Regulamentul 771/29-feb-2024 de modificare a Regulamentului (CE) nr. 152/2009 de stabilire a metodelor de eşantionare şi analiză pentru controlul oficial al furajelor
Jurnalul Oficial seria L
În vigoarePentru Comisie Preşedinta Ursula VON DER LEYEN |
4.2.1.1. | Lopată plată cu margini verticale. |
4.2.1.2. | Sondă de eşantionare cu o fantă lungă sau compartimentată. Dimensiunile sondei de eşantionare trebuie să fie adecvate caracteristicilor lotului eşantionat (adâncimea recipientului, dimensiunile sacului etc.) şi dimensiunilor particulelor furajului. În cazul în care sonda de eşantionare are mai multe orificii, pentru a se asigura faptul că eşantionul este prelevat în diferite locuri de-a lungul sondei, orificiile ar trebui să fie separate prin compartimente sau orificii eşalonate secvenţial. |
Dimensiunea lotului eşantionat | Număr minim de eşantioane elementare |
< = 2,5 tone | 7 |
> 2,5 tone | V (20 înmulţit cu numărul de tone care compun lotul eşantionat) (*1), până la 40 de eşantioane elementare (*1) În cazul în care numărul obţinut este o fracţie, aceasta se rotunjeşte la numărul întreg imediat superior. |
Dimensiunea lotului eşantionat | Număr minim de eşantioane elementare |
< = 2,5 tone sau < = 2 500 de litri | 4 (*2) (*2) În cazul în care nu este posibil să se obţină omogenizarea lichidului, numărul de eşantioane elementare trebuie mărit. |
> 2,5 tone sau > 2 500 de litri | 7 (*2) |
Dimensiunea lotului eşantionat | Număr minim de unităţi din care trebuie prelevat (cel puţin) un eşantion elementar (*3) (*3) În cazul în care deschiderea unei unităţi ar putea afecta analiza (de exemplu, în cazul furajelor umede perisabile), un eşantion elementar va fi reprezentat de unitatea nedeschisă. |
1 -20 de unităţi | 1 unitate (*4) (*4) Pentru unităţile al căror conţinut nu depăşeşte 1 kg sau un litru, un eşantion elementar este reprezentat de conţinutul unei unităţi originale. |
21 -150 de unităţi | 3 unităţi (*4) |
151 -400 de unităţi | 5 unităţi (*4) |
> 400 de unităţi | 1/4 din V (numărul de unităţi care compun lotul eşantionat) (*5), până la 40 de unităţi (*5) În cazul în care numărul obţinut este o fracţie, aceasta se rotunjeşte la numărul întreg imediat superior. |
Dimensiunea lotului eşantionat | Număr minim de eşantioane elementare (*6) (*6) Este recunoscut faptul că în anumite situaţii (de exemplu, furaje însilozate) nu este posibil să se preleveze eşantioanele elementare necesare, fără a cauza daune inacceptabile pentru lot. În astfel de situaţii se poate aplica o metodă alternativă de eşantionare, iar un ghid pentru eşantionarea unor astfel de loturi a fost elaborat şi este disponibil la următorul link https://food.ec.europa.eu/system/files/2016-10/animal-feed-guidance_documents_691_2013_en.pdf |
< = 5 tone | 5 |
> 5 tone | V (5 înmulţit cu numărul de tone care compun lotul eşantionat) (*7), până la 40 de eşantioane elementare (*7) În cazul în care numărul obţinut este o fracţie, aceasta se rotunjeşte la numărul întreg imediat superior. |
Dimensiunea lotului eşantionat | Număr minim de eşantioane elementare |
< 80 de tone | A se vedea cerinţe cantitative de la punctul 5.1. Numărul de eşantioane elementare care trebuie prelevate trebuie să fie înmulţit cu 2,5. |
> = 80 de tone | 100 |
