunt propuse cu titlu orientativ; se pot aplica şi alte condiţii, dacă acestea duc la rezultate echivalente.
Coloană pentru cromatografie lichidă (punctul 4.4.1)
Fază mobilă HPLC (punctul 3.21)
Debit: 1,5-2 ml/min.
Lungimea undei de detecţie: 243 nm
Volum de injecţie: 40-100 l.
Stabilitatea sistemului cromatografic se verifică prin injectarea de mai multe ori a soluţiei de calibrare (punctul 3.6.2) conţinând 3,0 g/ml, până la obţinerea de înălţimi (sau de arii) ale vârfurilor şi de timpi de retenţie constanţi.
5.4.2.Curba de calibrare
Se injectează fiecare soluţie de calibrare (punctul 3.6.2) de mai multe ori şi se determină înălţimile (ariile) vârfurilor pentru fiecare concentraţie. Se trasează o curbă de calibrare utilizând înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor soluţiilor de calibrare ca ordonate şi concentraţiile corespunzătoare, în g/ml, ca abscise.
5.4.3.Soluţia de eşantion
Se injectează extractul de eşantion (punctul 5.3.2) de mai multe ori, utilizând acelaşi volum ca cel utilizat pentru soluţiile de calibrare şi se determină înălţimea (aria) medie a vârfurilor pentru vârfurile de halofuginonă.
6.Calculul rezultatelor
Concentraţia soluţiei de eşantion în g/ml se determină plecând de la înălţimea (aria) medie a vârfurilor de halofuginonă a soluţiei de eşantion prin referire la curba de calibrare (punctul 5.4.2).
Conţinutul de halofuginonă w (mg/kg) al eşantionului este dat de formula următoare:
unde:

c

:

concentraţia de halofuginonă din soluţia de eşantion, în g/ml,

m

:

greutatea porţiunii de testat, în grame.

7.Validarea rezultatelor
7.1.Identitate
Identitatea analitului poate fi confirmată prin co-cromatografie sau prin utilizarea unui detector cu grup de diode care permite compararea spectrelor extractului de eşantion şi ale soluţiei de calibrare (punctul 3.6.2), care conţine 6,0 g/ml.
7.1.1.Co-cromatografie
Un extract de eşantion este îmbogăţit prin adăugarea unei cantităţi corespunzătoare de soluţie de calibrare (punctul 3.6.2). Cantitatea de halofuginonă adăugată trebuie să fie similară cu cantitatea estimată de halofuginonă găsită în extractul de eşantion.
După luarea în considerare atât a cantităţii adăugate, cât şi a diluţiei extractului, creşte numai înălţimea vârfului de halofuginonă. Lărgimea vârfului, la jumătate din înălţimea sa maximă, trebuie să se încadreze într-o variaţie de ± 10 % din lărgimea originală.
7.1.2.Detecţie cu grup de diode
Rezultatele se evaluează în funcţie de următoarele criterii:
a)lungimea de undă a absorbţiei maxime a spectrelor eşantionului şi etalonului, înregistrată la vârful cel mai înalt al cromatogramei, trebuie să fie aceeaşi, într-o marjă determinată de puterea de rezoluţie a sistemului de detecţie. Pentru detecţia cu grup de diode, aceasta este de obicei de ± 2 nm;
b)între 225 şi 300 nm, spectrele eşantionului şi ale etalonului, înregistrate la vârful cel mai înalt al cromatogramei, nu trebuie să fie diferite pentru acele părţi ale spectrului situate între 10 şi 100 % din absorbanţa relativă. Acest criteriu este îndeplinit atunci când sunt prezente aceleaşi maxime şi când deviaţia dintre două spectre nu depăşeşte în niciun punct observat 15 % din absorbanţa analitului etalon;
c)între 225 şi 300 nm, spectrele curbei ascendente, ale punctului maxim şi ale curbei descendente ale vârfului produs de extractul de eşantion nu trebuie să fie diferite unele de altele pentru acele părţi ale spectrului situate între 10 şi 100 % din absorbanţa relativă. Acest criteriu este îndeplinit atunci când sunt prezente aceleaşi maxime şi când deviaţia dintre spectre nu depăşeşte în niciun punct observat 15 % din absorbanţa spectrului punctului maxim.
Dacă unul din aceste criterii nu este îndeplinit, prezenţa analitului nu a fost confirmată.
7.2.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări paralele efectuate pe acelaşi eşantion nu trebuie să depăşească 0,5 mg/kg pentru un conţinut de halofugiononă de până la 3 mg/kg
7.3.Recuperare
Pentru eşantionul martor îmbogăţit se realizează o recuperare de minimum 80 %.
8.Rezultatele unui studiu colaborativ
A fost organizat un studiu colaborativ (8) în cadrul căruia trei eşantioane au fost analizate de opt laboratoare.
(8)The Analyst 108, 1983, pp. 1252-1256
Rezultate

Eşantionul A (martor)

La primire

Eşantionul B (făină)

Eşantionul C (pelete)

La primire

După două luni

La primire

După două luni

Medie (mg/kg)

ND

2,80

2,42

2,89

2,45

SR [mg/kg]

-

0,45

0,43

0,40

0,42

CVR [%]

-

16

18

14

17

Rec. [%]

86

74

88

75

ND= nedetectat

SR= deviaţia standard a reproductibilităţii

CVR= coeficientul de variaţie a reproductibilităţii (%)

Rec.= recuperare %

(E)DETERMINAREA ROBENIDINEI
Clorhidrat de 1,3-bis[(4-clorbenziliden)amino]guanidină
Conţinutul de robenidină se determină prin
- Metoda de analiză prevăzută de EN 17299 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - screeningul şi determinarea coccidiostaticelor autorizate la nivel de aditiv şi de contaminare încrucişată de 1 % şi 3 %, precum şi a coccidiostaticelor neînregistrate şi a unui antibiotic la niveluri de subaditiv, în furajele combinate cu cromatografie lichidă de înaltă performanţă - detecţie spectrometrică de masă în tandem (LC-MS/MS), sau
- prin cromatografie lichidă de înaltă performanţă (HPLC) cu fază inversată, utilizând un detector UV, astfel cum se descrie la punctele 1-8 de mai jos.
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Metoda permite determinarea conţinutului de robenidină din furaje. Limita de cuantificare este de 5 mg/kg
2.Principiu
Eşantionul se extrage cu metanol acidifiat. Extractul se usucă şi o parte alicotă se curăţă într-o coloană de oxid de aluminiu. Robenidina se eluează din coloană cu metanol, se concentrează şi se completează până la un volum adecvat cu fază mobilă. Conţinutul de robenidină se determină prin cromatografie lichidă de înaltă performanţă cu fază inversată (RP-HPLC), utilizând un detector de radiaţii UV.
3.Reactivi

3.1.

Metanol

3.2.

Metanol acidifiat

Se transferă 4,0 ml de acid clorhidric (20 = 1,18 g/ml) într-un balon gradat de 500 ml, se completează până la semn cu metanol (punctul 3.1) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare.

3.3.

Acetonitril, de calitate HPLC

3.4.

Sită moleculară

Tip 3A, 8-12 noduri ale sitei (noduri de 1,6-2,5 mm, aluminosilicat cristalin, diametrul porilor 0,3 mm).

3.5.

Oxid de aluminiu, activitate acidă grad I pentru cromatografia pe coloană

Se transferă 100 g de oxid de aluminiu într-un recipient adecvat şi se adaugă 2,0 ml de apă. Se închide şi se agită timp de aproximativ 20 de minute. Se păstrează într-un recipient bine închis.

3.6.

Soluţie de fosfat diacid de potasiu, c = 0,025 mol/l

Se dizolvă 3,40 g de fosfat diacid de potasiu în apă (de calitate HPLC), într-un balon gradat de 1 000 ml, se completează până la semn şi se amestecă.

3.7.

Soluţie de fosfat acid disodic, c = 0,025 mol/l

Se dizolvă 3,55 g de fosfat acid disodic anhidru (sau 4,45 g de dihidrat sau 8,95 g de dodecahidrat) în apă (de calitate HPLC), într-un balon gradat de 1 litru, se completează până la semn şi se amestecă.

3.8.

Fază mobilă HPLC

Se amestecă următorii reactivi:

650 ml de acetonitril (punctul 3.3),

250 ml apă (de calitate HPLC),

50 ml soluţie de fosfat diacid de potasiu (punctul 3.6),

50 ml soluţie de fosfat acid disodic (punctul 3.7).

Se trece printr-un filtru de 0,22 m (punctul 4.6) şi se degazează soluţia (de exemplu, prin ultrasonare timp de 10 minute).

3.9.

Substanţa etalon

Robenidină pură: Clorhidrat de 1,3-bis[(4-clorbenziliden)amino]guanidină.

3.9.1.

Soluţia etalon stoc de robenidină: 300 g/ml

Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 30 mg de substanţă etalon de robenidină (punctul 3.9). Se dizolvă în metanol acidifiat (punctul 3.2) într-un balon gradat de 100 ml, se completează până la semn cu acelaşi solvent şi se amestecă. Se împachetează balonul în folie de aluminiu şi se păstrează la întuneric.

3.9.2.

Soluţia etalon intermediară de robenidină: 12 g/ml

Se transferă 10,0 ml din soluţia etalon stoc (punctul 3.9.1) într-un balon gradat de 250 ml, se completează până la semn cu faza mobilă (punctul 3.8) şi se amestecă. Se împachetează balonul în folie de aluminiu şi se păstrează la întuneric.

3.9.3.

Soluţii de calibrare

Se transferă 5,0, 10,0, 15,0, 20,0 şi 25,0 ml de soluţie etalon intermediară (punctul 3.9.2) într-o serie de baloane gradate de 50 ml. Se completează până la semn cu fază mobilă (punctul 3.8) şi se amestecă. Aceste soluţii corespund concentraţiilor de 1,2, 2,4, 3,6, 4,8 şi 6,0 g/ml de robenidină. Soluţiile se prepară imediat înainte de a fi utilizate.

3.10.

Apă, de calitate HPLC

4.Aparatură

4.1.

Coloană de sticlă

Construită din sticlă brună, prevăzută cu robinet de închidere şi un rezervor cu capacitatea de aproximativ 150 ml, diametru interior 10-15 mm, lungime 250 mm.

4.2.

Agitator mecanic sau magnetic

4.3.

Evaporator rotativ cu generare de film

4.4.

Echipament HPLC cu detector de radiaţii UV cu lungimi de undă variabile sau cu detector cu grup de diode care funcţionează în intervalul 250-400 nm

4.4.1.

Coloană pentru cromatografie lichidă: 300 mm x 4 mm, C18, particule de 10 m sau echivalent

4.5.

Hârtie de filtru din fibră de sticlă (Whatman GF/A sau echivalentă)

4.6.

Filtre cu membrană, 0,22 m

4.7.

Filtre cu membrană, 0,45 m

5.Procedura
Notă: Robenidina este sensibilă la lumină. Pentru toate operaţiile se foloseşte sticla brună.
5.1.Generalităţi

5.1.1.

Se analizează un furaj martor pentru a verifica absenţa robenidinei şi a substanţelor interferente.

5.1.2.

Se efectuează un test de recuperare prin analizarea furajului martor (punctul 5.1.1) care a fost îmbogăţit prin adăugarea unei cantităţi de robenidină, similară cu cea prezentă în eşantion. Pentru a obţine o concentraţie de 60 mg/kg, se transferă 3,0 ml din soluţia etalon stoc (punctul 3.9.1) într-un flacon tip Erlenmeyer de 250 ml. Se evaporă soluţia până la cca 0,5 ml într-un curent de azot. Se adaugă 15 g din furajul martor, se amestecă şi se aşteaptă 10 minute înainte de a se începe etapa de extracţie (punctul 5.2).

Notă: Pentru această metodă, furajul martor este similar, ca tip, cu eşantionul, iar la analiză nu se detectează robenidină.

5.2.Extracţie
Se cântăresc cu o abatere de 0,01 g, aproximativ 15 g de eşantion preparat. Se transferă într-un flacon tip Erlenmeyer de 250 ml şi se adaugă 100,0 ml metanol acidifiat (punctul 3.2), se închide şi se agită timp de o oră în agitator (punctul 4.2). Se filtrează soluţia prin hârtie de filtru din fibră de sticlă (punctul 4.5) şi se colectează întregul filtrat într-un flacon tip Erlenmeyer de 150 ml. Se adaugă 7,5 g de sită moleculară (punctul 3.4), se închide şi se agită timp de 5 minute. Se filtrează imediat prin hârtie de filtru din fibră de sticlă. Se conservă această soluţie pentru etapa de purificare (punctul 5.3).
5.3.Purificare
5.3.1.Pregătirea coloanei de oxid de aluminiu
Se introduce un tampon mic de vată de sticlă în capătul inferior al coloanei de sticlă (punctul 4.1) şi se împinge utilizând o baghetă de sticlă. Se cântăresc 11,0 g din oxidul de aluminiu preparat (punctul 3.5) şi se transferă în coloană. Pe parcursul acestei etape este important ca expunerea la aer să fie redusă la minimum. Se loveşte uşor coloana încărcată în partea inferioară pentru a permite stabilizarea oxidului de aluminiu.
5.3.2.Purificarea eşantionului
Se transferă în coloană cu pipeta 5,0 ml de extract de eşantionul preparat în (punctul 5.2). Vârful pipetei se menţine aproape de peretele coloanei şi se permite ca soluţia să fie absorbită de oxidul de aluminiu. Se eluează robenidina din coloană folosind 100 ml metanol (punctul 3.1), cu un debit de 2-3 ml/minut şi se colectează eluatul într-un balon cu fundul rotund de 250 ml. Se evaporă soluţia de metanol până la uscare sub presiune redusă la 40 °C, prin intermediul unui evaporator rotativ cu generare de film (punctul 4.3). Se redizolvă reziduul în 3-4 ml de fază mobilă (punctul 3.8) şi se transferă cantitativ într-un balon gradat de 10 ml. Se clăteşte balonul de mai multe ori cu cantităţi de 1-2 ml de fază mobilă şi se transferă lichidul de clătire în balonul gradat. Se completează până la semn cu acelaşi solvent şi se amestecă. Se filtrează o parte alicotă printr-un filtru cu membrană de 0,45 m (punctul 4.7). Această soluţie se păstrează pentru determinarea prin HPLC (punctul 5.4).
5.4.Determinarea prin HPLC
5.4.1.Parametri
Următoarele condiţii sunt propuse cu titlu orientativ; se pot aplica şi alte condiţii, dacă acestea duc la rezultate echivalente:
Coloană pentru cromatografie lichidă (punctul 4.4.1),
Fază mobilă HPLC (punctul 3.8),
Debit: 1,5-2 ml/min,
Lungimea de undă a detectorului: 317 nm,
Volum de injecţie: 20-50 l.
Stabilitatea sistemului cromatografic se verifică prin injectarea de mai multe ori a soluţiei de calibrare (punctul 3.9.3) conţinând 3,6 g/ml, până la obţinerea de înălţimi ale vârfurilor şi de timpi de retenţie constanţi.
5.4.2.Curba de calibrare
Se injectează fiecare soluţie de calibrare (punctul 3.9.3) de mai multe ori şi se determină înălţimile (ariile) vârfurilor pentru fiecare concentraţie. Se trasează o curbă de calibrare utilizând înălţimile sau ariile medii ale vârfurilor soluţiilor de calibrare ca ordonate şi concentraţiile corespunzătoare, în g/ml, ca abscise.
5.4.3.Soluţia de eşantion
Se injectează de mai multe ori extractul de eşantion (punctul 5.3.2) folosind acelaşi volum ca şi în cazul soluţiilor de calibrare şi se determină înălţimea (aria) medie a vârfurilor pentru vârfurile de robenidină.
6.Calculul rezultatelor
Din înălţimea (aria) medie a vârfurilor robenidinei din soluţia de eşantion se determină concentraţia în g/ml a soluţiei de eşantion prin referire la curba de calibrare (punctul 5.4.2).
Conţinutul de robenidină w (mg/kg) din eşantion este dat de formula următoare:
unde:

c

=

concentraţia de robenidină din soluţia de eşantion, în g/ml,

m

=

greutatea porţiunii de testat, în grame.

7.Validarea rezultatelor
7.1.Identitate
Identitatea analitului poate fi confirmată prin co-cromatografie sau prin utilizarea unui detector cu grup de diode care permite compararea spectrelor extractului de eşantion şi ale soluţiei de calibrare (punctul 3.9.3), care conţine 6 g/ml.
7.1.1.Co-cromatografie
Un extract de eşantion se îmbogăţeşte prin adăugarea unei cantităţi adecvate de soluţie de calibrare (punctul 3.9.3). Cantitatea de robenidină adăugată trebuie să fie similară cu cantitatea estimată de robenidină constatată în extractul de eşantion.
Numai înălţimea vârfului de robenidină creşte după luarea în considerare a cantităţii adăugate şi a diluţiei extractului. Lărgimea vârfului la jumătatea înălţimii sale maxime trebuie să se încadreze într-o variaţie de aproximativ 10 % din lărgimea iniţială.
7.1.2.Detecţie cu grup de diode
Rezultatele se evaluează în funcţie de următoarele criterii:
a)lungimea de undă a absorbţiei maxime a spectrelor eşantionului şi etalonului, înregistrată la vârful cel mai înalt al cromatogramei, trebuie să fie aceeaşi, într-o marjă determinată de puterea de rezoluţie a sistemului de detecţie. Pentru detecţia cu grup de diode, aceasta este în mod normal de aproximativ 2 nm;
b)între 250 şi 400 nm, spectrele eşantionului şi ale etalonului, înregistrate la vârful cel mai înalt al cromatogramei, nu trebuie să fie diferite pentru acele părţi ale spectrului situate între 10 şi 100 % din absorbanţa relativă. Acest criteriu este îndeplinit atunci când sunt prezente aceleaşi maxime şi când deviaţia dintre două spectre nu depăşeşte în niciun punct observat 15 % din absorbanţa analitului etalon;
c)între 250 şi 400 nm, spectrele curbei ascendente, ale punctului maxim şi ale curbei descendente ale vârfului produs de extractul de eşantion nu trebuie să fie diferite unele de altele pentru acele părţi ale spectrului situate între 10 şi 100 % din absorbanţa relativă. Acest criteriu este îndeplinit atunci când sunt prezente aceleaşi maxime şi când deviaţia dintre spectre nu depăşeşte în niciun punct observat 15 % din absorbanţa spectrului punctului maxim.
Dacă unul din aceste criterii nu este îndeplinit, prezenţa analitului nu a fost confirmată.
7.2.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări paralele efectuate pe acelaşi eşantion nu trebuie să depăşească 10 % din valoarea superioară, pentru un conţinut de robenidină mai mare de 15 mg/kg
7.3.Recuperare
Pentru un eşantion martor îmbogăţit, recuperarea este de cel puţin 85 %.
8.Rezultatele unui studiu colaborativ
A fost organizat un studiu prin colaborare la nivelul UE, în cursul căruia au fost analizate de către 12 laboratoare patru eşantioane, sub formă de făină sau de pelete, de hrană pentru păsări de curte şi pentru iepuri. Fiecare eşantion a făcut obiectul unei duble analize. Rezultatele sunt prezentate în tabelul de mai jos:

Păsări de curte

Iepuri

Făină

Pelete

Făină

Pelete

Medie (mg/kg)

27,00

27,99

43,6

40,1

sr [mg/kg]

1,46

1,26

1,44

1,66

CVr [%]

5,4

4,5

3,3

4,1

SR [mg/kg]

4,36

3,36

4,61

3,91

CVR [%]

16,1

12,0

10,6

9,7

Recuperare (%)

90,0

93,3

87,2

80,2

sr= deviaţia standard a repetabilităţii

CVr= coeficientul de variaţie a repetabilităţii, %

SR= deviaţia standard a reproductibilităţii

CVR= coeficientul de variaţie a reproductibilităţii, (%)

(F)DETERMINAREA CONŢINUTULUI DE DICLAZURIL
(+)-4-clorfenil [2,6-diclor-4-(2,3,4,5-tetrahidro-3,5-dioxo-1,2,4-triazin-2il)fenil]-acetonitril.
Conţinutul de diclazuril se determină prin:
- Metoda de analiză prevăzută de EN 17299 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - screeningul şi determinarea coccidiostaticelor autorizate la nivel de aditiv şi de contaminare încrucişată de 1 % şi 3 %, precum şi a coccidiostaticelor neînregistrate şi a unui antibiotic la niveluri de subaditiv, în furajele combinate cu cromatografie lichidă de înaltă performanţă - detecţie spectrometrică de masă în tandem (LC-MS/MS); sau
- prin cromatografie lichidă de înaltă performanţă (HPLC) cu fază inversată, utilizând un detector UV, astfel cum se descrie la punctele 1-9 de mai jos.
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Metoda permite determinarea conţinutului de diclazuril din furaje combinate şi preamestecuri (9). Limita de detecţie este de 0,1 mg/kg, iar limita de cuantificare este de 0,5 mg/kg Limite de cuantificare mai mici sunt realizabile, dar acest lucru trebuie validat de către utilizator.
(9)Metoda poate fi aplicabilă şi pentru determinarea diclazurilului în materiile prime furajere.
2.Principiu
După adăugarea unui standard intern, eşantionul este extras cu metanol acidifiat. Pentru furaje, o parte alicotă a extractului este purificată pe un cartuş C18 pentru extracţie în fază solidă. Diclazurilul este eluat din cartuş cu un amestec de metanol acidifiat şi apă. După evaporare, reziduul se dizolvă într-un amestec DMF/apă. Pentru preamestecuri, extractul se evaporă şi reziduul se dizolvă într-un amestec DMF/apă. Conţinutul de diclazuril se determină prin cromatografie lichidă de înaltă performanţă (HPLC) cu gradient ternar şi cu fază inversată, prin utilizarea unui detector UV.
3.Reactivi

3.1.