Natura furajelor | Dimensiunea minimă a eşantionului agregat (*8) (*9) (*8) În cazul în furajele eşantionate au o valoare ridicată, se prelevează o cantitate mai mică de eşantion agregat cu condiţia ca aceasta să fie descrisă şi documentată în raportul de eşantionare. (*9) În conformitate cu dispoziţiile Regulamentului (UE) 619/2011 al Comisiei din 24 iunie 2011 de stabilire a metodelor de eşantionare şi analiză pentru controlul oficial al furajelor în vederea detectării materialului modificat genetic pentru care o procedură de autorizare este în curs de desfăşurare sau a cărui autorizare a expirat (JO L 166, 25.6.2011, p. 9), eşantionul agregat pentru controlul prezenţei materialului modificat genetic trebuie să conţină cel puţin 35 000 de seminţe/boabe. Aceasta înseamnă că pentru porumb dimensiunea eşantionului agregat trebuie să fie de cel puţin 10,5 kg şi pentru soia de 7 kg. Pentru alte seminţe şi boabe, precum orzul, meiul, ovăzul, orezul, secara, grâul şi seminţele de rapiţă, dimensiunea eşantionului agregat de 4 kg corespunde unui număr de peste 35 000 de seminţe/boabe. | |
6.1. | Furaje vrac | 4 kg |
6.2. | Furaje ambalate: | 4 kg (*10) (*10) În cazul furajelor ambalate, poate fi posibil, de asemenea, să nu se atingă dimensiunea de 4 kg pentru eşantionul agregat în funcţie de dimensiunea unităţilor individuale. |
6.3. | Furaje lichide sau semilichide: | 4 litri |
6.4. | Blocuri de furaje sau brichete minerale: | |
6.4.1. | cântărind mai mult de 1 kg fiecare | 4 kg |
6.4.2. | cântărind cel mult 1 kg fiecare | greutatea a patru blocuri sau brichete originale |
6.5. | Furaje grosiere/nutreţ | 4 kg (*11) (*11) În cazul în care se referă la furajele grosiere sau la nutreţ cu o densitate specifică redusă (de exemplu, fân, paie), eşantionul agregat trebuie să aibă o dimensiune minimă de 1 kg. |
Furaje solide | 500 g (*12) (*13) (*14) (*15) (*12) În conformitate cu dispoziţiile Regulamentului (UE) nr. 619/2011, eşantionul final pentru controlul prezenţei materialului modificat genetic trebuie să conţină cel puţin 10 000 de seminţe/boabe. Aceasta înseamnă că pentru porumb dimensiunea eşantionului final trebuie să fie de cel puţin 3 000 g şi pentru soia de 2 000 g. Pentru alte seminţe şi boabe, precum orzul, meiul, ovăzul, orezul, secara, grâul şi seminţele de rapiţă, dimensiunea eşantionului final de 500 g corespunde unui număr de peste 10 000 de seminţe/boabe. (*13) În cazul în care dimensiunea eşantionului agregat este semnificativ mai mică de 4 kg sau litri (a se vedea notele de subsol de la punctul 6), se poate preleva, de asemenea, o cantitate mai mică de eşantion final, cu condiţia ca aceasta să fie descrisă şi documentată în raportul de eşantionare. (*14) În cazul eşantionării leguminoaselor, boabelor de cereale şi fructelor nucifere pentru determinarea reziduurilor de pesticide, dimensiunea minimă a eşantionului final este de 1 kg în conformitate cu dispoziţiile Directivei 2002/63/CE a Comisiei din 11 iulie 2002 de stabilire a metodelor comunitare de prelevare de probe pentru controlul oficial al reziduurilor de pesticide de pe şi din produsele de origine vegetală şi animală şi de abrogare a Directivei 79/700/CEE (JO L 187, 16.7.2002, p. 30). (*15) În cazul examinării prin inspecţie vizuală sau prin microscopie, cantitatea eşantionului final pentru examinare este de 1 kg. |
Furaje lichide sau semilichide | 500 ml (*12) |
1. | Dacă nu se specifică altfel în metodele de analiză, toţi reactivii destinaţi analizelor trebuie să fie puri din punct de vedere analitic (p.a.). Pentru analiza prezenţei oligoelementelor, puritatea reactivilor se controlează printr-un test martor. În funcţie de rezultatele obţinute, poate fi necesară o purificare suplimentară a reactivilor. |