Apă, de calitate HPLC

3.2.

Acetat de amoniu

3.3.

Sulfat acid de tetrabutilamoniu (TBHS)

3.4.

Acetonitril, de calitate HPLC

3.5.

Metanol, de calitate HPLC

3.6.

N,N-dimetilformamidă (DMF)

3.7.

Acid clorhidric, 20 = 1,19 g/ml

3.8.

Substanţă etalon: diclazuril: (+)-4-clorfenil [2,6-diclor-4-(2,3,4,5-tetrahidro-3,5-dioxo-1,2,4-triazin-2-il) fenil] acetonitril, cu puritate garantată

3.8.1.

Soluţie etalon stoc de diclazuril, 500 g/ml

Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 25 mg de substanţă etalon de diclazuril (punctul 3.8) într-un balon gradat de 50 ml. Se dizolvă în DMF (punctul 3.6), se completează până la semn cu DMF (punctul 3.6) şi se amestecă. Se împachetează balonul în folie de aluminiu sau se utilizează un balon de culoare brună şi se depozitează în frigider. La o temperatură mai mică sau egală cu 4 °C soluţia este stabilă timp de 1 lună (10).

(10) Este posibilă o stabilitate mai lungă (până la 1 an), dar aceasta trebuie confirmată de laboratorul individual.

3.8.2.

Soluţia etalon de diclazuril, 50 g/ml

Se transferă 5,00 ml din soluţia etalon stoc (punctul 3.8.1) într-un balon gradat de 50 ml, se completează până la semn cu DMF (punctul 3.6) şi se amestecă. Se împachetează balonul în folie de aluminiu sau se utilizează un balon de culoare brună şi se depozitează în frigider. La o temperatură mai mică sau egală cu 4 °C soluţia este stabilă timp de 1 lună.

3.9.

Substanţă etalon intern: 2,6 diclor--(4-clorfenil)-4-[4,5-dihidro-3,5-dioxo-1,2,4-triazin-2 (3H)-il]-metilbenzen-acetonitril (diclazuril de metil)

3.9.1.

Soluţie etalon stoc internă de diclazuril, 500 g/ml

Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 25 mg de substanţă etalon internă (punctul 3.9) într-un balon gradat de 50 ml. Se dizolvă în DMF (punctul 3.6), se completează până la semn cu DMF (punctul 3.6) şi se amestecă. Se împachetează balonul în folie de aluminiu sau se utilizează un balon de culoare brună şi se depozitează în frigider. La o temperatură mai mică sau egală cu 4 °C soluţia este stabilă timp de 1 lună.

3.9.2.

Soluţie etalon intern, 50 g/ml

Se transferă 5,00 ml din soluţia etalon stoc internă de etalon intern (punctul 3.9.1) într-un balon gradat de 50 ml, se completează până la semn cu DMF (punctul 3.6) şi se amestecă. Se împachetează balonul în folie de aluminiu sau se utilizează un balon de culoare brună şi se depozitează în frigider. La o temperatură mai mică sau egală cu 4 °C soluţia este stabilă timp de 1 lună.

3.9.3.

Soluţie etalon intern pentru preamestecuri, p/1 000 mg/ml (p = conţinutul nominal de diclazuril în preamestec în mg/kg)

Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, p/10 mg de substanţă etalon intern într-un balon gradat de 100 ml, se dizolvă în DMF (punctul 3.6) într-o baie cu ultrasunete (punctul 4.7), se completează până la semn cu DMF şi se amestecă. Se împachetează balonul în folie de aluminiu sau se utilizează un balon de culoare brună şi se depozitează în frigider. La o temperatură mai mică sau egală cu 4 °C soluţia este stabilă timp de 1 lună.

3.10.

Soluţii de calibrare

3.10.1.

Soluţie de calibrare, 1 g/ml (diclazuril)

Se pipetează 1,00 ml din soluţia etalon de diclazuril (punctul 3.8.2) şi 2,00 ml din soluţia etalon intern (punctul 3.9.2) într-un balon gradat de 50 ml. Se adaugă 17 ml de DMF (punctul 3.6), se completează până la semn cu apă (punctul 3.1) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare.

3.10.2.

Soluţie de calibrare, 2 g/ml (diclazuril)

Se pipetează 2,00 ml din soluţia etalon de diclazuril (punctul 3.8.2) şi 2,00 ml din soluţia etalon intern (punctul 3.9.2) într-un balon gradat de 50 ml. Se adaugă 16 ml de DMF (punctul 3.6), se completează până la semn cu apă (punctul 3.1) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare.

3.10.3.

Soluţie de calibrare, 3 g/ml (diclazuril)

Se pipetează 3,00 ml din soluţia etalon de diclazuril (punctul 3.8.2) şi 2,00 ml din soluţia etalon intern (punctul 3.9.2) într-un balon gradat de 50 ml. Se adaugă 15 ml de DMF (punctul 3.6), se completează până la semn cu apă (punctul 3.1) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare.

3.10.4.

Soluţie de calibrare, 4 g/ml (diclazuril)

Se pipetează 4,00 ml din soluţia etalon de diclazuril (punctul 3.8.2) şi 2,00 ml din soluţia etalon intern (punctul 3.9.2) într-un balon gradat de 50 ml. Se adaugă 14 ml de DMF (punctul 3.6), se completează până la semn cu apă (punctul 3.1) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare.

3.10.5.

Soluţie de calibrare, 5 g/ml (diclazuril)

Se pipetează 5,00 ml din soluţia etalon de diclazuril (punctul 3.8.2) şi 2,00 ml din soluţia etalon intern (punctul 3.9.2) într-un balon gradat de 50 ml. Se adaugă 13 ml de DMF (punctul 3.6), se completează până la semn cu apă (punctul 3.1) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare.

Notă: soluţiile de calibrare (punctele 3.10.1, 3.10.2, 3.10.3, 3.10.4 şi 3.10.5) acoperă concentraţia de diclazuril din hrana pentru animale cuprinsă între 0,5 şi 2,5 mg/kg atunci când se utilizează protocolul actual.

3.11.

Cartuş C18 pentru extracţie în fază solidă, de exemplu Bond Elut, mărime: 20 cc, greutatea absorbentului: 5 000 mg (precondiţionare în conformitate cu orientările furnizorului).

3.12.

Solvent de extracţie: metanol acidifiat.

Se pipetează 5,0 ml de acid clorhidric (punctul 3.7) în 1 000 ml de metanol (punctul 3.5) şi se amestecă.

3.13.

Fază mobilă pentru HPLC

3.13.1.

Eluent A: acetat de amoniu - soluţie de sulfat acid de tetrabutilamoniu.

Se dizolvă 5 g de acetat de amoniu (punctul 3.2) şi 3,4 g de TBHS (punctul 3.3) în 1 000 ml de apă (punctul 3.1) şi se amestecă.

3.13.2.

Eluent B: acetonitril (punctul 3.4).

3.13.3.

Eluent C: metanol (punctul 3.5).

4.Aparatură

4.1.

Agitator mecanic

4.2.

Echipament pentru HPLC cu gradient ternar:

4.2.1.

Coloană pentru cromatografie lichidă, Hypersil ODS, particule de 3 m, 100 mm × 4,6 mm sau echivalent

4.2.2.

Detector UV cu ajustare variabilă a lungimii de undă sau detector cu grup de diode

4.3.

Evaporator rotativ cu generare de film

4.4.

Filtru cu membrană (de exemplu, nailon cu rezistenţă chimică), 0,45 m

4.5.

Seringă de unică folosinţă, 5 ml

4.6.

Distribuitor în vid

4.7.

Baie cu ultrasunete

5.Procedura
5.1.Generalităţi
5.1.1.Furaj martor
Se analizează un furaj martor pentru a verifica absenţa diclazurilului şi a substanţelor interferente. Furajul martor este similar, ca tip, cu eşantionul, iar prin analiză nu se detectează nici diclazuril, nici substanţe interferente.
5.1.2.Test de recuperare
Se efectuează un test de recuperare prin analiza furajului martor îmbogăţit prin adăugarea unei cantităţi de diclazuril, similară cu cea prezentă în eşantion. Pentru a obţine o concentraţie de 1 mg/kg, se adaugă 0,1 ml din soluţia etalon stoc (punctul 3.8.1) la 50 g din furajul martor, se amestecă bine şi se lasă timp de 10 minute, amestecând din nou de mai multe ori înainte de a continua (punctul 5.2).
Alternativ, dacă nu este disponibil un furaj martor similar, ca tip, cu eşantionul (a se vedea punctul 5.1.1), testul de recuperare poate fi efectuat conform metodei de adiţie standard. În acest caz, eşantionul de analizat se îmbogăţeşte adăugând o cantitate de diclazuril similară celei deja prezente în eşantion. Acest eşantion este analizat împreună cu eşantionul neîmbogăţit, iar recuperarea poate fi calculată prin diferenţă.
5.2.Extracţie
5.2.1.Pui de carne
Se cântăresc, cu o abatere de 0,01 g, aproximativ 50 g de eşantion. Se transferă într-un flacon tip Erlenmeyer de 500 ml, se adaugă 1,00 ml din soluţia etalon intern (punctul 3.9.2), 200 ml din solventul de extracţie (punctul 3.12) şi se astupă flaconul. Se agită amestecul în agitator (punctul 4.1) pe parcursul nopţii. Se lasă să se sedimenteze timp de 10 minute. Se transferă o parte alicotă de 20 ml din supernatant într-un recipient de sticlă adecvat şi se diluează în 20 ml apă (punctul 3.1). Se transferă această soluţie într-un cartuş de extracţie (punctul 3.11) şi se trece prin acesta prin aplicare de vid (punctul 4.6). Se spală cartuşul cu 25 ml dintr-un amestec de solvent de extracţie (punctul 3.12) şi apă (punctul 3.1), 65 + 35 (V + V). Se elimină fracţiunile colectate şi se eluează compuşii cu ajutorul a 25 ml dintr-un amestec de solvent de extracţie (punctul 3.12) şi apă, 80 + 20 (V + V). Se evaporă această fracţiune până la uscare prin intermediul evaporatorului rotativ (punctul 4.3) la 60 °C. Se dizolvă reziduul în 1,0 ml DMF (punctul 3.6), se adaugă 1,5 ml de apă (punctul 3.1) şi se amestecă. Se filtrează printr-un filtru cu membrană (punctul 4.4) montat pe o seringă de unică folosinţă (punctul 4.5). Se continuă cu determinarea prin HPLC (punctul 5.3).
5.2.2.Preamestecuri
Se cântăresc, cu o abatere de 0,001 g, aproximativ 1 g de eşantion. Se transferă într-un flacon tip Erlenmeyer de 500 ml, se adaugă 1,00 ml din soluţia etalon intern (punctul 3.9.3), 200 ml din solventul de extracţie (punctul 3.12) şi se astupă flaconul. Se agită amestecul în agitator (punctul 4.1) pe parcursul nopţii. Se lasă să se sedimenteze timp de 10 minute. Se transferă o parte alicotă de 10 000/p ml (p = conţinutul nominal în diclazuril al preamestecului în mg/kg) din supernatant într-un balon cu fund rotund de dimensiuni adecvate. Se evaporă acest amestec până la uscare, la presiune scăzută şi la 60 °C, cu ajutorul unui evaporator rotativ (punctul 4.3). Se dizolvă din nou reziduul în 10,0 ml de DMF (punctul 3.6), se adaugă 15,0 ml de apă (punctul 3.1) şi se amestecă. Se continuă cu determinarea prin HPLC (punctul 5.3).
5.3.Determinarea prin HPLC
5.3.1.Parametri
Următoarele condiţii sunt propuse cu titlu orientativ; se pot aplica şi alte condiţii, dacă acestea duc la rezultate echivalente sau mai bune.
- Coloană pentru cromatografie lichidă (punctul 4.2.1): 100 mm × 4,6 mm Hypersil ODS, particule de 3 m sau echivalent.
- Fază mobilă
- Eluent A [3.13.1]: Soluţie apoasă de acetat de amoniu şi sulfat acid de tetrabutilamoniu.
- Eluent B [3.13.2]: acetonitril.
- Eluent C [3.13.3]: metanol.
- Mod de eluare - gradient liniar
- condiţii iniţiale: A + B + C = 60 + 20 + 20 (V + V + V);
- după 10 min, eluţia gradientului timp de 30 de minute până la: A + B + C = 45 + 20 + 35 (V + V + V);
- se clăteşte apoi cu B timp de 10 minute.
- Debit: 1,5-2 ml/min
- Volum de injecţie: 20 l
- Lungimea de undă a detectorului: 280 nm.
Se verifică stabilitatea sistemului cromatografic injectându-se de mai multe ori soluţia de calibrare (punctul 3.10.2) care conţine 2 g/ml de diclazuril sau etalon intern, până când se obţin valori de vârf şi timpi de retenţie constanţi.
5.3.2.Analiza cromatografică a soluţiilor de calibrare
Se injectează de două ori 20 l din fiecare soluţie de calibrare (punctele 3.10.1, 3.10.3, 3.10.4, 3.10.5 şi 3.10.2), se identifică şi se integrează vârfurile diclazurilului şi etalonului intern şi se trasează curba de calibrare pe baza raportului dintre înălţimea medie a vârfului sau aria diclazurilului şi înălţimea medie a vârfului sau aria etalonului intern în raport cu concentraţia de diclazuril în soluţiile de calibrare (g/ml).
5.3.3.Analiza cromatografică a soluţiilor eşantion
Se injectează 20 l din soluţia de eşantion (punctul 5.2.1 sau 5.2.2) de două ori şi se determină înălţimea medie sau aria vârfurilor de diclazuril şi a vârfurilor etalonului intern.
6.Calculul rezultatelor
6.1.Pui de carne
Conţinutul de diclazuril w (în mg/kg) al eşantionului este dat de următoarea formulă:
sau
unde:
- Înălţimea(d,s) este înălţimea vârfului de diclazuril din soluţia eşantion (punctul 5.2.1)
- Aria(d,s) este aria vârfului de diclazuril din soluţia eşantion (punctul 5.2.1)
- Înălţimea(i,s) este înălţimea vârfului etalonului intern din soluţia eşantion (punctul 5.2.1)
- Aria(i,s) este aria vârfului etalonului intern din soluţia eşantion (punctul 5.2.1)
- b este ordonata la origine a curbei de calibrare trasată din soluţiile de calibrare (punctele 3.10.1, 3.10.2, 3.10.3, 3.10.4 şi 3.10.5) în conformitate cu punctul 5.3.2.
- a este panta curbei de calibrare trasată din soluţiile de calibrare (punctele 3.10.1, 3.10.2, 3.10.3, 3.10.4 şi 3.10.5) în conformitate cu punctul 5.3.2.
- m este masa porţiunii de testat, în grame
- V este volumul final în mililitri al extractului de eşantion după redizolvare în conformitate cu 5.2.1 (adică 2,5 ml)
6.2.Preamestecuri
Conţinutul de diclazuril w (în mg/kg) al eşantionului este dat de următoarea formulă:
p sau wp
unde:
- Înălţimea(d,s) este înălţimea vârfului de diclazuril din soluţia eşantion (punctul 5.2.2)
- Aria(d,s) este aria vârfului de diclazuril din soluţia eşantion (punctul 5.2.2)
- Înălţimea(i,s) este înălţimea vârfului etalonului intern din soluţia eşantion (punctul 5.2.2)
- Aria(i,s) este aria vârfului etalonului intern din soluţia eşantion (punctul 5.2.2)
- b este ordonata la origine a curbei de calibrare trasată din soluţiile de calibrare (punctele 3.10.1, 3.10. 2, 3.10.3, 3.10.4 şi 3.10.5) în conformitate cu punctul 5.3.2
- a este panta curbei de calibrare trasată din soluţiile de calibrare (punctele 3.10.1, 3.10.2, 3.10.3, 3.10.4 şi 3.10.5) în conformitate cu punctul 5.3.2.
- m este masa porţiunii de testat, în grame
- V este volumul final în mililitri al extractului de eşantion după redizolvare în conformitate cu punctul 5.2.2 (adică 25 ml)
- p este conţinutul nominal de diclazuril al preamestecului în mg/kg
7.Validarea rezultatelor
7.1.Identitate
Identitatea analitului poate fi confirmată prin co-cromatografie sau prin utilizarea unui detector cu grup de diode care permite compararea spectrelor extractului de eşantion (punctul 5.2.1 sau 5.2.2) şi ale soluţiei de calibrare (punctul 3.10.2).
7.1.1.Co-cromatografie
Un extract de eşantion (punctul 5.2.1 sau 5.2.2) este îmbogăţit prin adăugarea unei cantităţi adecvate din soluţia de calibrare (punctul 3.10.2). Cantitatea de diclazuril adăugată trebuie să fie similară cu cantitatea de diclazuril constatată în extractul de eşantion.
Numai înălţimea vârfului de diclazuril şi a vârfului etalonului intern creşte după luarea în considerare atât a cantităţii adăugate, cât şi a diluţiei extractului. Lărgimea vârfului, la jumătatea înălţimii sale, trebuie să se încadreze în ± 10 % din lărgimea iniţială a vârfului de diclazuril sau a vârfului etalonului intern al extractului de eşantion neîmbogăţit.
7.1.2.Detecţie cu grup de diode
Rezultatele se evaluează în funcţie de următoarele criterii:
a)Lungimea de undă a absorbţiei maxime a spectrelor eşantionului şi etalonului, înregistrată la vârful cel mai înalt al cromatogramei, trebuie să fie aceeaşi, într-o marjă determinată de puterea de rezoluţie a sistemului de detecţie. Pentru detecţia cu grup de diode, acest interval este în general de ± 2 nm.
b)Între 230 şi 320 nm, spectrele eşantionului şi etalonului înregistrate la vârful cel mai înalt al cromatogramei nu trebuie să fie diferite pentru acele părţi ale spectrului situate între 10 şi 100 % din absorbanţa relativă. Acest criteriu este îndeplinit atunci când sunt prezente aceleaşi maxime şi când deviaţia dintre spectre nu depăşeşte în niciun punct observat 15 % din absorbanţa analitului etalon.
c)Între 230 şi 320 nm, spectrele curbei ascendente, ale punctului maxim şi ale curbei descendente ale vârfului produs de extractul de eşantion nu trebuie să fie diferite unele de altele pentru acele părţi ale spectrului situate între 10 şi 100 % din absorbanţa relativă. Acest criteriu este îndeplinit atunci când sunt prezente aceleaşi maxime şi când deviaţia dintre spectre nu depăşeşte în niciun punct observat 15 % din absorbanţa spectrului celui mai înalt vârf al cromatogramei.
Dacă unul din aceste criterii nu este îndeplinit, prezenţa analitului nu a fost confirmată.
7.2.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două măsurători independente efectuate pe două subeşantioane nu trebuie să depăşească:
- 30 % din valoarea superioară pentru un conţinut în diclazuril situat între 0,5 mg/kg şi 2,5 mg/kg,
- 0,75 mg/kg pentru un conţinut în diclazuril situat între 2,5 mg/kg şi 5 mg/kg,
- 15 % din valoarea superioară pentru un conţinut de diclazuril mai mare de 5 mg/kg
7.3.Recuperare
Pentru un eşantion (martor) îmbogăţit, recuperarea este de cel puţin 80 %.
8.Rezultatele unui studiu colaborativ
Au fost organizate două studii colaborative. În primul, efectuat de un alt grup de laboratoare în 1994, eşantioanele analizate au fost două preamestecuri (O 100, A 100) şi trei eşantioane de furaje complementare pentru păsări de curte (L1, Z1, K1). Un eşantion de preamestec a fost amestecat cu o matrice organică (O 100), iar celălalt cu o matrice anorganică (A 100). Conţinutul teoretic este de 100 mg de diclazuril pe kg Laboratoarele au primit instrucţiuni să analizeze fiecare eşantion o singură dată sau în duplicat. (Informaţii detaliate privind primul studiu colaborativ figurează în Journal of AOAC International, vol. 77, nr. 6, 1994, p. 1359-1361).
În al doilea studiu colaborativ au fost analizate trei furaje combinate pentru păsări de curte, care conţin diclazuril în concentraţii de 0,9 mg/kg (MAT 1), 1,5 mg/kg (MAT 2) şi furajul martor (MAT 3). (Informaţii detaliate privind al doilea studiu figurează în JRC Technical report (2016) şi în Journal of AOAC International, vol. 102, nr. 2, 2019, p. 646-652). Rezultatele celor două studii colaborative sunt prezentate în tabelul următor.

Eşantion 1A 100

Eşantion 2O 100

Eşantion 3 L1

Eşantion 4 Z1

Eşantion 5 K1

Eşantion 6

MAT 1

Eşantion 7

MAT 2

Eşantion 8

MAT 3

L

11

11

11

11

6

10

9

10

n

19

18

19

19

12

20

18

10

Medie (mg/kg)

100,8

103,5

0,89

1,15

0,89

1,0

1,5

< LOQ

Sr (mg/kg)

5,88

7,64

0,15

0,02

0,03

0,11

0,07

-

CVr (%)

5,83

7,38

17,32

1,92

3,34

11,2

4,5

-

SR (mg/kg)

7,59

7,64

0,17

0,11

0,12

0,18

0,21

-

CVR (%)

7,53

7,38

18,61

9,67

13,65

18,1

14,3

-

Conţinut nominal (mg/kg)

100

100

1,0

1,0

1,0

0,9

1,5

-

Referinţă (*1)

(*1) Primul studiu din 1994: Journal of AOAC International, Volumul 77, No 6, 1994, p. 1359-1361; Al doilea studiu din 2015: JRC Technical report «Re-validation of a method for the determination of diclazuril by collaborative study» (2016).

Primul studiu din 1 994

Primul studiu din 1 994

Primul studiu din 1 994

Primul studiu din 1 994

Primul studiu din 1 994

Al doilea studiu din 2 015

Al doilea studiu din 2 015

Al doilea studiu din 2 015

L = număr de laboratoare

n = număr de valori unice

Sr = deviaţia standard a repetabilităţii

CVr = coeficientul de variaţie a repetabilităţii

SR = deviaţia standard a reproductibilităţii

CVR = coeficientul de variaţie a reproductibilităţii

LOQ = Limita de cuantificare

9.Observaţii generale
Trebuie să se demonstreze în prealabil că reacţia diclazurilului este liniară pentru toată gama de concentraţii măsurate.
Cel puţin pentru analiza diclazurilului din furajele combinate cu un conţinut ridicat de grăsime (în acest scop, care depăşeşte 12 % grăsime), metoda analitică poate fi înlocuită cu alte metode bazate pe HPLC, de exemplu o cromatografie lichidă de înaltă performanţă cuplată cu spectrometrie de masă (HPLC-MS), cu condiţia ca metoda alternativă să aibă caracteristici de performanţă echivalente (rata de recuperare, precizia la condiţiile de repetabilitate şi reproductibilitate).
(G)DETERMINAREA CONŢINUTULUI DE LASALOCID SODIC
Sare sodică a unui acid monocarboxilic polieter, produsă de Streptomyces lasaliensis.
Conţinutul de lasalocid sodic se determină prin
- Metoda de analiză prevăzută de EN 17299 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - screeningul şi determinarea coccidiostaticelor autorizate la nivel de aditiv şi de contaminare încrucişată de 1 % şi 3 %, precum şi a coccidiostaticelor neînregistrate şi a unui antibiotic la niveluri de subaditiv, în furajele combinate cu cromatografie lichidă de înaltă performanţă - detecţie spectrometrică de masă în tandem (LC-MS/MS); sau
- prin cromatografie lichidă de înaltă performanţă (HPLC) cu fază inversată, utilizând un detector spectrofluorimetric (fluorescenţă), astfel cum se descrie la punctele 1-8 de mai jos.
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Metoda permite determinarea conţinutului în lasalocid sodic din furaje. Limita de detecţie este de 5 mg/kg, iar limita de cuantificare este de 10 mg/kg
2.Principiu
Lasalocidul sodic este extras din eşantion cu metanol acidifiat şi dozat prin cromatografie lichidă de înaltă performanţă cu fază inversată (RP-HPLC) cu ajutorul unui detector spectrofluorimetric (fluorescenţă).
3.Reactivi

3.1.

Fosfat diacid de potasiu (KH2PO4)

3.2.

Acid ortofosforic, g (g/g) = 85 %

3.3.

Soluţie de acid ortofosforic, c = 20 %

Se diluează 23,5 ml acid ortofosforic (punctul 3.2) în 100 ml de apă.

3.4.

6-metil-2-heptilamin (1,5-dimetilhexilamină), g (g/g) = 99 %

3.5.

Metanol, de calitate HPLC

3.6.

Acid clorhidric, densitate = 1,19 g/ml

3.7.

Soluţie tampon de fosfat, c = 0,01 mol/l

Se dizolvă 1,36 g de KH2PO4 (punctul 3.1) în 500 ml de apă (punctul 3.11), se adaugă 3,5 ml de acid ortofosforic (punctul 3.2) şi 10,0 ml de 6-metil-2-heptilamină (punctul 3.4). Se ajustează pH-ul la 4,0 cu ajutorul soluţiei de acid ortofosforic (punctul 3.3) şi se diluează cu apă completându-se până la 1 000 ml (punctul 3.11).

3.8.

Metanol acidifiat

Se transferă 5,0 ml de acid clorhidric (punctul 3.6) într-un balon gradat de 1 000 ml, se completează până la semn cu metanol (punctul 3.5) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare.

3.9.

Fază mobilă HPLC, soluţie tampon de fosfat şi metanol 5 + 95 (V + V)

Se amestecă 5 ml de soluţie tampon de fosfat (punctul 3.7) cu 95 ml de metanol (punctul 3.5).

3.10.

Substanţă etalon de lasalocid sodic cu puritate garantată, C34H53O8Na (sare sodică a unui acid monocarboxilic polieter, produsă de Streptomyces lasaliensis), E 763

3.10.1.

Soluţie etalon stoc de lasalocid sodic, 500 g/ml

Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 50 mg de lasalocid sodic (punctul 3.10) într-un balon gradat de 100 ml, se dizolvă în metanol acidifiat (punctul 3.8), se completează până la semn cu acelaşi solvent şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare.

3.10.2.

Soluţie etalon intermediară de lasalocid sodic, 50 g/ml

Se pipetează 10,0 ml din soluţia etalon stoc (punctul 3.10.1) într-un balon gradat de 100 ml, se completează până la semn cu metanol acidifiat (punctul 3.8) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare.

3.10.3.

Soluţii de calibrare

Se transferă 1,0, 2,0, 4,0, 5,0 şi 10,0 ml de soluţie etalon intermediară (punctul 3.10.2) într-o serie de baloane gradate de 50 ml. Se completează până la semn cu metanol acidifiat (punctul 3.8) şi se amestecă. Aceste soluţii corespund concentraţiilor de 1,0, 2,0, 4,0, 5,0 şi 10,0 g de lasalocid sodic pe ml. Soluţiile se prepară imediat înainte de utilizare.

3.11.

Apă, de calitate HPLC

4.Aparatură

4.1.

Baie cu ultrasunete (sau baie de apă cu agitare) cu reglaj de temperatură

4.2.

Filtre cu membrană, 0,45 m

4.3.

Echipament HPLC cu sistem de injecţie, permiţând injectarea de volume de 20 l.

4.3.1.

Coloană pentru cromatografie lichidă, 125 mm × 4 mm, cu fază inversată C18, particule de 5 m sau echivalent

4.3.2.

Spectrofluorimetru cu ajustare variabilă a lungimii de undă pentru excitaţie şi emisie

5.Procedura
5.1.Generalităţi
5.1.1.Furaj martor
Pentru a efectua testul de recuperare (punctul 5.1.2), se analizează un furaj martor pentru a verifica absenţa lasalocidului sodic şi a substanţelor interferente. Furajul martor este similar, ca tip, cu eşantionul; nu se detectează nici lasalocid sodic, nici substanţe interferente.
5.1.2.Test de recuperare
Se efectuează un test de recuperare prin analiza furajului martor îmbogăţit prin adăugarea unei cantităţi de lasalocid sodic, similară cu cea prezentă în eşantion. Pentru a obţine o concentraţie de 100 mg/kg, se transferă 10,0 ml de soluţie etalon stoc (punctul 3.10.1) într-un flacon tip Erlenmeyer de 250 ml şi se evaporă soluţia până la aproximativ 0,5 ml. Se adaugă 50 g de furaj martor, se amestecă bine şi se lasă timp de 10 minute, amestecând din nou de mai multe ori înainte de a trece la etapa de extracţie (punctul 5.2).
Alternativ, dacă nu este disponibil un furaj martor similar, ca tip, cu eşantionul (a se vedea punctul 5.1.1), testul de recuperare poate fi efectuat conform metodei de adiţie standard. În acest caz, eşantionul de analizat este îmbogăţit cu o cantitate de lasalocid sodic asemănătoare celei deja prezente în eşantion. Acesta este analizat împreună cu eşantionul neîmbogăţit, iar recuperarea se poate calcula prin diferenţă.
5.2.Extracţie
5.2.1.Pentru porcine
Se cântăresc cu o abatere de 0,01 g, de la 5 la 10 g de eşantion într-un flacon tip Erlenmeyer de 250 ml cu dop. Se picură cu pipeta 100,0 ml de metanol acidifiat (punctul 3.8). Se închide uşor şi se agită circular pentru a se dispersa. Flaconul se plasează într-o baie cu ultrasunete (punctul 4.1) la aproximativ 40 °C timp de 20 de minute, se scoate şi se lasă să se răcească la temperatura camerei. Se lasă în repaus timp de aproximativ 1 oră, până la decantarea materiilor în suspensie, apoi se filtrează o parte alicotă printr-un filtru cu membrană de 0,45 m (punctul 4.2) într-un recipient adecvat. Se continuă cu determinarea prin HPLC (punctul 5.3).
5.2.2.Preamestecuri
Se cântăresc, cu o abatere de 0,001 g, 2 g de preamestec nemăcinat într-un balon gradat de 250 ml. Se adaugă 100,0 ml de metanol acidifiat (punctul 3.8) şi se agită circular pentru a se dispersa. Se pune balonul şi conţinutul acestuia într-o baie cu ultrasunete (punctul 4.1) la aproximativ 40 °C timp de 20 de minute, apoi se scoate şi se lasă să se răcească la temperatura camerei. Se completează până la semn cu metanol acidifiat (punctul 3.8) şi se amestecă bine. Se lasă în repaus timp de aproximativ 1 oră, până la decantarea materiilor în suspensie, apoi se filtrează o parte alicotă printr-un filtru cu membrană de 0,45 m (punctul 4.2). Se diluează un volum adecvat de filtrat limpede cu metanol acidifiat (punctul 3.8), pentru a produce o soluţie de testat finală care să conţină aproximativ 4 g/ml de lasalocid sodic. Se continuă cu determinarea prin HPLC (punctul 5.3).
5.3.Determinarea prin HPLC
5.3.1.Parametri
Următoarele condiţii sunt propuse cu titlu orientativ; se pot aplica şi alte condiţii, dacă acestea duc la rezultate echivalente:

Coloană pentru cromatografie lichidă (punctul 4.3.1):

125 mm × 4 mm, cu fază inversată C18, particule de 5 m sau echivalent

Faza mobilă (punctul 3.9):

amestec de soluţie tampon de fosfat (punctul 3.7) şi metanol (punctul 3.5), 5 + 95 (V + V)

Debit:

1,2 ml/min

Lungimea undelor de detecţie:

Excitaţie: 310 nm

Emisie: 419 nm

Volum de injecţie:

20 l

Se verifică stabilitatea sistemului cromatografic, injectând de mai multe ori soluţia de calibrare (punctul 3.10.3) conţinând 4,0 g/ml, până la obţinerea de înălţimi (arii) ale vârfurilor şi de timpi de retenţie constanţi.
5.3.2.Curba de calibrare
Se injectează fiecare soluţie de calibrare (punctul 3.10.3) de mai multe ori şi se determină înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor pentru fiecare concentraţie. Se trasează o curbă de calibrare utilizând valorile (ariile) medii ale vârfurilor ca ordonate şi concentraţiile corespunzătoare, în g/ml, ca abscise.
5.3.3.Soluţia de eşantion
Se injectează extractul de eşantion (punctul 5.2.1 sau 5.2.2) de mai multe ori utilizând acelaşi volum cu cel reţinut pentru soluţia de calibrare şi se determină înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor de lasalocid sodic.
6.Calculul rezultatelor
Plecând de la înălţimea (aria) medie a vârfurilor soluţiei de eşantion (punctul 5.3.3), se determină concentraţia de lasalocid sodic (g/ml) prin referire la curba de calibrare.
6.1.pentru porcine
Conţinutul de lasalocid sodic w (în mg/kg) al eşantionului este dat de următoarea formulă:
unde:

c

=

concentraţia de lasalocid sodic a soluţiei de eşantion (punctul 5.2.1) în g/ml

V1

=

volumul extractului de eşantion conform 5.2.1 în ml (adică 100)

m

=

greutatea porţiunii de testat, în g

6.2.Preamestecuri
Conţinutul de lasalocid sodic w (în mg/kg) al eşantionului este dat de următoarea formulă:
unde:

c

=

concentraţia de lasalocid sodic a soluţiei de eşantion (punctul 5.2.2) în g/ml

V2

=

volumul extractului de eşantion conform 5.2.2 în ml (adică 250)

f

=

factorul de diluţie conform 5.2.2

m

=

greutatea porţiunii de testat, în g

7.Validarea rezultatelor
7.1.Identitate
Metodele bazate pe spectrofluorimetrie sunt mai puţin supuse interferenţelor decât cele care utilizează un detector UV. Identitatea analitului poate fi confirmată de către co-cromatografie.
7.1.1.Co-cromatografie
Un extract de eşantion (punctul 5.2.1 sau 5.2.2) este îmbogăţit prin adăugarea unei cantităţi corespunzătoare de soluţie de calibrare (punctul 3.10.3). Cantitatea de lasalocid sodic adăugată trebuie să fie asemănătoare cantităţii de lasalocid sodic constatată în extractul de eşantion. Numai înălţimea vârfului corespunzător lasalocidului sodic se măreşte după ce s-a luat în calcul cantitatea de lasalocid sodic adăugată şi diluţia extractului. Lărgimea vârfului, la jumătatea înălţimii, trebuie să se încadreze între ± 10 % din lărgimea iniţială a vârfului produs de extractul de eşantion neîmbogăţit.
7.2.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări paralele efectuate pe acelaşi eşantion nu trebuie să depăşească:
- 15 % din valoarea superioară pentru un conţinut de lasalocid sodic situat între 30 mg/kg şi 100 mg/kg;
- 15 mg/kg pentru un conţinut de lasalocid sodic situat între 100 mg/kg şi 200 mg/kg;
- 7,5 % din valoarea superioară pentru un conţinut de lasalocid sodic mai mare de 200 mg/kg.
7.3.Recuperare
Pentru un eşantion de furaj (martor) îmbogăţit, recuperarea este de cel puţin 80 %. Pentru eşantioanele de preamestecuri îmbogăţite, recuperarea este de cel puţin 90 %.
8.Rezultatele unui studiu colaborativ
S-a realizat un studiu colaborativ (*2) în cursul căruia au fost analizate 2 preamestecuri (eşantioanele 1 şi 2) şi 5 furaje (eşantioanele 3-7) de către 12 laboratoare. Fiecare eşantion a făcut obiectul unei duble analize. Rezultatele sunt prezentate în tabelul de mai jos:
(*2)Analyst, 1995, 120, p. 2 175-2 180.