2. | Pentru orice operaţie care implică prepararea soluţiilor, diluţia, clătirea sau spălarea, menţionate în metodele de analiză şi pentru care nu există indicaţii referitoare la natura solventului sau diluantului, se utilizează apa. Ca regulă generală, se utilizează apă demineralizată sau distilată. În cazuri speciale, care sunt indicate în metodele de analiză, apa trebuie supusă unor proceduri de purificare speciale. |
3. | Având în vedere dotarea uzuală a laboratoarelor de control, în metodele de analiză se menţionează doar instrumentele şi aparatura speciale sau care au utilizări specifice. Ele trebuie să fie curate, în special în cazul determinării unor cantităţi foarte mici de substanţe. |

Mc | : | conţinutul de umiditate al eşantionului (în %). 100 - Mc reprezintă, prin urmare, conţinutul de substanţă uscată al eşantionului (în %). |
Rana | : | rezultatul analitic măsurat pe eşantion |
R12 % | : | rezultat pentru un furaj cu un conţinut de umiditate de 12 %; a se evalua în raport cu nivelul de reglementare. |
3.1. | Moară construită dintr-un material care nu absoarbe umiditatea, uşor de curăţat, care permite o zdrobire rapidă şi uniformă, fără a provoca încălzire semnificativă, care evită pe cât posibil contactul cu aerul exterior şi care corespunde cerinţelor menţionate la punctele 4.1.1 şi 4.1.2 (de exemplu, micro-mori cu ciocane sau răcite cu apă, mori conice pliabile sau mori cu mecanism lent sau cu discuri dinţate). |
3.2. | Balanţă analitică, cu toleranţă de 1 mg. |
3.3. | Recipiente uscate din metal care nu se corodează sau din sticlă cu capace ermetice; suprafaţa de lucru permite împrăştierea eşantionului până la aproximativ 0,3 g/cm2. |
3.4. | Cuptor izoterm cu încălzire electrică (± 2 °C), ventilat corespunzător şi care asigură o reglare rapidă a temperaturii (1). (1) Pentru uscarea cerealelor, a făinii fine, a tărâţelor şi a făinii grunjoase, cuptorul trebuie să aibă o capacitate termică astfel încât, atunci când este prestabilită la 131 °C, va reveni la temperatura respectivă în mai puţin de 45 de minute după ce în interior a fost plasat un număr maxim de eşantioane de testat, în vederea uscării simultane. Ventilaţia trebuie să fie astfel încât, atunci când un număr cât mai mare de eşantioane de grâu comun pe care le poate conţine sunt supuse uscării timp de două ore, rezultatele diferă de cele obţinute după patru ore de uscare cu mai puţin de 0,15 %. |
3.5. | Cuptor vidat cu încălzire electrică, reglabil, dotat cu o pompă de ulei şi cu: fie un mecanism de introducere a aerului fierbinte uscat, fie un agent de desicare (de exemplu, oxid de calciu). |
3.6. | Desicator cu o placă din metal sau porţelan, groasă, perforată, conţinând un agent de desicare eficient. |

m | = | greutatea iniţială, în grame, a eşantionului de testat, |
m0 | = | greutatea, în grame, a eşantionului de testat uscat. |

m | = | greutatea iniţială, în grame, a eşantionului de testat, |
m1 | = | greutatea, în grame, a eşantionului de testat după uscare prealabilă, |
m2 | = | greutatea, în grame, a eşantionului de testat după zdrobire sau măcinare, |
m0 | = | greutatea, în grame, a eşantionului de testat uscat. |
3.1. | Vas cu fund plat, din material rezistent la coroziune, cu diametru de 8-9 cm şi adâncime de aproximativ 3 cm. |
3.2. | Termometru cu bulb întărit şi cu tub de expansiune la capătul superior, gradat de la aproximativ 80 °C până la cel puţin 110 °C şi lung de aproximativ 10 cm. |
3.3. | Cuvă cu nisip sau plită. |
3.4. | Desicator, conţinând un agent de uscare eficient. |