Eşantionul 1

Preamestec pentru pui

Eşantionul 2

Preamestec pentru curcani

Eşantionul 3

Pelete pentru curcani

Eşantionul 4

Sfărâmături pentru pui

Eşantionul 5

Furaje pentru curcani

Eşantionul 6

Furaje pentru păsări de curte A

Eşantionul 7

Furaje pentru păsări de curte B

L

12

12

12

12

12

12

12

n

23

23

23

23

23

23

23

Medie (mg/kg)

5 050

16 200

76,5

78,4

92,9

48,3

32,6

sr [mg/kg]

107

408

1,71

2,23

2,27

1,93

1,75

CVr [%]

2,12

2,52

2,24

2,84

2,44

4,00

5,37

sR [mg/kg]

286

883

3,85

7,32

5,29

3,47

3,49

CVR [%]

5,66

5,45

5,03

9,34

5,69

7,18

10,70

Conţinut nominal (mg/kg)

5 000 (*3)

(*3) Conţinutul declarat de producător.

16 000 (*3)

80 (*3)

105 (*3)

120 (*3)

50 ((+))

((+)) Furaj preparat în laborator.

35 ((+))

L= număr de laboratoare.

n= număr de valori unice.

sr= deviaţia standard a repetabilităţii.

sR= deviaţia standard a reproductibilităţii.

CVr= coeficientul de variaţie a repetabilităţii, %.

CVR= coeficientul de variaţie a reproductibilităţii, %.

(H)DETERMINAREA CONŢINUTULUI DE CLORHIDRAT DE AMPROLIU
clorură de 1-[(4-amino-2-propil-5-pirimidinil)metil]-2-metilpiridiniu monoclorhidrat
1.Obiectiv şi domeniu de aplicare
Metoda permite determinarea conţinutului de amproliu din furaje. Limita de detecţie este de 1 mg/kg, limita de cuantificare este de 5 mg/kg
2.Principiu
Eşantionul este extras cu un amestec de metanol şi apă. După diluarea cu fază mobilă şi filtrarea prin membrană, conţinutul de amproliu se determină prin cromatografie lichidă de înaltă performanţă (HPLC) cu schimb de cationi, utilizând un detector UV.
3.Reactivi

3.1.

Metanol

3.2.

Acetonitril, de calitate HPLC

3.3.

Apă, de calitate HPLC

3.4.

Soluţie de fosfat diacid de sodiu, c = 0,1 mol/l

Se dizolvă 13,80 g de fosfat diacid de sodiu în apă (punctul 3.3) într-un balon gradat de 1 000 ml, se completează până la semn cu apă (punctul 3.3) şi se amestecă.

3.5.

Soluţie de perclorat de sodiu, c = 1,6 mol/l

Se dizolvă 224,74 g de perclorat de sodiu monohidrat în apă (punctul 3.3) într-un balon gradat de 1 000 ml, se completează până la semn cu apă (punctul 3.3) şi se amestecă.

3.6.

Fază mobilă pentru HPLC (a se vedea observaţia de la punctul 9.1).

Amestec de acetonitril (punctul 3.2), soluţie de fosfat diacid de sodiu (punctul 3.4) şi soluţie de perclorat de sodiu (punctul 3.5), 450 + 450 + 100 (v + v + v). Înainte de utilizare, se filtrează printr-un filtru cu membrană de 0,22 m (punctul 4.3) şi se degazează soluţia [de exemplu, într-o baie cu ultrasunete (punctul 4.4) timp de cel puţin 15 minute].

3.7.

Substanţă etalon: amproliu pur, clorură de 1-[(4-amino-2-propil-5-pirimidinil)metil]-2-metilpiridiniu, E 750 (a se vedea punctul 9.2)

3.7.1.

Soluţie etalon stoc de amproliu, 500 g/ml

Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 50 mg de amproliu (punctul 3.7) într-un balon gradat de 100 ml, se dizolvă în 80 ml de metanol (punctul 3.1) şi se plasează balonul timp de 10 minute într-o baie cu ultrasunete (punctul 4.4). După tratamentul cu ultrasunete, se aduce soluţia la temperatura camerei, se completează până la semn cu apă şi se amestecă. La o temperatură de < = 4 °C, soluţia este stabilă timp de 1 lună.

3.7.2.

Soluţie etalon intermediară de amproliu, 50 g/ml

Se pipetează 5,0 ml din soluţia etalon stoc (punctul 3.7.1) într-un balon gradat de 50 ml, se completează până la semn cu solvent de extracţie (punctul 3.8) şi se amestecă. La o temperatură de < = 4 °C, soluţia este stabilă timp de 1 lună.

3.7.3.

Soluţii de calibrare

Se transferă 0,5, 1,0 şi 2,0 ml din soluţia etalon intermediară (punctul 3.7.2) într-o serie de baloane gradate de 50 ml. Se completează până la semn cu faza mobilă (punctul 3.6) şi se amestecă. Aceste soluţii corespund la 0,5, 1,0 şi respectiv 2,0 g de amproliu per ml. Soluţiile se prepară imediat înainte de utilizare.

3.8.

Solvent de extracţie

Amestec de metanol (punctul 3.1) şi apă 2 + 1 (v + v)

4.Aparatură

4.1.

Echipament HPLC cu sistem de injecţie, permiţând injectarea de volume de 100 l

4.1.1.

Coloană pentru cromatografie lichidă de 125 mm × 4 mm, Nucleosil 10 SA cu schimb de cationi, particule de 5 sau 10 m sau echivalent

4.1.2.

Detector UV cu ajustare variabilă a lungimii de undă sau detector cu grup de diode

4.2.

Filtru cu membrană, material PTFE, de 0,45 m

4.3.

Filtru cu membrană, 0,22 m

4.4.

Baie cu ultrasunete

4.5.

Agitator mecanic sau magnetic

5.Procedura
5.1.Generalităţi
5.1.1.Furaj martor
Pentru efectuarea testului de recuperare (punctul 5.1.2), se analizează un furaj martor pentru a verifica absenţa amproliului şi a substanţelor interferente. Furajul martor este similar, ca tip, cu eşantionul; nu trebuie să se detecteze amproliu sau substanţe interferente.
5.1.2.Testul de recuperare
Se efectuează un test de recuperare prin analiza furajului martor îmbogăţit prin adăugarea unei cantităţi de amproliu similară celei prezente în eşantion. Pentru a obţine o concentraţie de 100 mg/kg, se transferă 10,0 ml de soluţie etalon stoc (punctul 3.7.1) într-un flacon tip Erlenmeyer de 250 ml şi se evaporă soluţia până la aproximativ 0,5 ml. Se adaugă 50 g de furaj martor, se amestecă bine şi se lasă timp de 10 min, amestecând din nou de mai multe ori înainte de a trece la etapa de extracţie (punctul 5.2).
Alternativ, dacă nu este disponibil un furaj martor similar, ca tip, cu eşantionul (a se vedea punctul 5.1.1), testul de recuperare poate fi efectuat conform metodei de adiţie standard. În acest caz, eşantionul de analizat este îmbogăţit cu o cantitate de amproliu similară cu cea deja prezentă în eşantion. Acest eşantion este analizat împreună cu eşantionul neîmbogăţit şi recuperarea poate fi calculată prin scădere.
5.2.Extracţie
5.2.1.Preamestecuri (conţinut de amproliu < 1 %) şi furaje
Se cântăresc, cu o abatere de 0,01 g, între 5 şi 40 g de eşantion, în funcţie de conţinutul de amproliu, într-un flacon tip Erlenmeyer de 500 ml şi se adaugă 200 ml de solvent de extracţie (punctul 3.8). Se plasează flaconul în baia cu ultrasunete (punctul 4.4) şi se lasă timp de 15 minute. Se scoate flaconul din baia cu ultrasunete şi se agită timp de 1 oră cu agitatorul mecanic sau magnetic (punctul 4.5). Se diluează o parte alicotă din extract cu faza mobilă (punctul 3.6), pentru a se obţine un conţinut de amproliu între 0,5 şi 2 g/ml şi se amestecă (a se vedea observaţia de la 9.3). Se filtrează 5-10 ml din această soluţie diluată cu un filtru cu membrană (punctul 4.2). Se continuă cu determinarea prin HPLC (punctul 5.3).
5.2.2.Preamestecuri (conţinut de amproliu > = 1 %)
Se cântăresc, cu o abatere de 0,001 g, 1-4 g de preamestec, în funcţie de conţinutul de amproliu, într-un flacon tip Erlenmeyer de 500 ml şi se adaugă 200 ml solvent de extracţie (punctul 3.8). Se plasează flaconul în baia cu ultrasunete (punctul 4.4) şi se lasă timp de 15 minute. Se scoate flaconul din baia cu ultrasunete şi se agită timp de 1 oră cu agitatorul mecanic sau magnetic (punctul 4.5). Se diluează o parte alicotă din extract cu faza mobilă (punctul 3.6), pentru a se obţine un conţinut de amproliu între 0,5 şi 2 g/ml şi se amestecă. Se filtrează 5-10 ml din această soluţie diluată cu un filtru cu membrană (punctul 4.2). Se continuă cu determinarea prin HPLC (punctul 5.3).
5.3.Determinarea prin HPLC
5.3.1.Parametri:
Următoarele condiţii sunt propuse cu titlu orientativ; se pot aplica şi alte condiţii, dacă acestea duc la rezultate echivalente.

Coloană pentru cromatografie lichidă (punctul 4.1.1):

125 mm × 4 mm, Nucleosil 10 SA cu schimb de cationi, particule de 5 sau 10 m sau echivalent

Faza mobilă (punctul 3.6):

Amestec de acetonitril (punctul 3.2), soluţie de fosfat diacid de sodiu (punctul 3.4) şi soluţie de perclorat de sodiu (punctul 3.5), 450 + 450 + 100 (v + v + v).

Debit:

0,7 -1 ml/min

Lungimea undei de detecţie:

264 nm

Volum de injecţie:

100 l

Se verifică stabilitatea sistemului cromatografic, injectându-se de mai multe ori soluţia de calibrare (punctul 3.7.3) care conţine 1,0 g/ml, până când se obţin valori de vârf şi timpi de retenţie constanţi.
5.3.2.Curba de calibrare
Se injectează fiecare soluţie de calibrare (punctul 3.7.3) de mai multe ori şi se determină înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor pentru fiecare concentraţie. Se trasează o curbă de calibrare utilizând înălţimile (ariile) medii ale vârfurilor soluţiilor de calibrare ca ordonate şi concentraţiile corespunzătoare, în g/ml, ca abscise.
5.3.3.Soluţia de eşantion
Se injectează extractul de eşantion (punctul 5.2) de mai multe ori folosind acelaşi volum ca cel utilizat pentru soluţiile de calibrare şi se determină înălţimea (aria) medie a vârfurilor de amproliu.
6.Calculul rezultatelor
Din înălţimea (aria) medie a vârfurilor de amproliu din soluţia de eşantion se determină concentraţia în g/ml a soluţiei de eşantion prin referire la curba de calibrare (punctul 5.3.2).
Conţinutul w de amproliu al eşantionului, exprimat în mg/kg, este dat de următoarea formulă:
unde:

V

=

volumul solventului de extracţie (punctul 3.8), în ml, conform 5.2 (adică 200 ml)

c

=

concentraţia de amproliu din extractul de eşantion (punctul 5.2), în g/ml

f

=

factorul de diluţie conform 5.2

m

=

greutatea porţiunii de testat, în g

7.Validarea rezultatelor
7.1.Identitate
Identitatea analitului poate fi confirmată prin co-cromatografie sau prin utilizarea unui detector cu grup de diode care permite compararea spectrelor extractului de eşantion (punctul 5.2) şi ale soluţiei de calibrare (punctul 3.7.3), care conţine 2,0 g/ml.
7.1.1.Co-cromatografie
Un extract de eşantion (punctul 5.2) se îmbogăţeşte prin adăugarea unei cantităţi adecvate de soluţie de calibrare (punctul 3.7.3). Cantitatea de amproliu adăugată trebuie să fie similară cu cantitatea de amproliu constatată în extractul de eşantion.
Numai înălţimea vârfului de amproliu se măreşte după luarea în considerare atât a cantităţii adăugate, cât şi a diluţiei extractului. Lărgimea vârfului, la jumătatea înălţimii sale, trebuie să se încadreze într-o variaţie de ± 10 % din lărgimea iniţială a vârfului de amproliu din extractul de eşantion neîmbogăţit.
7.1.2.Detecţie cu grup de diode
Rezultatele se evaluează în funcţie de următoarele criterii:
a)Lungimea de undă a absorbţiei maxime a spectrelor eşantionului şi etalonului, înregistrată la vârful cel mai înalt al cromatogramei, trebuie să fie aceeaşi, într-o marjă determinată de puterea de rezoluţie a sistemului de detecţie. Pentru detecţia cu grup de diode, acest interval este în general de ± 2 nm.
b)Între 210 şi 320 nm, spectrele eşantionului şi etalonului înregistrate la vârful cel mai înalt al cromatogramei nu trebuie să fie diferite pentru acele părţi ale spectrului situate între 10 şi 100 % din absorbanţa relativă. Acest criteriu este îndeplinit atunci când sunt prezente aceleaşi maxime şi când deviaţia dintre spectre nu depăşeşte în niciun punct observat 15 % din absorbanţa analitului etalon.
c)Între 210 şi 320 nm, spectrele curbei ascendente, ale punctului maxim şi ale curbei descendente ale vârfului produs de extractul de eşantion nu trebuie să fie diferite unele de altele pentru acele părţi ale spectrului situate între 10 şi 100 % din absorbanţa relativă. Acest criteriu este îndeplinit atunci când sunt prezente aceleaşi maxime şi când deviaţia dintre spectre nu depăşeşte în niciun punct observat 15 % din absorbanţa spectrului celui mai înalt vârf al cromatogramei.
Dacă unul dintre aceste criterii nu este îndeplinit, prezenţa analitului nu este confirmată.
7.2.Repetabilitate
Diferenţa dintre rezultatele a două determinări paralele efectuate pe acelaşi eşantion nu trebuie să depăşească:
- 15 % din rezultatul superior pentru un conţinut de amproliu situat între 25 mg/kg şi 500 mg/kg;
- 75 mg/kg pentru un conţinut de amproliu situat între 500 mg/kg şi 1 000 mg/kg;
- 7,5 % din valoarea superioară pentru un conţinut de amproliu mai mare de 1 000 mg/kg.
7.3.Recuperare
Pentru un eşantion (martor) îmbogăţit, recuperarea este de cel puţin 90 %.
8.Rezultatele unui studiu colaborativ
S-a realizat un studiu colaborativ în cursul căruia au fost analizate trei tipuri de hrană pentru păsări de curte (eşantioanele 1-3), un furaj mineral (eşantionul 4) şi un preamestec (eşantionul 5). Rezultatele sunt prezentate în tabelul de mai jos:

Eşantion 1 (furaj martor)

Eşantion 2

Eşantion 3

Eşantion 4

Eşantion 5

L

14

14

14

14

15

n

56

56

56

56

60

medie (mg/kg)

-

45,5

188

5 129

25 140

sr [mg/kg]

-

2,26

3,57

178

550

CVr [%]

-

4,95

1,90

3,46

2,20

sR [mg/kg]

-

2,95

11,8

266

760

CVR [%]

-

6,47

6,27

5,19

3,00

conţinut nominal [mg/kg]

-

50

200

5 000

25 000

L: număr de laboratoare

n: număr de valori unice

sr: deviaţia standard a repetabilităţii

CVr: coeficientul de variaţie a repetabilităţii

sR: deviaţia standard a reproductibilităţii

CVR: coeficientul de variaţie a reproductibilităţii

9.Observaţii

9.1.

Dacă eşantionul conţine tiamină, vârful tiaminei din cromatogramă apare puţin înaintea vârfului de amproliu. Conform acestei metode, amproliul şi tiamina trebuie să fie separate. Dacă amproliul şi tiamina nu sunt separate de coloana (punctul 4.1.1) utilizată în această metodă, se înlocuieşte cu metanol până la 50 % din porţia de acetonitril a fazei mobile (punctul 3.6).

9.2.

Conform Farmacopeei Britanice, spectrul soluţiei de amproliu (c = 0,02 mol/l) în acid clorhidric (c = 0,1 mol/l) prezintă valori maxime la 246 nm şi 262 nm. Absorbanţa este de 0,84 la 246 nm şi de 0,80 la 262 nm.

9.3.

Extractul trebuie să fie întotdeauna diluat cu faza mobilă, altfel timpul de reţinere al vârfului de amproliu se poate schimba în mod semnificativ din cauza variaţiilor forţei ionice.

(I)DETERMINAREA NARAZINULUI
Conţinutul de nazarin se determină prin
- metoda de analiză prevăzută de EN 17299 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - screeningul şi determinarea coccidiostaticelor autorizate la nivel de aditiv şi de contaminare încrucişată de 1 % şi 3 %, precum şi a coccidiostaticelor neînregistrate şi a unui antibiotic la niveluri de subaditiv, în furajele combinate cu cromatografie lichidă de înaltă performanţă - detecţie spectrometrică de masă în tandem (LC-MS/MS); sau
- metoda prevăzută de EN ISO 14183 Hrană pentru animale - Determinarea conţinutului de monensin, narazin şi salinomicină - Metodă cromatografică lichidă prin derivatizare post-coloană
(J)DETERMINAREA NICARBAZINULUI
Conţinutul de nicarbazin se determină prin:
- metoda de analiză prevăzută de EN 17299 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - screeningul şi determinarea coccidiostaticelor autorizate la nivel de aditiv şi de contaminare încrucişată de 1 % şi 3 %, precum şi a coccidiostaticelor neînregistrate şi a unui antibiotic la niveluri de subaditiv, în furajele combinate cu cromatografie lichidă de înaltă performanţă - detecţie spectrometrică de masă în tandem (LC-MS/MS); sau
- metoda prevăzută de EN 15782 Hrană pentru animale - Determinarea nicarbazinului - Metodă cromatografică lichidă de înaltă performanţă.
(K)DETERMINAREA DECOCHINATULUI
Conţinutul de decochinat se determină prin:
- metoda de analiză prevăzută de EN 17299 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - screeningul şi determinarea coccidiostaticelor autorizate la nivel de aditiv şi de contaminare încrucişată de 1 % şi 3 %, precum şi a coccidiostaticelor neînregistrate şi a unui antibiotic la niveluri de subaditiv, în furajele combinate cu cromatografie lichidă de înaltă performanţă - detecţie spectrometrică de masă în tandem (LC-MS/MS), sau
- metoda prevăzută de EN 16162 Hrană pentru animale - Determinarea decochinatului prin HPLC cu detectarea fluorescenţei.
(L)DETERMINAREA MONENSINULUI
Conţinutul de monensin se determină prin
- metoda de analiză prevăzută de EN 17299 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - screeningul şi determinarea coccidiostaticelor autorizate la nivel de aditiv şi de contaminare încrucişată de 1 % şi 3 %, precum şi a coccidiostaticelor neînregistrate şi a unui antibiotic la niveluri de subaditiv, în furajele combinate cu cromatografie lichidă de înaltă performanţă - detecţie spectrometrică de masă în tandem (LC-MS/MS); sau
- metoda prevăzută de EN ISO 14183 Hrană pentru animale - Determinarea conţinutului de monensin, narazin şi salinomicină - Metodă cromatografică lichidă prin derivatizare post-coloană.
(M)DETERMINAREA SALINOMICINULUI
Conţinutul de salinomicin se determină prin
- metoda de analiză prevăzută de EN 17299 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - screeningul şi determinarea coccidiostaticelor autorizate la nivel de aditiv şi de contaminare încrucişată de 1 % şi 3 %, precum şi a coccidiostaticelor neînregistrate şi a unui antibiotic la niveluri de subaditiv, în furajele combinate cu cromatografie lichidă de înaltă performanţă - detecţie spectrometrică de masă în tandem (LC-MS/MS); sau
- metoda prevăzută de EN ISO 14183 Hrană pentru animale - Determinarea conţinutului de monensin, narazin şi salinomicină - Metodă cromatografică lichidă prin derivatizare post-coloană.
(N)DETERMINAREA SEMDURAMICINULUI
Conţinutul de semduramicin se determină prin:
- metoda de analiză prevăzută de EN 17299 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - screeningul şi determinarea coccidiostaticelor autorizate la nivel de aditiv şi de contaminare încrucişată de 1 % şi 3 %, precum şi a coccidiostaticelor neînregistrate şi a unui antibiotic la niveluri de subaditiv, în furajele combinate cu cromatografie lichidă de înaltă performanţă - detecţie spectrometrică de masă în tandem (LC-MS/MS); sau
- metoda prevăzută de EN ISO 16158 Hrană pentru animale - Determinarea conţinutului de semduramicin - Metodă cromatografică lichidă prin utilizarea unei abordări de tip «ramificat».
(O)STANDARDE EN
Pentru aplicarea articolului 34 alineatul (2) litera (a) din Regulamentul (UE) 2017/625, sunt relevante următoarele standarde EN:
EN ISO 30024 Hrană pentru animale - Determinarea activităţii fitazei
EN 17050 Hrană pentru animale - Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea iodului din furaje prin ICP-MS
EN 17550 Hrană pentru animale: Determinarea carotenoidelor în furajele combinate şi în preamestecuri prin cromatografie lichidă de înaltă performanţă - detecţie UV (HPLC-UV)
EN 15784 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Detectarea şi enumerarea Bacillus spp.
EN 15785 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Izolarea şi enumerarea Bifidobacterium spp.
EN 15786 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Detectarea şi enumerarea Pediococcus spp.
EN 15787 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Detectarea şi enumerarea Lactobacillus spp. utilizat ca aditiv furajer
EN 15788 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Detectarea şi enumerarea Enterococcus (E. faecium) spp. utilizat ca aditiv furajer
EN 15789 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Detectarea şi enumerarea Saccharomyces cerevisiae utilizată ca aditiv furajer
EN 15510 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea calciului, sodiului, fosforului, magneziului, potasiului, fierului, zincului, cuprului, manganului, cobaltului, molibdenului şi plumbului prin ICP-AES (pentru analiza aditivilor furajeri cobalt şi molibden)
EN 15621 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea calciului, sodiului, fosforului, magneziului, potasiului, sulfului, fierului, zincului, cuprului, manganului şi cobaltului după dizolvarea sub presiune prin ICP-AES (pentru analiza aditivului furajer cobalt)
EN 16159 Hrană pentru animale - Determinarea seleniului prin spectrometrie de absorbţie atomică cu generare de hidruri (HGAAS) după dizolvarea cu microunde (dizolvare cu 65 % acid azotic şi 30 % peroxid de hidrogen) (pentru analiza aditivului furajer seleniu)
EN 17053: Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea oligoelementelor, a metalelor grele şi a altor elemente din furaje prin ICP-MS (multimetodă) (pentru analiza aditivilor furajeri cobalt, molibden şi seleniu)."
ANEXA V:
"- ANEXA V: METODE DE ANALIZĂ PENTRU CONTROLUL SUBSTANŢELOR NEDORITE DIN FURAJE
Partea A:DETERMINAREA NIVELURILOR DE DIOXINE (PCDD/PCDF) ŞI DE PCB-URI
CAPITOLUL I:METODE DE EŞANTIONARE ŞI DE INTERPRETARE A REZULTATELOR ANALITICE
1.Domeniu de aplicare şi definiţii
Eşantioanele destinate controlului oficial al nivelurilor de p-dibenzodioxine policlorurate (PCDD-uri), dibenzofurani policloruraţi (PCDF-uri), bifenili policloruraţi de tipul dioxinelor (PCB-uri) (1) şi PCB-uri care nu sunt de tipul dioxinelor din furaje sunt prelevate în conformitate cu dispoziţiile din anexa I. Se aplică cerinţele cantitative privind controlul substanţelor sau produselor repartizate uniform în furaje, aşa cum sunt prevăzute la punctul 5.1 din anexa I. Eşantioanele agregat astfel obţinute se consideră reprezentative pentru loturile sau subloturile din care sunt prelevate. Pe baza nivelurilor determinate în eşantioanele de laborator se stabileşte dacă se respectă nivelurile maxime prevăzute de Directiva 2002/32/CE.
(1)Tabelul factorilor de echivalenţă toxică (= TEF - toxic equivalency factors), pentru PCDD, PCDF şi PCB-uri de tipul dioxinelor: Factorii de echivalenţă toxică ai OMS (OMS-TEF) pentru evaluarea riscurilor pentru sănătatea umană se bazează pe concluziile reuniunii de experţi din cadrul Programului internaţional pentru securitate chimică (IPCS) al OMS, care a avut loc la Geneva în iunie 2005 [Martin van den Berg et al., « The 2005 World Health Organization Re-evaluation of Human and Mammalian Toxic Equivalency Factors for Dioxins and Dioxin-like Compounds ». Toxicological Sciences 93(2), 223-241 (2006)].

Congener

Valoare TEF

Congener

Valoare TEF

P-dibenzodioxine («PCDD-uri») şi p-dibenzofurani («PCDF-uri»)

PCB-uri de tipul dioxinelor

PCB-uri non-orto + PCB-uri mono-orto

2,3,7,8-TCDD

1

1,2,3,7,8-PeCDD

1

PCB-uri non-orto

1,2,3,4,7,8-HxCDD

0,1

PCB 77

0,0001

1,2,3,6,7,8-HxCDD

0,1

PCB 81

0,0003

1,2,3,7,8,9-HxCDD

0,1

PCB 126

0,1

1,2,3,4,6,7,8-HpCDD

0,01

PCB 169

0,03

OCDD

0,0003

PCB-uri mono-orto

2,3,7,8-TCDF

0,1

PCB 105

0,00003

1,2,3,7,8-PeCDF

0,03

PCB 114

0,00003

2,3,4,7,8-PeCDF

0,3

PCB 118

0,00003

1,2,3,4,7,8-HxCDF

0,1

PCB 123

0,00003

1,2,3,6,7,8-HxCDF

0,1

PCB 156

0,00003

1,2,3,7,8,9-HxCDF

0,1

PCB 157

0,00003

2,3,4,6,7,8-HxCDF

0,1

PCB 167

0,00003

1,2,3,4,6,7,8-HpCDF

0,01

PCB 189

0,00003

1,2,3,4,7,8,9-HpCDF

0,01

OCDF

0,0003

Abrevieri utilizate: «T» = tetra; «Pe» = penta; «Hx» = hexa; «Hp» = hepta; «O» = octa; «CDD» = clorodibenzodioxină; «CDF» = clorodibenzofuran; «CB» = clorobifenil.
În sensul prezentei părţi, se aplică definiţiile menţionate în anexa I la Regulamentul de punere în aplicare (UE) 2021/808 al Comisiei (2).
(2)Regulamentul de punere în aplicare (UE) 2021/808 al Comisiei din 22 martie 2021 privind performanţa metodelor analitice pentru reziduurile de substanţe farmacologic active utilizate la animalele de la care se obţin produse alimentare şi privind interpretarea rezultatelor, precum şi privind metodele care trebuie utilizate pentru prelevarea de probe şi de abrogare a Deciziilor 2002/657/CE şi 98/179/CE (JO L 180, 21.5.2021, p. 84).
În plus faţă de aceste definiţii, în sensul prezentei părţi se aplică următoarele definiţii:
«Metode de screening» înseamnă metode utilizate pentru selectarea eşantioanelor cu niveluri de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor care depăşesc nivelurile maxime sau pragurile de acţiune. Ele permit o capacitate sporită de analiză a eşantioanelor, eficientă din punctul de vedere al costurilor, sporind astfel şansa de a descoperi noi incidente cu un nivel mare de expunere şi riscuri de sănătate importante pentru consumatori. Metodele de screening se bazează pe metode bioanalitice sau metode GC-MS. Rezultatele de la eşantioanele care depăşesc valoarea-limită utilizată pentru verificarea conformităţii cu nivelul maxim trebuie să fie verificate printr-o nouă analiză completă din proba originală printr-o metodă de confirmare.
«Metode de confirmare» înseamnă metode care furnizează informaţii complete sau complementare care permit identificarea şi cuantificarea certă a PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor la pragul maxim sau, la nevoie, la pragul de acţiune. Aceste metode utilizează cromatografia în fază gazoasă/spectrometria de masă de înaltă rezoluţie (GC-HRMS) sau cromatografia în fază gazoasă/spectrometria de masă în tandem (GC-MS/MS).
2.Conformitatea lotului sau a sublotului cu nivelul maxim
2.1.În ceea ce priveşte PCB-urile care nu sunt de tipul dioxinelor
Lotul sau sublotul respectă nivelul maxim în cazul în care rezultatul analitic al sumei PCB 28, PCB 52, PCB 101, PCB 138, PCB 153 şi PCB 180 (PCB-uri care nu sunt de tipul dioxinelor) nu depăşeşte nivelul maxim prescris de Directiva 2002/32/CE, ţinând cont de incertitudinea de măsurare extinsă (3). Lotul sau sublotul nu respectă nivelul maxim prescris de Directiva 2002/32/CE în cazul în care media celor două rezultate analitice ale estimării superioare (4) obţinută printr-o analiză duplicat (5), luându-se în considerare incertitudinea de măsurare extinsă, depăşeşte dincolo de orice îndoială rezonabilă nivelul maxim, adică, pentru a evalua conformitatea, se foloseşte concentraţia analizată după ce s-a dedus incertitudinea de măsurare extinsă.
(3)Dacă este cazul, trebuie respectate principiile descrise în "Ghidul privind incertitudinea de măsurare pentru laboratoarele care efectuează analize de PCDD/F şi PCB utilizând spectrometria de masă prin metoda de diluţie a izotopilor» (https://food.ec.europa.eu/system/files/2017-05/animal-feed-guidance_document_pcdd-f_pcb_en.pdf).
(4)Conceptul de «estimare superioară» necesită utilizarea limitei de cuantificare pentru contribuţia fiecărui congener necuantificat. Conceptul de «estimare inferioară» necesită utilizarea valorii zero pentru contribuţia fiecărui congener necuantificat. Conceptul de «estimare mediană» necesită utilizarea jumătăţii limitei de cuantificare la calcularea contribuţiei fiecărui congener necuantificat.
(5)Analiză duplicat: analiza separată a analiţilor de interes, folosind o a doua parte alicotă din aceeaşi probă omogenizată. În general, se aplică cerinţele pentru analiza duplicat, astfel cum sunt prevăzute în anexa II capitolul C punctul 3. Cu toate acestea, pentru metodele care utilizează etalonul intern marcat cu 13C pentru analiţii relevanţi, analiza duplicat este necesară doar în cazul în care rezultatul primei determinări nu este conform. Analiza duplicat este necesară pentru a exclude posibilitatea contaminării încrucişate interne sau a încurcării accidentale a eşantioanelor. În cazul în care analiza este efectuată în contextul unui incident de contaminare, se poate omite confirmarea printr-o analiză duplicat atunci când eşantioanele selecţionate pentru analiză sunt asociate prin trasabilitate cu incidentul de contaminare şi nivelul constatat este cu mult peste nivelul maxim.
Incertitudinea de măsurare extinsă se calculează utilizându-se un coeficient de acoperire cu valoarea 2, care conferă un nivel de încredere de aproximativ 95 %. Un lot sau un sublot nu este conform dacă media valorilor măsurate minus incertitudinea extinsă a mediei este mai mare decât nivelul maxim.
Normele menţionate la paragrafele de mai sus din cadrul acestui punct se aplică pentru rezultatul analitic obţinut pe proba pentru controlul oficial. În cazul analizei efectuate pentru o a doua expertiză sau pentru referinţă, se aplică reglementările naţionale.
2.2.Referitor la PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor
Lotul sau sublotul respectă nivelul maxim în cazul în care rezultatul unei singure analize
- efectuate printr-o metodă de screening, cu o rată a rezultatelor fals conforme sub 5 %, indică faptul că nivelul nu depăşeşte nivelul maxim respectiv de PCDD-uri/PCDF-uri şi suma de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor prevăzute de Directiva 2002/32/CE;
- efectuate printr-o metodă de confirmare, nu depăşeşte nivelul maxim respectiv de PCDD-uri/PCDF-uri şi suma de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor prevăzute de Directiva 2002/32/CE, luându-se în considerare incertitudinea de măsurare extinsă.
Pentru testele de screening, se stabileşte o valoare-limită pentru deciziile privind conformitatea eşantioanelor cu nivelurile maxime respective stabilite fie pentru PCDD-uri/PCDF-uri, fie pentru suma de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor.
Lotul sau sublotul este considerat neconform cu nivelul maxim conform Directivei 2002/32/CE dacă media celor două rezultate analitice ale estimării superioare (6) obţinute în urma unei analize duplicat (7) depăşeşte dincolo de orice îndoială rezonabilă nivelul maxim, ţinând seama de incertitudinea de măsurare extinsă, adică pentru a evalua conformitatea, este utilizată concentraţia analizată după ce s-a dedus incertitudinea de măsurare extinsă.
(6)Conceptul de «estimare superioară» necesită utilizarea limitei de cuantificare pentru contribuţia fiecărui congener necuantificat la echivalentul toxic (TEQ). Conceptul de «estimare inferioară» necesită utilizarea valorii zero pentru contribuţia fiecărui congener necuantificat la echivalentul toxic (TEQ). Conceptul de «estimare mediană» necesită utilizarea jumătăţii limitei de cuantificare la calcularea contribuţiei fiecărui congener necuantificat la echivalentul toxic (TEQ).
(7)În general, se aplică cerinţele pentru analiza duplicat, astfel cum sunt prevăzute în anexa II capitolul C punctul 3. Cu toate acestea, pentru metodele de confirmare care utilizează etalonul intern marcat cu 13C pentru analiţii relevanţi, analiza duplicat este necesară doar în cazul în care rezultatul primei determinări nu este conform. Analiza duplicat este necesară pentru a exclude posibilitatea contaminării încrucişate interne sau a încurcării accidentale a eşantioanelor. În cazul în care analiza este efectuată în contextul unui incident de contaminare, se poate omite confirmarea printr-o analiză duplicat atunci când eşantioanele selecţionate pentru analiză sunt asociate prin trasabilitate cu incidentul de contaminare şi nivelul constatat este cu mult peste nivelul maxim.
Incertitudinea de măsurare extinsă se calculează utilizându-se un coeficient de acoperire cu valoarea 2, care conferă un nivel de încredere de aproximativ 95 %. Un lot sau un sublot nu este conform dacă media valorilor măsurate minus incertitudinea extinsă a mediei este mai mare decât nivelul maxim.
Se utilizează suma incertitudinilor extinse estimate a rezultatelor analitice separate ale PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor pentru suma PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor.
Normele menţionate la paragrafele de mai sus din cadrul acestui punct se aplică pentru rezultatul analitic obţinut pe proba pentru controlul oficial. În cazul analizei efectuate în scop de apărare sau pentru referinţă, se aplică reglementările naţionale.
3.Rezultate care depăşesc pragurile de acţiune stabilite în anexa II la Directiva 2002/32/CE
Pragurile de acţiune servesc ca instrument pentru selectarea eşantioanelor în cazurile în care este necesar să se identifice o sursă de contaminare şi să se ia măsuri pentru reducerea sau eliminarea acesteia. Metodele de screening stabilesc valori-limită corespunzătoare pentru selectarea acelor eşantioane. În cazul în care sunt necesare eforturi importante pentru a identifica o sursă şi pentru a reduce sau elimina contaminarea, s-ar putea să fie adecvat să se confirme depăşirea pragurilor de acţiune printr-o analiză duplicat folosind o metodă de confirmare şi luându-se în considerare incertitudinea de măsurare extinsă (8).
(8)Explicaţie şi cerinţe identice pentru analiza duplicat pentru controlul pragurilor de acţiune ca în nota de subsol 5 pentru nivelurile maxime.
CAPITOLUL II:PREGĂTIREA EŞANTIOANELOR ŞI CERINŢE PRIVIND METODELE DE ANALIZĂ UTILIZATE PENTRU CONTROLUL OFICIAL AL NIVELURILOR DE DIOXINE (PCDD/PCDF) ŞI DE PCB-URI DE TIPUL DIOXINELOR DIN FURAJE
1.Domeniu de aplicare
Cerinţele stabilite în prezentul capitol se aplică atunci când furajele sunt analizate pentru controlul oficial al nivelurilor de PCDD/PCDF substituite la poziţiile 2,3,7,8 şi PCB-uri de tipul dioxinelor, precum şi în ceea ce priveşte pregătirea eşantioanelor şi cerinţele analitice pentru alte scopuri de reglementare, care includ controalele oficiale efectuate de operatorii din sectorul hranei pentru animale pentru a asigura conformitatea cu Regulamentul (CE) nr. 183/2005 al Parlamentului European şi al Consiliului (9).
(9)Regulamentul (CE) nr. 183/2005 al Parlamentului European şi al Consiliului din 12 ianuarie 2005 de stabilire a cerinţelor privind igiena furajelor (JO L 35, 8.2.2005, p. 1).
Monitorizarea prezenţei PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor în furaje poate fi efectuată cu două tipuri diferite de metode analitice:
(a)Metode de screening
Obiectivul metodelor de screening este selectarea acelor eşantioane cu niveluri de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor care depăşesc nivelurile maxime sau pragurile de acţiune. Metodele de screening trebuie să garanteze o capacitate sporită de analiză a eşantioanelor, eficientă din punctul de vedere al costurilor, sporind astfel şansa de a descoperi noi incidente cu un nivel mare de expunere şi riscuri de sănătate importante pentru consumatori. Aplicarea lor trebuie să urmărească evitarea rezultatelor fals conforme. Ele pot să cuprindă metode bioanalitice şi metode GC-MS.
Metodele de screening compară rezultatul analitic cu o valoare-limită, determinând o decizie de tip da/nu în legătură cu eventuala depăşire a nivelului maxim sau a pragului de acţiune. Concentraţia PCDD-urilor/PCDF-urilor şi suma de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor din eşantioanele suspectate a fi neconforme cu nivelul maxim trebuie determinate sau confirmate printr-o metodă de confirmare.
În plus, metodele de screening pot oferi o indicaţie a nivelului de PCDD/F-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor prezente în probă. În cazul aplicării metodelor bioanalitice de screening, rezultatul se exprimă ca echivalente bioanalitice (BEQ), iar în cazul aplicării metodelor GC-MS fizico-chimice se exprimă ca echivalente toxice (TEQ). Rezultatele exprimate numeric ale metodelor de screening sunt utile pentru a dovedi conformitatea sau suspiciunea de neconformitate sau depăşirea pragurilor de acţiune şi oferă o indicaţie a intervalului în care se situează nivelurile în vederea monitorizării prin metode de confirmare. Acestea nu sunt adecvate pentru scopuri precum evaluarea nivelurilor de fond, aprecierea prelevării, urmărirea tendinţelor pe care le urmează nivelurile în timp sau reevaluarea pragurilor de acţiune şi a nivelurilor maxime.
(b)Metode de confirmare
Metodele de confirmare permit identificarea şi cuantificarea fără echivoc a PCDD-urilor/PCDF-urilor şi PCB-urilor de tipul dioxinelor prezente într-o probă şi oferă informaţii depline la nivel de congeneri individuali. Prin urmare, aceste metode permit controlarea nivelurilor maxime şi a pragurilor de acţiune, inclusiv confirmarea rezultatelor obţinute prin metodele de screening. În plus, rezultatele pot fi folosite şi pentru alte scopuri, precum determinarea nivelurilor de fond scăzute în monitorizarea furajelor, urmărirea tendinţelor în timp, evaluarea expunerii şi crearea unei baze de date pentru eventuala reevaluare a pragurilor de acţiune şi a nivelurilor maxime. Acestea sunt, de asemenea, importante pentru stabilirea modelelor pentru congeneri în scopul de a identifica sursa unei posibile contaminări. Astfel de metode utilizează GC-HRMS. Pentru a confirma respectarea sau nerespectarea nivelului maxim, se poate utiliza, de asemenea, GC-MS/MS.
2.Context
Pentru calcularea concentraţiilor echivalentelor toxice (TEQ), concentraţiile fiecărei substanţe dintr-o probă dată se înmulţesc cu factorul de echivalenţă toxică (TEF) corespunzător (a se vedea nota de subsol 1 de la capitolul I) şi apoi se adună pentru a obţine concentraţia totală de compuşi de tipul dioxinelor exprimată ca TEQ-uri.
În sensul prezentei părţi A, limita specifică acceptată de cuantificare a unui congener individual înseamnă conţinutul minim al unui analit care poate fi măsurat cu certitudine statistică rezonabilă şi îndeplineşte criteriile de identificare, astfel cum sunt descrise în standarde recunoscute la nivel internaţional, de exemplu, EN 16215:2012 (Hrană pentru animale - Determinarea conţinutului de dioxină, a PCB-urilor de tip dioxină şi a indicatorilor PCB prin GC-HRMS) şi/sau în metodele EPA 1613 şi 1668 revizuite.
Limita de cuantificare a unui congener individual poate fi identificată drept:
(a)concentraţia unui analit din extractul unui eşantion care produce un răspuns instrumental la doi ioni diferiţi care urmează să fie monitorizată printr-un raport S/Z (semnal/zgomot) de 3:1 pentru semnalul de date primare cel mai puţin intens; sau
(b)în cazul în care, din motive tehnice, calculul raportului semnal/zgomot nu furnizează rezultate fiabile, punctul cel mai mic de concentraţie de pe o curbă de calibrare care oferă o deviaţie acceptabilă (< = 30 %) şi coerentă (măsurată cel puţin la începutul şi la sfârşitul unei serii analitice de eşantioane) de la factorul de răspuns relativ mediu calculat pentru toate punctele de pe curba de calibrare pentru fiecare serie de eşantioane. Limita de cuantificare (LOQ) se calculează de la cel mai mic punct de concentraţie ţinând seama de recuperarea etaloanelor interne şi de prelevarea de eşantioane.
Metodele bioanalitice de screening nu vor da rezultate la nivel de congener, ci doar o indicaţie (10) a nivelului TEQ, exprimată în echivalente bioanalitice (BEQ) pentru a ţine cont de faptul că nu toţi compuşii prezenţi într-un extract de probă care produce un răspuns în cadrul testului pot să îndeplinească toate cerinţele principiului TEQ.
(10)Metodele bioanalitice nu sunt specifice pentru acei congeneri incluşi în schema TEF. În extractul de probă pot fi prezenţi alţi compuşi AhR-activi înrudiţi structural care contribuie la răspunsul global. Prin urmare, rezultatele bioanalitice nu pot fi o estimare, ci mai degrabă un indiciu al nivelului TEQ din probă.
Metodele de screening şi de confirmare pot fi aplicate pentru controlul unei anumite matrice numai dacă metodele sunt suficient de sensibile pentru a detecta în mod fiabil niveluri la pragul de acţiune sau nivelul maxim.
3.Cerinţe de asigurare a calităţii