3.5. | Balanţă analitică. |

m | = | greutatea, în grame, a eşantionului de testat; |
m1 | = | greutatea, în grame, a vasului împreună cu conţinutul său înainte de încălzire; |
m2 | = | greutatea, în grame, a vasului împreună cu conţinutul său după încălzire. |
3.1. | Sulfat de potasiu. |
3.2. | Catalizator: oxid de cupru (II) CuO sau sulfat de cupru (II) pentahidrat, CuSO4 5H2O. |
3.3. | Zinc granulat. |
3.4. | Acid sulfuric, |
3.5. | Acid sulfuric, soluţie volumetrică standard, c(H2SO4) = 0,25 mol/l. |
3.6. | Acid sulfuric, soluţie volumetrică standard, c(H2SO4) = 0,10 mol/l. |
3.7. | Acid sulfuric, soluţie volumetrică standard, c(H2SO4) = 0,05 mol/l. |
3.8. | Indicator roşu de metil; se dizolvă 300 mg de roşu de metil în 100 ml de etanol, |
3.9. | Soluţie de hidroxid de sodiu (se poate utiliza soluţie de calitate tehnică) |
3.10. | Hidroxid de sodiu, soluţie volumetrică standard, c(NaOH) = 0,25 mol/l. |
3.11. | Hidroxid de sodiu, soluţie volumetrică standard, c(NaOH) = 0,10 mol/l. |
3.12. | Piatră ponce granulată, spălată în acid clorhidric şi calcinată. |
3.13. | Acetanilidă (m.p. = 114 °C, conţinutul în N = 10,36 %). |
3.14. | Zaharoză (fără azot). |
3.15. | Acid boric (H3BO3). |
3.16. | Soluţie de indicator roşu de metil: se dizolvă 100 mg de roşu de metil în 100 ml de etanol sau metanol. |
3.17. | Soluţie de verde de bromocrezol: se dizolvă 100 mg de verde de bromocrezol în 100 ml de etanol sau metanol. |
3.18. | Soluţie de acid boric (10 g/l-40 g/l, în funcţie de aparatura utilizată) Când se aplică detectarea prin colorimetrie a punctului final, indicatorii roşu de metil şi bromocrezol trebuie adăugaţi la soluţiile de acid boric. Dacă se prepară 1 litru de soluţie de acid boric, înainte de ajustarea de volum, se adaugă 7 ml de soluţie de indicator roşu de metil (punctul 3.16) şi 10 ml de soluţie verde de bromocrezol (punctul 3.17). În funcţie de apa utilizată, pH-ul soluţiei de acid boric poate diferi de la lot la lot. pH-ul soluţiei de acid boric trebuie să fie între 4,3 şi 4,7. Adesea este necesară o ajustare cu ajutorul unui mic volum de substanţă alcalină pentru a obţine un martor pozitiv. Notă: Adăugarea a aproximativ 3-4 ml de NaOH (punctul 3.11) în 1 litru de acid boric 10 g/l oferă, de obicei, ajustări bune. Soluţia se păstrează la temperatura camerei şi, pe durata păstrării, se protejează de lumină şi de surse de vapori de amoniac. |
3.19. | Acid clorhidric, soluţie volumetrică standard, c(HCl) = 0,10 mol/l. Notă: Dacă în calcule se fac ajustările necesare, se pot folosi alte concentraţii de soluţii volumetrice (punctele 3.5, 3.6, 3.7, 3.10, 3.11 şi 3.19). Concentraţiile se exprimă întotdeauna cu patru zecimale. |

V0 | = | volumul (ml) de NaOH (punctul 3.10 sau 3.11) folosit în testul martor; |
V1 | = | volumul (ml) de NaOH (punctul 3.10 sau 3.11) folosit în titrarea eşantionului; |
c | = | concentraţia (mol/l) a hidroxidului de sodiu (punctul 3.10 sau 3.11); |
m | = | greutatea (g) a eşantionului. |

m | = | greutatea (g) a părţii de testat; |
c | = | concentraţia (mol/l) a soluţiei volumetrice standard de acid clorhidric (punctul 3.19); |
V0 | = | volumul (în ml) de acid clorhidric utilizat în testul martor; |
V1 | = | volumul (în ml) de acid clorhidric utilizat în partea de testat. |

m | = | greutatea (g) a părţii de testat; |
c | = | concentraţia (mol/l) a soluţiei volumetrice standard de acid sulfuric (punctul 3.6); |
V0 | = | volumul (în ml) de acid sulfuric (punctul 3.6) utilizat în testul martor; |