3.1.

Se iau măsuri pentru a se evita contaminarea încrucişată la fiecare etapă a procedurii de eşantionare şi de analiză.

3.2.

Eşantioanele se depozitează şi se transportă în recipiente de sticlă, aluminiu, polipropilenă sau polietilenă corespunzătoare pentru depozitare, fără nicio influenţă asupra nivelurilor de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor din probe. Urmele de praf de hârtie se îndepărtează de pe recipientul pentru probe.

3.3.

Depozitarea şi transportul probelor se efectuează astfel încât să se păstreze integritatea probei de furaj.

3.4.

În măsura în care acest lucru este relevant, fiecare probă de laborator se mărunţeşte şi se amestecă cu grijă printr-un procedeu care s-a dovedit că realizează o omogenizare completă (de exemplu, proba mărunţită astfel încât să treacă printr-o sită cu ochiuri de 1 mm). Probele se usucă înainte de mărunţire, dacă conţinutul de umiditate este prea mare.

3.5.

Se efectuează controlul reactivilor, al sticlăriei şi al echipamentului pentru o posibilă influenţă a rezultatelor pe bază de TEQ sau BEQ.

3.6.

Se realizează o analiză-martor parcurgând întreaga procedură analitică, însă fără probă.

3.7.

Pentru metodele bioanalitice, toată sticlăria şi toţi solvenţii utilizaţi în cadrul analizei sunt testaţi pentru a se verifica dacă sunt liberi de compuşi care perturbă detectarea compuşilor-ţintă în intervalul de lucru. Sticlăria se clăteşte cu solvenţi sau se încălzeşte la temperaturi adecvate pentru a elimina urmele de PCDD-uri/PCDF-uri, de compuşi de tipul dioxinelor şi de compuşi interferenţi de pe suprafaţa acesteia.

3.8.

Cantitatea de probă utilizată pentru extracţie este suficientă pentru a îndeplini cerinţele referitoare la un interval de lucru suficient de redus, inclusiv concentraţiile nivelurilor maxime sau pragul de acţiune.

3.9.

Procedurile specifice de pregătire a probelor utilizate pentru produsele avute în vedere urmează orientări recunoscute la nivel internaţional, şi anume EN ISO 6498.

4.Cerinţe pentru laboratoare

4.1.

În conformitate cu dispoziţiile Regulamentului (UE) 2017/625, laboratoarele sunt acreditate de un organism recunoscut care funcţionează în conformitate cu Ghidul ISO/IEC 58, pentru a se asigura aplicarea de către acestea a procedurilor de asigurare a calităţii analizelor. Laboratoarele sunt acreditate conform standardului EN ISO/IEC 17025. Trebuie respectate principiile descrise în Orientările tehnice pentru estimarea incertitudinii de măsurare şi a limitelor de cuantificare pentru analiza PCDD/F-urilor şi a PCB-urilor (11).

(11) «Ghidul privind incertitudinea de măsurare pentru laboratoarele care efectuează analize de PCDD/F şi PCB utilizând spectrometria de masă prin metoda de diluţie a izotopilor» (https://food.ec.europa.eu/system/files/2017-05/animal-feed-guidance_document_pcdd-f_pcb_en.pdf), «Ghidul privind estimarea LDD şi LDC pentru măsurătorile în domeniul contaminanţilor din produsele alimentare şi din hrana pentru animale» (https://food.ec.europa.eu/system/files/2016-10/cs_contaminants_sampling_analysis-report_2004_en.pdf).

4.2.

Competenţa laboratoarelor se demonstrează prin participarea continuă şi cu succes la studiile interlaboratoare pentru determinarea PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor în matricele de furaje şi în intervalele de concentraţii relevante.

4.3.

Laboratoarele care aplică metode de screening pentru controlul de rutină al probelor stabilesc o cooperare strânsă cu laboratoarele care aplică metoda de confirmare, atât pentru controlul calităţii, cât şi pentru confirmarea rezultatului analitic al probelor suspectate.

5.Cerinţe de bază privind procedura analitică pentru dioxine (PCDD/F-uri) şi PCB-uri de tipul dioxinelor
5.1.Intervalul de lucru la niveluri mici şi limitele de cuantificare
Pentru PCDD-uri/PCDF-uri, cantităţile detectabile sunt de ordinul femtogramelor (10-15g), extremitatea superioară a intervalului, din cauza toxicităţii extreme a unora dintre aceşti compuşi. Pentru majoritatea congenerilor PCB, limita de cuantificare de ordinul nanogramelor (10-9 g) este deja suficientă. Pentru măsurarea congenerilor PCB-urilor de tipul dioxinelor mai toxici (în special a congenerilor substituiţi non-orto), extremitatea inferioară a intervalului de lucru ajunge la niveluri mici de ordinul picogramelor (10-12g). Pentru toţi ceilalţi congeneri PCB, o limită de cuantificare de ordinul nanogramelor (10-9 g) este suficientă.
5.2.Selectivitate (specificitate) mare

5.2.1.

Este necesar să se facă o distincţie între PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor şi o multitudine de alţi compuşi coextraşi şi care pot să interfereze, prezenţi în concentraţii cu până la câteva ordine de mărime mai mari decât cele ale analiţilor de interes. Pentru metodele GC-MS, este necesar să se facă deosebirea între diferiţii congeneri, cum ar fi între cei toxici (de exemplu, cele 17 PCDD-uri/PCDF-uri substituite la poziţiile 2,3,7,8 şi cele 12 PCB-uri de tipul dioxinelor) şi alţi congeneri.

5.2.2.

Metodele bioanalitice sunt capabile să detecteze compuşii-ţintă ca sumă de PCDD/F-uri şi/sau PCB-uri de tipul dioxinelor. Curăţarea probelor are drept scop eliminarea compuşilor care duc la rezultate fals neconforme sau a compuşilor care pot atenua răspunsul, ducând la rezultate fals conforme.

5.3.Acurateţe ridicată (autenticitate şi precizie, recuperare aparentă a biotestului)

5.3.1.

Pentru metodele GC-MS, determinarea oferă o estimare valabilă a concentraţiei reale dintr-o probă. Acurateţea ridicată este necesară pentru a se evita respingerea rezultatului analizei unei probe din cauza fiabilităţii reduse a nivelului TEQ determinat. Acurateţea se exprimă prin autenticitate (diferenţa dintre valoarea medie măsurată pentru un analit pe un material certificat şi valoarea sa certificată, exprimată ca procent din această valoare) şi precizie (deviaţia standard relativă RSDR calculată pe baza rezultatelor generate în condiţii de reproductibilitate).

5.3.2.

Pentru metodele bioanalitice, se determină recuperarea aparentă a biotestului. Recuperarea aparentă a biotestului înseamnă nivelul BEQ calculat pornind de la curba de calibrare a TCDD sau PCB 126 corectată în funcţie de determinarea-martor şi apoi divizată la nivelul TEQ determinat prin metoda de confirmare. Aceasta vizează corectarea factorilor cum ar fi pierderea de PCDD-uri/PCDF-uri şi compuşi de tipul dioxinelor în timpul etapelor de extracţie şi curăţare, coextragerea compuşilor care duc la intensificarea sau atenuarea răspunsului (efecte agoniste şi antagoniste), calitatea de ajustare a curbei sau diferenţele dintre valorile factorilor de echivalenţă toxică (TEF) şi ale potenţei relative (REP). Recuperarea aparentă a biotestului se calculează pornind de la probe de referinţă adecvate cu modele pentru congeneri reprezentativi în jurul nivelului de interes.

5.4.Validarea în intervalul nivelului maxim şi măsuri generale de control al calităţii

5.4.1.

Laboratoarele demonstrează performanţa unei metode în intervalul nivelului maxim, de exemplu, 0,5x, 1x şi 2x nivelul maxim, cu un coeficient de variaţie acceptabil pentru analize repetate, în timpul procedurii de validare şi în timpul analizei de rutină.

5.4.2.

Ca măsuri interne de control al calităţii, se efectuează periodic controale ale martorului, experimente cu îmbogăţire sau analize ale unor probe de control (dacă este posibil, cu material de referinţă certificat). Se înregistrează şi se verifică graficele de control al calităţii pentru controalele martorului, experimentele cu îmbogăţire sau analizele unor probe de control, pentru a se garanta că performanţa analitică este conformă cerinţelor.

5.5.Limita de cuantificare

5.5.1.

Pentru o metodă bioanalitică de screening, stabilirea limitei de cuantificare (LOQ) nu este o cerinţă indispensabilă, însă metoda trebuie să dovedească că se poate face distincţie între valoarea-martor şi valoarea-limită. La furnizarea unui nivel BEQ, se stabileşte un nivel de raportare pentru a se lua decizii legate de probele care prezintă un răspuns sub acest nivel. Nivelul de raportare se dovedeşte a fi diferit de probele-martor din cadrul procedurii cel puţin cu un factor de trei, cu un răspuns inferior intervalului de lucru. Prin urmare, se calculează pornind de la probe care conţin compuşii-ţintă în jurul nivelului minim necesar, şi nu de la un raport S/Z sau un test-martor.

5.5.2.

Limita de cuantificare (LOQ) pentru o metodă de confirmare se situează la aproximativ o cincime din nivelul maxim.

5.6.Criterii analitice
Pentru rezultate fiabile în urma metodelor de confirmare sau de screening, trebuie să fie respectate următoarele criterii în intervalul nivelului maxim pentru valoarea TEQ sau, respectiv, BEQ, indiferent dacă este determinată ca TEQ total sau BEQ total (ca sumă de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor) sau separat pentru PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor:

Screening cu metode bioanalitice sau fizico-chimice

Metode de confirmare

Rată fals conforme (*1)

(*1) În raport cu nivelurile maxime.

< 5 %

Autenticitate

între -20 % şi +20 %

Repetabilitate (RSDr)

< 20 %

Precizie intermediară (RSDR)

< 25 %

< 15 %

5.7.Cerinţe specifice pentru metodele de screening

5.7.1.

Pot fi folosite pentru screening atât metodele GC-MS, cât şi metodele bioanalitice. Pentru metodele GC-MS, trebuie respectate cerinţele prevăzute la punctul 6. Pentru metodele bioanalitice bazate pe celule, sunt prevăzute cerinţe specifice la punctul 7.

5.7.2.

Laboratoarele care aplică metode de screening pentru controlul de rutină al probelor stabilesc o cooperare strânsă cu laboratoarele care aplică metoda de confirmare.

5.7.3.

Performanţa metodei de screening trebuie verificată în timpul analizei de rutină, printr-un control al calităţii analizelor şi printr-o validare continuă a metodei. Trebuie să existe un program continuu pentru controlul rezultatelor conforme.

5.7.4.

Verificarea posibilei suprimări a răspunsului celular şi a citotoxicităţii:

20 % din extractele de probe sunt măsurate în screeningul de rutină cu şi fără 2,3,7,8-TCDD care se adaugă în funcţie de nivelul maxim sau de pragul de acţiune, pentru a verifica dacă răspunsul este, eventual, suprimat de către substanţele interferente prezente în extractul de probă. Concentraţia măsurată a probei îmbogăţite se compară cu suma concentraţiei extractului neîmbogăţit, plus concentraţia cu îmbogăţire. Dacă această concentraţie măsurată este cu peste 25 % mai mică decât concentraţia (suma) calculată, aceasta indică posibilitatea eliminării semnalului, iar proba respectivă este supusă analizei de confirmare prin GC-HRMS. Rezultatele sunt monitorizate prin grafice de control al calităţii.

5.7.5.

Controlul calităţii probelor conforme:

Aproximativ 2-10 % din probele conforme, în funcţie de matricea probei şi de experienţa laboratorului, sunt confirmate prin GC-HRMS.

5.7.6.

Determinarea ratelor rezultatelor fals conforme pornind de la datele de control al calităţii:

Se determină rata rezultatelor fals conforme care rezultă din screeningul probelor sub şi peste nivelul maxim sau pragul de acţiune. Ratele rezultatelor fals conforme reale trebuie să fie sub 5 %. Atunci când, în urma controlului de calitate al probelor conforme, sunt disponibile cel puţin 20 de rezultate confirmate per matrice/grup de matrice, concluziile privind rata rezultatelor fals conforme trebuie să fie desprinse din această bază de date. Rezultatele probelor analizate prin intermediul testărilor interlaboratoare sau în timpul incidentelor de contaminare, care acoperă un interval de concentraţii de până la, de exemplu, 2 × nivelul maxim (NM), pot fi, de asemenea, incluse în cele cel puţin 20 de rezultate pentru evaluarea ratei rezultatelor fals conforme. Probele acoperă cele mai frecvente modele pentru congeneri, reprezentând diverse surse.

Deşi testele de screening au, preferabil, ca scop detectarea probelor care depăşesc pragul de acţiune, criteriul de determinare a ratelor rezultatelor fals conforme este nivelul maxim, ţinând seama de incertitudinea de măsurare extinsă a metodei de confirmare.

5.7.7.

Probele potenţial neconforme care rezultă în urma screeningului se verifică întotdeauna printr-o nouă analiză completă a probei originale printr-o metodă analitică de confirmare. Aceste probe pot fi, de asemenea, folosite pentru a evalua rata rezultatelor fals neconforme. Pentru metodele de screening, rata rezultatelor fals neconforme este procentul rezultatelor confirmate ca fiind conforme în urma analizei de confirmare, în timp ce, în screeningul anterior, s-a declarat în legătură cu proba că este potenţial neconformă. Evaluarea avantajelor metodei de screening se bazează pe compararea probelor fals neconforme cu numărul total de probe verificate. Această rată este suficient de scăzută pentru a face ca utilizarea unui instrument de screening să fie avantajoasă.

5.7.8.

În condiţii de validare, metodele bioanalitice oferă o indicaţie valabilă a nivelului TEQ, calculat şi exprimat ca BEQ.

Şi pentru metodele bioanalitice efectuate în condiţii de repetabilitate, valoarea RSDr intralaborator ar fi, în general, mai mică decât în condiţii de reproductibilitate (RSDR)

6.Cerinţe specifice privind metodele GC-MS care trebuie respectate în scop de screening sau de confirmare
6.1.Diferenţe acceptabile între estimarea superioară şi estimarea inferioară a rezultatelor OMS-TEQ
Diferenţa dintre nivelul estimării superioare şi cel al estimării inferioare nu depăşeşte 20 % pentru confirmarea depăşirii nivelului maxim sau în cazul în care sunt necesare praguri de acţiune.
6.2.Controlul recuperărilor

6.2.1.

La începutul metodei de analiză, de exemplu, înaintea fazei de extracţie, trebuie să se adauge etaloane interne de PCDD-uri/PCDF-uri substituite cu clor la poziţiile 2,3,7,8 şi marcate cu 13C şi etaloane interne de PCB-uri de tipul dioxinelor marcate cu 13C, pentru a se valida procedura analitică. Trebuie adăugat cel puţin un congener pentru fiecare din grupele omoloage tetra- până la octo-clorurate de PCDD/F-uri şi cel puţin un congener pentru fiecare dintre grupele omoloage de PCB-uri de tipul dioxinelor (alternativ, cel puţin un congener pentru fiecare funcţie de înregistrare a ionului selecţionat prin spectrometrie de masă utilizat pentru monitorizarea PCDD/F-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor). În cazul metodelor de confirmare, trebuie utilizate toate cele 17 etaloane interne de PCDD-uri/PCDF-uri substituite la poziţiile 2,3,7,8, marcate cu 13C şi toate cele 12 etaloane interne de PCB-uri de tipul dioxinelor marcate cu 13C.