V1 | = | volumul (în ml) de acid sulfuric (punctul 3.6) utilizat în partea de testat. |
8.1. | Aparatura poate fi de tip manual, semiautomat sau automat. Dacă aparatura necesită un transfer între etapele de dizolvare şi distilare, acest transfer trebuie realizat fără pierderi. Dacă vasul aparatului de distilare nu este prevăzut cu o pâlnie de picurare, se adaugă hidroxidul de sodiu imediat înainte de conectarea vasului la condensator, turnând încet lichidul pe marginea vasului. |
8.2. | Dacă produsul de dizolvare se solidifică, se reîncepe determinarea folosind o cantitate mai mare de acid sulfuric (punctul 3.4) decât cea menţionată la punctul 5.1. |
8.3. | Pentru produsele cu conţinut scăzut de azot, volumul de acidul sulfuric (punctul 3.7) care trebuie introdus în vasul de colectare poate fi redus, dacă este cazul, la 10 sau 15 ml şi completat până la 25 ml cu apă. |
8.4. | Pentru analizele curente, în vederea determinării conţinutului de proteine brute se pot aplica metode alternative de analiză, dar metoda Kjeldahl descrisă în prezenta parte C este metoda de referinţă. Echivalenţa dintre rezultatele obţinute cu metoda alternativă (de exemplu, DUMAS) şi cele obţinute prin metoda de referinţă trebuie demonstrată pentru fiecare matrice în mod individual. Întrucât rezultatele obţinute cu o metodă alternativă, chiar şi după verificarea echivalenţei, pot devia uşor faţă de rezultatele obţinute cu metoda de referinţă, este necesar a menţiona în raportul analitic metoda de analiză utilizată pentru determinarea conţinutului de proteine brute. |
3.1. | Soluţie de 4-dimetilaminobenzaldehidă: se dizolvă 1,6 g de 4-DMAB în 100 ml de etanol 96 % şi se adaugă 10 ml de acid clorhidric ( |
3.2. | Soluţie Carrez I: se dizolvă 21,9 g de acetat de zinc, Zn(CH3COO)2 2H2O şi 3 g de acid acetic glacial în apă. Se completează cu apă până la 100 ml. |
3.3. | Soluţie Carrez II: se dizolvă 10,6 g de ferocianură de potasiu, K4Fe(CN)6 3H2O în apă. Se completează cu apă până la 100 ml. |
3.4. | Cărbune activ care nu absoarbe ureea (de controlat). |
3.5. | Uree, soluţie 0,1 % (greutate/volum). |
4.1. | Mixer (agitator): aproximativ 35-40 rpm. |
4.2. | Eprubete: 160 × 16 mm cu dopuri de sticlă şlefuită. |
4.3. | Spectrofotometru. |
MAT 2 | MAT 5 | MAT 3 | MAT 4 | MAT 6 | |
Ovine | Bovine | Ovine | Ovine | Bovine | |
Fracţie masică ţintă (mg kg-1) | 3 000 | 5 000 | 7 001 | 9 036 | 11 000 |
Fracţie masică medie. (mg kg-1) | 4 241 | 6 993 | 7 830 | 9 962 | 12 071 |
Deviaţia standard a reproductibilităţii sR (mg kg-1) | 1 141 | 1 303 | 985 | 994 | 1 711 |
Deviaţia standard a repetabilităţii sr (mg kg-1) | 723 | 601 | 549 | 712 | 737 |
Deviaţia standard relativă a reproductibilităţii RSDR (%) | 27 | 19 | 13 | 10 | 14 |
Deviaţia standard relativă a repetabilităţii RSDr (%) | 17 | 9 | 7 | 7 | 6 |
Limita reproductibilităţii, R [R = 2,8 × sR ] | 3 195 | 3 649 | 2 759 | 2 784 | 4 790 |
Limita repetabilităţii, r [r = 2,8 × sr ] | 2 024 | 1 684 | 1 536 | 1 994 | 2 064 |
MAT 2 | MAT 5 | MAT 3 | MAT 4 | MAT 6 | |
Ovine | Bovine | Ovine | Ovine | Bovine | |
Fracţie masică ţintă (mg kg-1) | 3 000 | 5 000 | 7 001 | 9 036 | 11 000 |
Fracţie masică medie. (mg kg-1) | 4 101 | 6 467 | 7 890 | 10 062 | 11 642 |
Deviaţia standard a reproductibilităţii sR (mg kg-1) | 706 | 1 194 | 675 | 745 | 1 378 |
Deviaţia standard a repetabilităţii sr (mg kg-1) | 570 | 628 | 613 | 196 | 167 |
Deviaţia standard relativă a reproductibilităţii RSDR (%) | 17 | 18 | 9 | 7 | 12 |
Deviaţia standard relativă a repetabilităţii RSDr (%) | 14 | 10 | 8 | 2 | 1 |
Limita reproductibilităţii, R [R = 2,8 × sR ] | 1 977 | 3 344 | 1 889 | 2 087 | 3 859 |
Limita repetabilităţii, r [r = 2,8 × sr ] | 1 596 | 1 759 | 1 715 | 549 | 467 |
9.1. | În cazul unui conţinut de uree care depăşeşte 3 %, se reduce greutatea eşantionului la 1 g sau se diluează soluţia iniţială astfel încât să nu fie mai mult de 50 mg de uree în 500 ml. |
9.2. | În cazul unui conţinut mic în uree, se creşte greutatea eşantionului atâta timp cât filtratul rămâne transparent şi incolor. |
9.3. | Rezultatele de mai sus obţinute în urma studiilor colaborative nu indică o diferenţă semnificativă de precizie între ureea măsurată la 420 nm sau la 435 nm. |
3.1. | Peroxid de hidrogen, g (g/g) = 30 %. |
3.2. | Acid formic, g (g/g) = 98-100 %. |
3.3. | Fenol. |
3.4. | Disulfit de sodiu. |
3.5. | Hidroxid de sodiu. |
3.6. | Acid 5-sulfosalicilic dihidrat. |
3.7. | Acid clorhidric, cu densitate de aproximativ 1,18 g/ml. |
3.8. | Citrat trisodic dihidrat. |
3.9. | 2,2’-tiodietanol (tiodiglicol). |
3.10. | Clorură de sodiu. |
3.11. | Ninhidrină. |
3.12. | Eter de petrol, interval de fierbere 40-60 °C. |
3.13. | Norleucină sau alt compus adecvat pentru a fi utilizat ca etalon intern. |
3.14. | Azot, gaz (< 10 ppm oxigen). |
3.15. | 1-octanol. |
3.16. | Aminoacizi. |
3.16.1. | Substanţele standard ale aminoacizilor enumeraţi la punctul 1 (Obiect şi domeniu de aplicare). Compuşi puri care nu conţin deloc apă de cristalizare. Înainte de utilizare, se usucă în vid cu ajutorul P2O5 sau al H2SO4, timp de 1 săptămână. |
3.16.2. | Acid cisteic. |
3.16.3. | Metionin sulfonă. |
3.17. | Soluţie de hidroxid de sodiu, c = 7,5 mol/l: Se dizolvă 300 g de NaOH (punctul 3.5) în apă şi se completează până la 1 litru. |
3.18. | Soluţie de hidroxid de sodiu, c = 1 mol/l: Se dizolvă 40 g de NaOH (punctul 3.5) în apă şi se completează până la 1 litru. |
3.19. | Soluţie de acid formic-fenol: Se amestecă 889 g de acid formic (punctul 3.2) cu 111 g de apă şi se adaugă 4,73 g de fenol (punctul 3.3). |
3.20. | Mixtură de hidroliză, c = 6 mol HCl/l conţinând 1 g de fenol/l: Se adaugă 1 g de fenol (punctul 3.3) la 492 ml de HCl (punctul 3.7) şi se completează cu apă până la 1 litru. |
3.21. | Mixtură de extracţie, c = 0,1 mol HCl/l conţinând 2 % tiodiglicol: se iau 8,2 ml de HCl (punctul 3.7), se diluează cu aproximativ 900 ml de apă, se adaugă 20 ml de tiodiglicol (punctul 3.9) şi se completează cu apă până la 1 litru (nu se amestecă direct 3.7 şi 3.9). |
3.22. | Acid 5-sulfosalicilic dihidrat, Se dizolvă 60 g de acid 5-sulfosalicilic (punctul 3.6) în apă şi se completează cu apă până la 1 litru. |
3.23. | Mixtură de oxidare (acid performic-fenol): Se amestecă 0,5 ml de peroxid de hidrogen (punctul 3.1) cu 4,5 ml soluţie de acid formic-fenol (punctul 3.19) într-un mic pahar de laborator. Se incubează la 20-30 °C timp de 1 oră pentru a se forma acid performic, apoi se răceşte în baie de apă cu gheaţă (15 min) înainte de a se adăuga la eşantion. Atenţie: a se evita contactul cu pielea şi a se purta îmbrăcăminte protectoare. |
3.24. | Soluţie tampon de citrat, c = 0,2 mol Na+/l, pH 2,20: Se dizolvă 19,61 g de citrat de sodiu (punctul 3.8), 5 ml de tiodiglicol (punctul 3.9), 1 g de fenol (punctul 3.3) şi 16,50 ml de HCl (punctul 3.7) în aproximativ 800 ml de apă. Se ajustează pH-ul la 2,20. Se completează cu apă până la 1 litru. |
3.25. | Soluţii tampon de eluţie, preparate în conformitate cu condiţiile pentru analizorul utilizat (punctul 4.9). |