6.2.2.

De asemenea, se determină factorii de răspuns relativ pentru acei congeneri pentru care nu se adaugă niciun analog marcat cu 13C, utilizându-se soluţii de calibrare corespunzătoare.

6.2.3.

Pentru furajele de origine vegetală şi furajele de origine animală care conţin mai puţin de 10 % grăsime, este obligatorie adăugarea etaloanelor interne înainte de extracţie. Pentru furajele de origine animală care conţin mai mult de 10 % grăsime, etaloanele interne se pot adăuga fie înaintea extracţiei, fie după extracţia grăsimii. Se procedează la o validare corespunzătoare a eficacităţii extracţiei, în funcţie de etapa în care se introduc etaloanele interne.

6.2.4.

Înaintea analizei GC-MS, trebuie să se adauge unul sau două etaloane de recuperare (surogat).

6.2.5.

Este necesar controlul recuperării. Pentru metodele de confirmare, recuperările de etaloane interne individuale trebuie să se situeze în intervalul 60-120 %. Se acceptă şi recuperări inferioare sau superioare pentru congeneri individuali, în special pentru unele p-dibenzodioxine şi unii dibenzofurani hepta- şi octo-cloruraţi, atât timp cât contribuţia acestora la valoarea TEQ nu depăşeşte 10 % din valoarea TEQ totală (bazată pe suma de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor). Pentru metodele de screening prin GC-MS, recuperările trebuie să se situeze în intervalul 30-140 %.

6.3.Eliminarea substanţelor interferente
- Separarea PCDD/PCDF-urilor de compuşii cloruraţi interferenţi, cum sunt PCB-urile care nu sunt de tipul dioxinelor şi bifenileterii cloruraţi, se realizează prin tehnici cromatografice adecvate (de preferinţă pe coloană de florisil, alumină şi/sau cărbune).
- Separarea izomerilor prin cromatografie în fază gazoasă este < 25 % de la pic la pic între 1,2,3,4,7,8-HxCDF şi 1,2,3,6,7,8-HxCDF.
6.4.Calibrarea cu curba standard
Intervalul curbei de calibrare trebuie să acopere intervalul relevant de niveluri maxime sau praguri de acţiune.
6.5.Criterii specifice pentru metodele de confirmare
- Pentru GC-HRMS:
În HRMS, rezoluţia caracteristică trebuie să fie mai mare sau egală cu 10 000 pentru întregul interval al maselor, cu o concavitate de 10 %.
Îndeplinirea criteriilor de identificare şi confirmare suplimentare, astfel cum sunt descrise în standardele recunoscute la nivel internaţional, de exemplu, în standardul EN 16215:2012 (Hrană pentru animale - Determinarea conţinutului de dioxină, a PCB-urilor de tip dioxină şi a indicatorilor PCB prin GC-HRMS) şi/sau în metodele EPA 1613 şi 1668 revizuite.
- Pentru GC-MS/MS:
Monitorizarea a cel puţin doi ioni precursori specifici, fiecăruia corespunzându-i un anumit ion produs, pentru toţi analiţii etichetaţi şi neetichetaţi din domeniul de aplicare al analizei.
Toleranţa maximă admisă a intensităţilor relative ale ionilor de ± 15 % pentru ionii de tranziţie selecţionaţi produşi în comparaţie cu valorile calculate sau măsurate (medie din standardele de calibrare), aplicând condiţii MS/MS identice, în special energia de coliziune şi presiunea gazului de coliziune, pentru fiecare tranziţie a unui analit.
Rezoluţia fiecărui cuadrupol trebuie să fie stabilită ca fiind egală sau mai mare decât rezoluţia unităţii de masă (rezoluţia unităţii de masă: rezoluţie suficientă pentru a separa două vârfuri ale unei unităţi de masă) în scopul de a reduce la minimum interferenţele posibile cu analiţii de interes.
Îndeplinirea criteriilor suplimentare, astfel cum sunt descrise în standardele recunoscute la nivel internaţional, de exemplu, în standardul EN 16215:2012 (Hrană pentru animale - Determinarea conţinutului de dioxină, a PCB-urilor de tip dioxină şi a indicatorilor PCB prin GC-HRMS) şi/sau în metodele EPA 1613 şi 1668 revizuite, cu excepţia obligaţiei de a utiliza GC-HRMS.
7.Cerinţe specifice pentru metodele bioanalitice
Metodele bioanalitice sunt metode bazate pe utilizarea de principii biologice precum testele pe bază de celule sau de receptori sau imunodozări. Prezentul punct stabileşte cerinţe pentru metodele bioanalitice în general.
O metodă de screening, în principiu, clasifică o probă ca fiind conformă sau suspectată a fi neconformă. În acest scop, nivelul BEQ calculat este comparat cu valoarea-limită (a se vedea punctul 7.3). Probele sub valoarea-limită sunt declarate conforme, probele egale sau peste valoarea-limită sunt suspectate a fi neconforme, necesitând o analiză printr-o metodă de confirmare. În practică, un nivel BEQ echivalent cu două treimi din nivelul maxim poate servi drept valoare-limită, cu condiţia să se asigure o rată a rezultatelor fals conforme de sub 5 % şi o rată acceptabilă pentru rezultate fals neconforme. Cu niveluri maxime diferite pentru PCDD-uri/PCDF-uri şi pentru suma de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor, verificarea conformităţii probelor fără fracţionare necesită valori-limită corespunzătoare ale biotestelor pentru PCDD-uri/PCDF-uri. Pentru verificarea probelor care depăşesc pragurile de acţiune, un procentaj corespunzător al pragului de acţiune respectiv este considerat adecvat ca valoare-limită.
Dacă un nivel indicativ este exprimat în BEQ, rezultatele probelor trebuie să fie în intervalul de lucru şi să depăşească limita de raportare (a se vedea punctele 7.1.1 şi 7.1.6).
7.1.Evaluarea răspunsului la test
7.1.1.Condiţii generale
- Atunci când se calculează concentraţiile pornind de la o curbă de calibrare a TCDD, valorile la extremităţile superioare ale curbei vor prezenta o variaţie importantă [coeficient de variaţie ridicat (CV)]. Intervalul de lucru este aria în care acest CV este mai mic de 15 %. Extremitatea inferioară a intervalului de lucru (limita de raportare) se fixează cel puţin cu un factor de trei peste martorii procedurii. Extremitatea superioară a intervalului de lucru este, de obicei, reprezentată de valoarea EC70 (70 % din concentraţia maximă efectivă), dar mai scăzută dacă CV este mai mare de 15 % în acest interval. Intervalul de lucru se stabileşte în timpul validării. Valorile-limită (a se vedea punctul 7.3) se situează în intervalul de lucru.
- Soluţiile etalon şi extractele de probe trebuie să fie testate în triplicat sau cel puţin în duplicat. Atunci când se utilizează duplicate, o soluţie etalon sau un extract de control testată (testat) în patru până la şase godeuri repartizate pe placă trebuie să producă un răspuns sau o concentraţie (posibilă doar în intervalul de lucru) pe baza unui CV < 15 %.
7.1.2.Calibrarea
7.1.2.1.Calibrarea cu curba standard
- Nivelurile din probe se estimează prin compararea răspunsului la test cu o curbă de calibrare a TCDD (sau a PCB 126 sau a unui amestec etalon de PCDD/PCDF/PCB de tipul dioxinelor) pentru a se calcula nivelul BEQ din extract şi, prin urmare, din probă.
- Curbele de calibrare conţin între opt şi 12 concentraţii (cel puţin în duplicate), cu concentraţii suficiente în partea inferioară a curbei (intervalul de lucru). Se acordă atenţie specială calităţii ajustării curbei în intervalul de lucru. Ca atare, valoarea R2are valoare redusă sau nicio valoare în estimarea calităţii ajustării în regresia nelineară. Se ajunge la o ajustare mai bună prin reducerea la minimum a diferenţei între nivelurile calculate şi cele observate în intervalul de lucru al curbei, de exemplu prin reducerea la minimum a sumei pătratelor rezidualelor.
- Nivelul estimat din extractul de probă este corectat ulterior pentru nivelul BEQ calculat pentru o probă-martor de matrice/solvent (pentru a se ţine cont de impurităţile din solvenţi şi din substanţele chimice utilizate) şi recuperarea aparentă (calculată pornind de la nivelul BEQ al probelor de referinţă adecvate cu modele reprezentative pentru congeneri în jurul nivelului maxim sau al pragului de acţiune). Pentru a efectua o corecţie în funcţie de recuperare, recuperarea aparentă se situează în intervalul necesar (a se vedea punctul 7.1.4). Probele de referinţă utilizate pentru corecţia în funcţie de recuperare sunt în conformitate cu cerinţele prevăzute la punctul 7.2.
7.1.2.2.Calibrarea cu eşantioane de referinţă
Alternativ, poate fi utilizată o curbă de calibrare realizată pe baza a cel puţin patru eşantioane de referinţă (a se vedea punctul 7.2.4): poate fi utilizată un eşantion martor de matrice, plus trei eşantioane de referinţă de 0,5x, 1x şi 2x nivelul maxim sau pragul de acţiune, eliminând necesitatea de a corecta în funcţie de martor şi de recuperare. În acest caz, răspunsul la test echivalent cu două treimi din nivelul maxim (a se vedea punctul 7.3) poate fi calculat direct din aceste probe şi utilizat ca valoare-limită. Pentru verificarea probelor care depăşesc pragurile de acţiune, un procentaj corespunzător al acestor praguri de acţiune este considerat adecvat ca valoare-limită.
7.1.3.Determinarea separată a PCDD/F-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor
Extractele pot fi divizate în fracţiuni care conţin PCDD/F-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor, permiţând o indicare separată a nivelurilor TEQ pentru PCDD/F-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor (în BEQ). Se utilizează, de preferinţă, o curbă de calibrare standard a PCB 126 pentru evaluarea rezultatelor fracţiunii care conţine PCB-uri de tipul dioxinelor.
7.1.4.Recuperări aparente ale biotestului
«Recuperarea aparentă a biotestului» se calculează pornind de la probe de referinţă adecvate cu modele reprezentative pentru congeneri în jurul nivelului maxim sau al pragului de acţiune şi exprimate ca procentaj al nivelului BEQ în comparaţie cu nivelul TEQ. În funcţie de tipul de test şi de TEF (12) utilizaţi, diferenţele între factorii TEF şi REP pentru PCB-urile de tipul dioxinelor pot cauza recuperări aparente reduse pentru PCB-urile de tipul dioxinelor în comparaţie cu PCDD-uri/PCDF-uri. Prin urmare, în cazul în care se efectuează o determinare separată a PCDD/F-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor, recuperările aparente ale testului biologic sunt: pentru PCB-uri de tipul dioxinelor, între 20 % şi 60 %, pentru PCDD-uri/PCDF-uri, între 50 % şi 130 % (intervalele se aplică pentru curba de calibrare a TCDD). Deoarece contribuţia PCB-urilor de tipul dioxinelor la suma de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor poate varia între diferite matrice şi probe, recuperările aparente ale biotestului pentru suma de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor reflectă aceste intervale şi se situează între 30 % şi 130 %. Orice implicare a valorilor TEF revizuite în mod substanţial pentru legislaţia Uniunii pentru PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor necesită revizuirea acestor intervale.
(12)Cerinţele actuale se bazează pe TEF publicaţi în: M. Van den Berg et al, Toxicol Sci 93 (2), 223-241 (2006).
7.1.5.Controlul recuperărilor pentru curăţare
Pierderea de compuşi în timpul curăţării se verifică în timpul validării. Un eşantion martor îmbogăţit cu un amestec de congeneri diferiţi face obiectul curăţării (n = 3 cel puţin), iar recuperarea şi variabilitatea sunt verificate printr-o metodă de confirmare. Recuperarea se situează între 60 % şi 120 %, mai ales pentru congeneri care contribuie cu mai mult de 10 % la nivelul TEQ în diverse amestecuri.
7.1.6.Limita de raportare
Atunci când se raportează nivelurile BEQ, se determină o limită de raportare pornind de la probele de matrice relevante care implică modele tipice pentru congeneri, dar nu pornind de la curba de calibrare a standardelor, din cauza preciziei reduse în intervalul inferior al curbei. Se iau în considerare efectele extracţiei şi ale curăţării. Limita de raportare se fixează cel puţin cu un factor de trei peste martorii procedurii.
7.2.Utilizarea eşantioanelor de referinţă

7.2.1.

Eşantioanele de referinţă reprezintă matricea de eşantionare, modelele pentru congeneri şi intervalele de concentraţie pentru PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor în jurul nivelului maxim sau al pragului de acţiune.

7.2.2.

În fiecare serie de teste, se includ o matrice martor şi, în cazul în care acest lucru nu este posibil, un eşantion martor din cadrul procedurii, precum şi un eşantion de referinţă la nivelul maxim sau la pragul de acţiune. Aceste eşantioane se supun extracţiei şi testării în acelaşi timp şi în condiţii identice. Eşantionul de referinţă prezintă un răspuns cu mult mai mare în comparaţie cu eşantionul martor, asigurând astfel conformitatea testului. Aceste eşantioane pot fi utilizate pentru corecţiile în funcţie de martor şi recuperare.

7.2.3.

Probele de referinţă alese pentru a efectua o corecţie în funcţie de recuperare sunt reprezentative pentru probele de testare, în sensul că modelele pentru congeneri nu pot conduce la o subestimare a nivelurilor.

7.2.4.

Se pot include probe de referinţă suplimentare de 0,5 × şi 2 × nivelul maxim sau pragul de acţiune, de exemplu, pentru a se demonstra eficacitatea testului în intervalul de interes, pentru controlul nivelului maxim sau al pragului de acţiune. Combinate, aceste probe pot fi utilizate pentru calcularea nivelurilor BEQ în probele de testare (a se vedea punctul 7.1.2.2).

7.3.Determinarea valorilor-limită
Se stabileşte relaţia dintre rezultatele bioanalitice în BEQ şi rezultatele în urma metodei de confirmare în TEQ [de exemplu, prin experimente de calibrare în raport cu matricea, care implică probe de referinţă îmbogăţite la 0, 0,5x, 1x şi 2x faţă de nivelul maxim (NM), cu şase repetări la fiecare nivel (n = 24)]. Factorii de corecţie (martor şi recuperare) pot fi estimaţi pornind de la această relaţie, însă se verifică în conformitate cu punctul 7.2.2.
Valorile-limită se stabilesc pentru deciziile privind conformitatea probelor cu nivelurile maxime sau pentru controlul pragurilor de acţiune, în cazul în care acest lucru este relevant, cu nivelurile maxime sau pragul de acţiune respective stabilite fie numai pentru PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor, fie pentru suma de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor. Acestea sunt reprezentate prin extremitatea inferioară a distribuţiei rezultatelor bioanalitice (corectate în funcţie de martor şi recuperare) care corespund limitei de decizie a metodei de confirmare bazată pe un nivel de încredere de 95 %, ceea ce înseamnă o rată a rezultatelor fals conforme < 5 %, şi pe o valoare a RSDR < 25 %. Limita de decizie a metodei de confirmare este nivelul maxim, ţinând seama de incertitudinea de măsurare extinsă.
Valoarea-limită (în BEQ) poate fi calculată în conformitate cu una dintre abordările descrise la punctele 7.3.1, 7.3.2 şi 7.3.3 (a se vedea figura 1).

7.3.1.

Utilizarea sectorului inferior al intervalului de predicţie de 95 % la limita de decizie aferentă metodei de confirmare

unde:

BEQDL

BEQ corespunzând limitei de decizie a metodei de confirmare este nivelul maxim, ţinând seama de incertitudinea de măsurare extinsă

sy,x

deviaţia standard reziduală

t ,f = m-2

factorul student ( = 5 %, f = grade de libertate, asimetric)

m

m numărul total de puncte de calibrare (indice j)

n

n numărul de repetări la fiecare nivel

xi

concentraţia probei (în TEQ) a punctului de calibrare i determinat printr-o metodă de confirmare

medie a concentraţiilor (în TEQ) ale tuturor probelor de calibrare

parametrul sumei pătratelor, i = indice pentru punctul de calibrare i

7.3.2.

Calcul pornind de la rezultatele bioanalitice (corectate în funcţie de martor şi recuperare) ale analizelor multiple ale probelor (n> = 6) contaminate la limita de decizie a metodei de confirmare, ca extremitate inferioară a distribuţiei datelor la valoarea medie BEQ corespunzătoare:

unde:

SDR

deviaţia standard a rezultatelor biotestului la BEQDL, măsurată în condiţii de reproductibilitate intralaborator

7.3.3.

Calcul ca valoare medie a rezultatelor bioanalitice (în BEQ, corectată în funcţie de martor şi recuperare) pornind de la analiza multiplă a probelor (n > = 6) contaminate la două treimi din nivelul maxim sau pragul de acţiune, având drept bază observaţia că acest nivel va fi în jurul valorii-limită determinate la punctul 7.3.1 sau la punctul 7.3.2:

Calcul al valorilor-limită, bazat pe un nivel de încredere de 95 %, implicând o rată a rezultatelor fals conforme < 5 %, şi pe o valoare a RSDR < 25 %:

1. pornind de la spectrul inferior al intervalului de predicţie de 95 % la limita de decizie a metodei de confirmare.

2. pornind de la analiza multiplă a probelor (n > = 6) contaminate la limita de decizie a metodei de confirmare ca extremitate inferioară a distribuţiei datelor (reprezentată în Figură 1 printr-o curbă sub formă de clopot) la valoarea medie BEQ corespunzătoare.

Figura 1

7.3.4.

Restricţii ale valorilor-limită

Valorile-limită bazate pe BEQ, calculate pornind de la valoarea RSDR obţinută în cursul validării utilizând un număr limitat de probe cu modele pentru matrice/congeneri diferite pot fi mai mari decât nivelurile maxime sau pragurile de acţiune bazate pe TEQ datorită unei precizii mai mari decât cea realizabilă în analizele de rutină atunci când trebuie controlat un spectru necunoscut de posibile modele pentru congeneri. În astfel de cazuri, valorile-limită se calculează pornind de la RSDR = 25 % sau se preferă două treimi din nivelul maxim sau pragul de acţiune.

7.4.Caracteristici de performanţă

7.4.1.

Având în vedere faptul că nu se pot utiliza etaloane interne în metodele bioanalitice, testele cu privire la repetabilitatea metodelor bioanalitice se efectuează pentru obţinerea unor informaţii privind deviaţia standard în cadrul unei serii de teste şi între serii de teste. Repetabilitatea trebuie să fie sub 20 %, iar reproductibilitatea intralaborator sub 25 %. Aceasta se bazează pe nivelurile calculate în BEQ după corecţia în funcţie de martor şi recuperare.

7.4.2.

Ca parte din procesul de validare, testul trebuie să permită stabilirea diferenţei între o probă-martor şi un nivel la valoarea-limită, permiţând identificarea probelor peste valoarea-limită corespunzătoare (a se vedea punctul 7.1.2).

7.4.3.

Se definesc compuşii-ţintă, interferenţele potenţiale şi nivelurile maxime tolerabile ale martorului.

7.4.4.

Deviaţia standard procentuală a răspunsului sau a concentraţiei calculate pornind de la răspuns (posibilă numai în intervalul de lucru) a unei determinări triple a unui extract de probă nu poate fi mai mare de 15 %.

7.4.5.