3.26. | Reactiv ninhidrină, preparat în conformitate cu condiţiile pentru analizorul utilizat (punctul 4.9). |
3.27. | Soluţii etalon de aminoacizi. Aceste soluţii se păstrează la o temperatură sub 5 °C. |
3.27.1. | Soluţie etalon stoc de aminoacizi (punctul 3.16.1). c = 2,5 Se pot obţine din surse comerciale. |
3.27.2. | Soluţie etalon stoc de acid cisteic şi metionin sulfonă, c = 1,25 Se dizolvă 0,2115 g de acid cisteic (punctul 3.16.2) şi 0,2265 g de metionin sulfonă (punctul 3.16.3) în soluţie tampon de citrat (punctul 3.24) într-un balon gradat de 1 litru şi se completează până la semn cu soluţie tampon de citrat. Se păstrează la o temperatură sub 5 °C, nu mai mult de 12 luni. Această soluţie nu se utilizează dacă soluţia etalon stoc (punctul 3.27.1) conţine acid cisteic şi metionin sulfonă. |
3.27.3. | Soluţie etalon stoc de etalon intern, de exemplu, norleucină, c = 20 Se dizolvă 0,6560 g de norleucină (punctul 3.13) în soluţie tampon de citrat (punctul 3.24) într-un balon gradat şi se completează cu soluţie tampon de citrat până la 250 ml. Se păstrează la o temperatură sub 5 °C, nu mai mult de 6 luni. |
3.27.4. | Soluţie de calibrare a aminoacizilor standard pentru utilizare cu hidrolizate, c = 5 nmol/50 Se transferă cantitativ într-un balon gradat de 50 ml, se completează până la semn cu soluţie tampon de citrat (punctul 3.24) şi se amestecă. Se păstrează la o temperatură sub 5 °C, nu mai mult de 3 luni. A se vedea şi observaţiile de la punctul 9.1. |
3.27.5. | Soluţie de calibrare a aminoacizilor standard pentru utilizare cu hidrolizate preparată în conformitate cu punctul 5.3.3.1 şi pentru utilizare cu extracte (punctul 5.2). Soluţia de calibrare se prepară în conformitate cu punctul 3.27.4, dar omiţând clorura de sodiu. Se păstrează la o temperatură sub 5 °C, nu mai mult de 3 luni. |
4.1. | Balon cu fund rotund de 100 sau 250 ml dotat cu un condensator cu reflux. |
4.2. | Sticlă din borosilicat, de 100 ml, cu un dop filetat cu căptuşeală de cauciuc/teflon (de exemplu, Duran, Schott) pentru utilizare în cuptor. |
4.3. | Cuptor cu ventilaţie forţată şi un regulator de temperatură cu precizie mai mare de ± 2 oC. |
4.4. | pH-metru (cu trei zecimale). |
4.5. | Filtru cu membrană (0,22 |
4.6. | Centrifugă. |
4.7. | Evaporator rotativ cu vid. |
4.8. | Agitator mecanic sau magnetic. |
4.9. | Analizor de aminoacizi sau echipament HPLC cu coloană schimbătoare de ioni, dispozitiv pentru ninhidrină, derivare post-coloană şi detector fotometric. Coloana este umplută cu răşini de polistiren sulfonat capabile să separe aminoacizii unul de altul, precum şi de materiale care conţin ninhidrină. Fluxul din liniile cu soluţie tampon şi ninhidrină este asigurat de pompe care au o stabilitate a fluxului de ± 0,5 % în perioada care include atât funcţionarea în vederea calibrării standardului, cât şi analiza eşantionului. În cazul unor analizori de aminoacizi se pot utiliza proceduri de hidrolizare în care hidrolizatul are o concentraţie de sodiu de c = 0,8 mol/l şi conţine întreaga cantitate de acid formic rezidual din etapa de oxidare. Alţi analizori nu oferă o separare satisfăcătoare a anumitor aminoacizi dacă hidrolizatul conţine exces de acid formic şi/sau concentraţii mari de ioni de sodiu. În acest caz, volumul de acid se reduce prin evaporare la aproximativ 5 ml după hidroliză şi înainte de ajustarea pH-ului. Evaporarea se face sub vid, la o temperatură maximă de 40 °C. |