Rezultatele necorectate ale probei (probelor) de referinţă exprimată (exprimate) în BEQ (martor şi nivelul maxim sau pragul de acţiune) sunt utilizate pentru evaluarea performanţei metodei bioanalitice pe o perioadă de timp constantă.

7.4.6.

Graficele de control al calităţii pentru martorii procedurii şi fiecare tip de probă de referinţă se înregistrează şi se verifică pentru a se garanta că performanţa analitică este în conformitate cu cerinţele, în special pentru martorii procedurii cu privire la diferenţa minimă solicitată la limita inferioară a intervalului de lucru şi pentru probele de referinţă cu privire la reproductibilitatea intralaborator. Martorii procedurii sunt controlaţi într-un mod care să evite rezultatele fals conforme atunci când se scad.

7.4.7.

Rezultatele metodelor de confirmare ale probelor suspectate şi a 2-10 % din probele conforme (minimum 20 de probe pentru fiecare matrice) sunt colectate şi folosite pentru a evalua performanţa metodei de screening şi relaţia între BEQ şi TEQ. Această bază de date poate fi utilizată pentru reevaluarea valorilor-limită aplicabile probelor de rutină pentru matricele validate.

7.4.8.

Buna performanţă a metodelor poate fi, de asemenea, demonstrată prin participarea la testările interlaboratoare. Rezultatele probelor analizate în testările interlaboratoare, care acoperă un interval de concentraţii care să ajungă până la, de exemplu, 2x nivelul maxim, pot fi incluse în evaluarea ratei rezultatelor fals conforme, în cazul în care un laborator este în măsură să demonstreze buna sa performanţă. Probele acoperă cele mai frecvente modele pentru congeneri, reprezentând diverse surse.

7.4.9.

În timpul incidentelor, valorile-limită pot fi reevaluate, reflectând matricea specifică şi modelele pentru congeneri doar ale acestui incident.

8.Raportarea rezultatelor
8.1.Metode de confirmare

8.1.1.

Rezultatele analitice includ nivelurile de congeneri individuali ai PCDD/F-urilor şi ai PCB-urilor de tipul dioxinelor şi sunt raportate ca estimare inferioară, estimare superioară şi estimare mediană, pentru a include o cantitate maximă de informaţii în raportarea rezultatelor, ceea ce permite o interpretare a rezultatelor în conformitate cu cerinţe specifice.

8.1.2.

Raportul include metoda utilizată pentru extracţia PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor.

8.1.3.

Recuperările etaloanelor interne individuale sunt disponibile dacă recuperările se situează în afara intervalului menţionat la punctul 6.2.5, dacă se depăşeşte nivelul maxim (în acest caz, recuperările pentru una din cele două analize duplicat), iar în celelalte cazuri, la cerere.

8.1.4.

Întrucât, atunci când se decide conformitatea unei probe, se ţine seama de incertitudinea de măsurare extinsă, acest parametru trebuie pus la dispoziţie. De aceea, rezultatele analitice se raportează ca x +/- U, unde x este rezultatul analitic şi U este incertitudinea de măsurare extinsă, folosind un factor de acoperire 2, care dă un nivel de încredere de aproximativ 95 %. În cazul unei determinări separate a PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor, se utilizează suma incertitudinii extinse estimate a rezultatelor analitice separate ale PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor pentru suma PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor.

8.1.5.

Rezultatele se exprimă în aceleaşi unităţi şi prin cel puţin acelaşi număr de zecimale precum nivelurile maxime prevăzute de Directiva 2002/32/CE.

8.2.Metode bioanalitice de screening

8.2.1.

Rezultatul screeningului se exprimă ca şi «conform» sau «suspectat a fi neconform» («suspectat»).

8.2.2.

În plus, se poate da un rezultat indicativ pentru PCDD-uri/PCDF-uri şi/sau PCB-uri de tipul dioxinelor exprimat în BEQ, şi nu în TEQ.

8.2.3.

Probele cu un răspuns inferior limitei de raportare se exprimă ca fiind «sub limita de raportare». Rezultatul probelor cu un răspuns peste intervalul de lucru se raportează ca «depăşind intervalul de lucru», iar nivelul corespunzător extremităţii superioare a intervalului de lucru se furnizează în BEQ.

8.2.4.

Pentru fiecare tip de matrice a probei, raportul menţionează nivelul maxim sau pragul de acţiune pe care se bazează evaluarea.

8.2.5.

Raportul menţionează tipul de test aplicat, principiul de bază al testului şi tipul de calibrare.

8.2.6.

Raportul include metoda utilizată pentru extracţia PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor.

8.2.7.

În cazul probelor suspectate a fi neconforme, raportul trebuie să includă o notă privind măsurile care urmează a fi adoptate. Concentraţia de PCDD-uri/PCDF-uri şi suma de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor din acele probe cu niveluri ridicate trebuie determinată/confirmată printr-o metodă de confirmare.

8.2.8.

Rezultatele neconforme se raportează numai în urma analizei de confirmare.

8.3.Metode fizico-chimice de screening

8.3.1.

Rezultatul screeningului se exprimă ca şi «conform» sau «suspectat a fi neconform» («suspectat»).

8.3.2.

Pentru fiecare tip de matrice a probei, raportul menţionează nivelul maxim sau pragul de acţiune pe care se bazează evaluarea.

8.3.3.

În plus, nivelurile de congeneri individuali ai PCDD/F-urilor şi/sau ai PCB-urilor de tipul dioxinelor şi valorile TEQ se pot furniza ca estimare inferioară, estimare superioară şi estimare mediană. Rezultatele se exprimă în aceleaşi unităţi şi prin cel puţin acelaşi număr de zecimale precum nivelurile maxime prevăzute de Directiva 2002/32/CE.

8.3.4.

Recuperările etaloanelor interne individuale sunt disponibile dacă recuperările se situează în afara intervalului menţionat la punctul 6.2.5, dacă se depăşeşte nivelul maxim (în acest caz, recuperările pentru una din cele două analize duplicat), iar în celelalte cazuri, la cerere.

8.3.5.

Raportul trebuie să menţioneze metoda GC-MS utilizată.

8.3.6.

Raportul include metoda utilizată pentru extracţia PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor.

8.3.7.

În cazul probelor suspectate a fi neconforme, raportul trebuie să includă o notă privind măsurile care urmează a fi adoptate. Concentraţia de PCDD-uri/PCDF-uri şi suma de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor din acele probe cu niveluri ridicate trebuie determinată/confirmată printr-o metodă de confirmare.

8.3.8.

Neconformitatea poate fi decisă numai în urma analizei de confirmare.

CAPITOLUL III:PREGĂTIREA PROBELOR ŞI CERINŢE PRIVIND METODELE DE ANALIZĂ UTILIZATE PENTRU CONTROLUL OFICIAL AL NIVELURILOR DE PCB-URI CARE NU SUNT DE TIPUL DIOXINELOR DIN FURAJE
1.Domeniu de aplicare
Cerinţele stabilite în prezentul capitol se aplică atunci când furajele sunt analizate pentru controlul oficial al nivelurilor de bifenili policloruraţi care nu sunt de tipul dioxinelor (PCB-uri care nu sunt de tipul dioxinelor), precum şi în ceea ce priveşte pregătirea probelor şi cerinţele analitice pentru alte scopuri de reglementare, care includ controalele oficiale efectuate de operatorii din sectorul hranei pentru animale pentru a asigura conformitatea cu Regulamentul (CE) nr. 183/2005.
2.Metode de detectare aplicabile
Gaz-cromatografie/detectare prin captură de electroni (GC-CDE), GC-LRMS, GC-MS/MS, GC-HRMS sau metode echivalente.
3.Identificarea şi confirmarea analiţilor de interes

3.1.

Timpul de retenţie relativ în raport cu etaloanele interne sau etaloanele de referinţă (deviaţie acceptabilă +/- 0,25 %).

3.2.

Separarea gaz-cromatografică a PCB-urilor care nu sunt de tipul dioxinelor de substanţele interferente, în special PCB-uri co-eluante, mai ales în cazul în care nivelurile probelor sunt în limite legale şi neconformitatea trebuie să se confirme (13).

(13) Congeneri despre care s-a constatat că sunt adesea co-eluanţi sunt, de exemplu, PCB 28/31, PCB 52/69 şi PCB 138/163/164. Pentru GC-MS, este necesar să se ţină seama şi de interferenţele posibile din partea fragmentelor de congeneri mai puternic cloruraţi.

3.3.

Cerinţe pentru tehnici GC-MS

Monitorizarea cel puţin a următorului număr de ioni moleculari sau de ioni caracteristici din clusterul molecular:

(a) doi ioni specifici pentru HRMS;

(b) trei ioni specifici pentru LRMS;

(c) doi ioni precursori specifici, fiecăruia corespunzându-i un anumit ion produs pentru MS-MS.

Toleranţele maxime admisibile pentru raportul valorilor izotopilor pentru fragmentele de masă selecţionate:

Deviaţia relativă a abundenţei izotopice relative pentru fragmentele de masă selecţionate şi valoarea teoretică a abundenţei izotopice sau standardul de calibrare pentru ionul ţintă (ionul monitorizat cu cea mai ridicată abundenţă izotopică) şi ionul (ionii) calificativ(i): ± 15 %.

3.4.

Cerinţe pentru tehnici GC-ECD

Rezultatele care depăşesc nivelul maxim sunt confirmate cu două coloane de GC cu faze staţionare de polaritate diferită.

4.Demonstrarea randamentului metodei
Randamentul metodei se validează în intervalul nivelului maxim (0,5 la 2 x nivelul maxim), cu un coeficient de variaţie acceptabil pentru analiza repetată (a se vedea cerinţele pentru precizia intermediară de la punctul 9).
5.Limita de cuantificare
Suma limitelor de cuantificare (LOQ) (14) ale PCB-urilor care nu sunt de tipul dioxinelor nu trebuie să fie mai mare de o treime din nivelul maxim (15).
(14)Dacă este cazul, se aplică principiile descrise în «Ghidul privind estimarea LOD şi LOQ pentru măsurătorile în domeniul contaminanţilor din produsele alimentare şi din hrana pentru animale» (https://data.europa.eu/doi/10.2787/8931).
(15)Este foarte recomandabil să existe o contribuţie mai scăzută a nivelului reactivului-martor la nivelul unui contaminant dintr-o probă. Este responsabilitatea laboratorului să controleze variaţia nivelurilor reacţiilor-martor, în special în cazul în care nivelurile reacţiilor-martor se scad.
6.Controlul calităţii
Controale ale martorului, analiză a probelor îmbogăţite, probe pentru controlul calităţii, participarea la studii interlaboratoare pe matrice relevante, la intervale regulate.
7.Controlul recuperărilor

7.1.

Se utilizează etaloane interne adecvate cu proprietăţi fizico-chimice comparabile cu cele ale analiţilor de interes.

7.2.

Adăugarea de etaloane interne:

adăugare la produse (înaintea procesului de extracţie şi de curăţare).

7.3.

Cerinţe privind metodele care utilizează toţi cei şase congeneri ai PCB-urilor care nu sunt de tipul dioxinelor marcaţi cu un izotop:

(a) rezultatele sunt corectate pentru recuperările etaloanelor interne;

(b) recuperările etaloanelor interne marcate cu un izotop sunt între 60 şi 120 %;

(c) recuperările inferioare sau superioare pentru congenerii individuali cu o contribuţie la suma de şase PCB-uri care nu sunt de tipul dioxinelor mai mică de 10 % sunt acceptabile.

7.4.

Cerinţe privind metodele care nu utilizează toate cele şase etaloane interne marcate cu un izotop sau alte etaloane interne:

(a) recuperarea etalonului (etaloanelor) intern(e) se controlează pentru fiecare probă;

(b) recuperările etalonului (etaloanelor) intern(e) sunt între 60 % şi 120 %;

(c) rezultatele sunt corectate pentru recuperările etaloanelor interne.

7.5.

Recuperările congenerilor nemarcaţi se verifică prin probe îmbogăţite sau probe pentru controlul calităţii cu concentraţii în intervalul nivelului maxim. Recuperările acestor congeneri se consideră acceptabile, în cazul în care sunt între 60 şi 120 %.

8.Cerinţe pentru laboratoare
În conformitate cu dispoziţiile Regulamentului (UE) 2017/625, laboratoarele sunt acreditate de un organism recunoscut care funcţionează în conformitate cu Ghidul ISO/IEC 58, pentru a se asigura aplicarea de către acestea a procedurilor de asigurare a calităţii analizelor. Laboratoarele sunt acreditate conform standardului EN ISO/IEC 17025. În plus, trebuie respectate principiile descrise în Orientările tehnice pentru estimarea incertitudinii de măsurare şi a limitelor de cuantificare pentru analiza PCB-urilor (16).
(16)A se vedea nota de subsol 37.
9.Caracteristici de performanţă: criterii pentru suma celor şase PCB-uri care nu sunt de tipul dioxinelor la nivelul maxim

Spectrometrie de masă prin metoda de diluţie a izotopilor (*2)

(*2) Utilizarea tuturor celor şase analogi marcaţi 13C, conform standardelor interne.

Alte tehnici

Autenticitate

între -20 % şi +20 %

între -30 % şi +30 %

Precizie intermediară (RSD %)

< = 15 %

< = 20 %

Diferenţa dintre estimarea superioară şi estimarea inferioară a calculului

< = 20 %

< = 20 %

10.Raportarea rezultatelor

10.1.

Rezultatele analitice includ nivelurile de congeneri individuali ai PCB-urilor individuali care nu sunt de tipul dioxinelor şi suma PCB-urilor congeneri raportaţi ca estimare inferioară, estimare superioară şi estimare mediană, pentru a include o cantitate maximă de informaţii în raportarea rezultatelor, ceea ce permite o interpretare a rezultatelor în conformitate cu cerinţele specifice.

10.2.

Raportul include metoda utilizată pentru extracţia PCB-urilor.

10.3.

Recuperările etaloanelor interne individuale sunt disponibile dacă recuperările se situează în afara intervalului menţionat la punctul 7, dacă se depăşeşte nivelul maxim, iar în celelalte cazuri, la cerere.

10.4.

Întrucât, atunci când se decide conformitatea unei probe, se ţine seama de incertitudinea de măsurare extinsă, acest parametru trebuie pus şi el la dispoziţie. De aceea, rezultatele analitice se raportează ca x +/- U, unde x este rezultatul analitic şi U este incertitudinea de măsurare extinsă, folosind un factor de acoperire 2, care dă un nivel de încredere de aproximativ 95 %.

10.5.

Rezultatele se exprimă în aceleaşi unităţi şi prin cel puţin acelaşi număr de zecimale precum nivelurile maxime prevăzute de Directiva 2002/32/CE.

Partea B:STANDARDE EN
Pentru aplicarea articolului 34 alineatul (2) litera (a) din Regulamentul (UE) 2017/625, sunt relevante următoarele standarde EN:
EN 17194: Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea deoxinivalenolului, aflatoxinei B1, fumonisinei B1 şi B2, T-2 şi H-2, a zearalenonei şi ochratoxinei A în materiile prime furajere şi în furajele combinate prin LC-MS/MS
EN 17270: Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea teobrominei din materiile prime furajere şi din furajele combinate, inclusiv ingredientele derivate din cacao, prin cromatografie lichidă
EN 17504 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză. Determinarea gosipolului din seminţele de bumbac şi furaje prin LC-MS/MS
EN 17362 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea pentaclorfenolului (PCP) în materiile prime furajere şi în furajele combinate prin LCMS/MS
EN 16279: Hrană pentru animale - Determinarea conţinutului de fluorură după tratamentul cu acid clorhidric prin metoda electrozilor sensibili la ioni (ISE)
EN 17053: Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea oligoelementelor, a metalelor grele şi a altor elemente din furaje prin ICP-MS (multimetodă)
EN 15550 Hrană pentru animale - Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea cadmiului şi a plumbului prin spectrometrie de absorbţie atomică în cuptorul cu grafit (GF-AAS) după dizolvare sub presiune
EN 16206 Hrană pentru animale - Determinarea arsenului prin spectrometrie de absorbţie atomică cu generare de hidruri (HGAAS) după dizolvarea cu microunde (dizolvare cu 65 % acid azotic şi 30 % peroxid de hidrogen)
EN 16277 Hrană pentru animale - Determinarea mercurului prin spectrometrie de absorbţie atomică cu vapori reci (CVAAS) după dizolvarea cu microunde (extracţie cu 65 % acid azotic şi 30 % peroxid de hidrogen)
EN 16278 Hrană pentru animale - Determinarea arsenului anorganic prin spectrometrie de absorbţie atomică cu generare de hidruri (HG-AAS) după extracţie cu microunde şi separarea prin extracţie în fază solidă (SPE)
EN 17374 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - Determinarea arsenului anorganic din furaje prin HPLC-ICP-MS cu schimbător de anioni."
ANEXA VI:
"- ANEXA VII: METODA DE CALCUL A VALORII ENERGETICE A FURAJELOR PENTRU PĂSĂRI DE CURTE
1.METODA DE CALCUL ŞI EXPRIMAREA VALORII ENERGETICE
Valoarea energetică a hranei combinate pentru păsările de curte se calculează aplicându-se formula de mai jos, pe baza procentajului anumitor compuşi analitici ai furajelor pentru păsări de curte. Această valoare se exprimă în megajouli (MJ) de energie metabolizabilă (EM), corectată pentru azot, per kilogram de furaje combinate:
MJ/kg de EM = 0,1551 × % proteină brută + 0,3431 × % grăsime brută + 0,1669 × % amidon + 0,1301 × % zaharuri totale (exprimate în zaharoză).
2.TOLERANŢE APLICABILE VALORILOR DECLARATE
În cazul în care la inspecţia oficială se constată o diferenţă (valoare energetică mai mare sau mai mică a furajului) între rezultatul inspecţiei şi valoarea energetică menţionată, se admite o toleranţă de 0,4 MJ/kg EM.
3.EXPRIMAREA REZULTATULUI
Rezultatul obţinut prin aplicarea formulei menţionate se exprimă cu o zecimală.
4.METODE DE EŞANTIONARE ŞI DE ANALIZĂ
Prelevarea eşantionului din furajele combinate şi determinarea conţinutului de compuşi analitici indicaţi în metoda de calcul trebuie să se efectueze în conformitate cu metodele Uniunii de eşantionare şi de analiză pentru controlul oficial al hranei pentru animale.
Se aplică următoarele metode:
- pentru determinarea conţinutului de grăsime brută: procedura B a metodei de determinare a uleiurilor şi a grăsimilor brute, din anexa III partea G;
- pentru determinarea conţinutului de amidon: metoda polarimetrică, din anexa III partea K.
METODA DE CALCUL A VALORII ENERGETICE A MATERIILOR PRIME DESTINATE HRANEI ANIMALELOR ŞI A HRANEI COMBINATE PENTRU PISICI ŞI CÂINI
Valoarea energetică a materiilor prime destinate hranei animalelor şi a hranei combinate pentru pisici şi câini se calculează în conformitate cu EN 16967 Hrană pentru animale: Metode de eşantionare şi de analiză - ecuaţii predictive pentru energia metabolizabilă în materiile prime destinate hranei animalelor şi în hrana combinată pentru animale (hrană pentru animale de companie) pentru pisici şi câini, inclusiv în alimentele dietetice."
Publicat în Jurnalul Oficial seria L din data de 15 martie 2024