5.3.2.1. | Hidroliza eşantioanelor oxidate La eşantioanele oxidate preparate în conformitate cu punctul 5.3.1 se adaugă 25 ml de mixtură de hidroliză (punctul 3.20) având grijă să se spele orice reziduu de eşantion de pe pereţii vasului şi de pe spatulă. În funcţie de procedura de hidrolizare utilizată, se trece la punctul 5.3.2.3 sau 5.3.2.4. |
5.3.2.2. | Hidroliza eşantioanelor neoxidate Se cântăresc 0,1-1 g de eşantion preparat (punctul 5.1), cu o abatere de 0,2 mg, fie într-un balon cu fund rotund de 100 ml sau 250 ml (punctul 4.1), fie într-o sticlă de 100 ml dotată cu dop filetat (punctul 4.2). Porţia de eşantion cântărit trebuie să aibă un conţinut de azot de aproximativ 10 mg. Se adaugă cu grijă 25 ml de mixtură de hidroliză (punctul 3.20) şi se amestecă cu eşantionul. Se procedează ca la punctul 5.3.2.3 sau 5.3.2.4. |
5.3.2.3. | Hidroliza în mediu deschis Se adaugă 3 mărgele de sticlă în mixtura din balon (preparată conform menţiunilor de la punctul 5.3.2.1 sau 5.3.2.2) şi se fierbe în clocot continuu sub reflux timp de 23 de ore. La încheierea hidrolizei, se spală condensatorul cu 5 ml de soluţie tampon de citrat (punctul 3.24). Se deconectează balonul şi se răceşte într-o baie de apă cu gheaţă. Se procedează ca la punctul 5.3.3. |
5.3.2.4. | Hidroliza în mediu închis Sticla conţinând mixtura preparată conform punctului 5.3.2.1 sau 5.3.2.2 se introduce în cuptor (punctul 4.3) la 110 °C. În timpul primei ore, pentru a se preveni o creştere progresivă a presiunii (datorată expansiunii substanţelor gazoase) şi pentru a se evita o explozie, se plasează dopul filetat la nivelul extremităţii superioare a vasului. A nu se închide vasul cu dopul respectiv. După o oră, se închide vasul cu dopul respectiv şi se lasă în cuptor (punctul 4.3) timp de 23 de ore. La încheierea hidrolizei, se îndepărtează sticla din cuptor, se scoate cu grijă dopul de la nivelul sticlei, iar aceasta se introduce într-o baie de apă cu gheaţă. Se lasă să se răcească. În funcţie de procedura de ajustare a pH-ului (punctul 5.3.3), se transferă cantitativ conţinutul sticlei într-un pahar de laborator de 250 ml sau într-un balon cu fund rotund de 250 ml, utilizând soluţie tampon de citrat (punctul 3.24). Se procedează ca la punctul 5.3.3. |
5.3.3.1. | Pentru sistemele cromatografice (punctul 4.9) necesitând o concentraţie de sodiu mică. Este recomandabil să se utilizeze o soluţie etalon stoc internă (punctul 3.27.3) în cazul în care se folosesc analizori de aminoacizi necesitând o concentraţie mică de sodiu (în cazul în care volumul de acid trebuie redus). În acest caz, la hidrolizat se adaugă 2,00 ml de soluţie etalon stoc internă (punctul 3.27.3) înainte de evaporare. La hidrolizatul obţinut conform punctului 5.3.2.3 sau 5.3.2.4 se adaugă 2 picături de 1-octanol (punctul 3.15). Utilizând un evaporator rotativ (punctul 4.7) se reduce volumul la 5-10 ml în condiţii de vid la 40 °C. Dacă volumul este redus accidental la mai puţin de 5 ml, hidrolizatul trebuie aruncat, iar analiza trebuie repetată. Se ajustează pH-ul la 2,20 cu ajutorul soluţiei de hidroxid de sodiu (punctul 3.18) şi se procedează ca la punctul 5.3.4. |
5.3.3.2. | Pentru toţi ceilalţi analizori de aminoacizi (punctul 4.9) Hidrolizatele obţinute conform punctului 5.3.2.3 sau 5.3.2.4 se neutralizează parţial prin adăugarea cu grijă, în condiţii de agitare continuă, a 17 ml de soluţie de hidroxid de sodiu (punctul 3.17), asigurându-se că temperatura este menţinută sub 40 °C. Se ajustează pH-ul la valoarea de 2,20 la temperatura camerei prin utilizarea soluţiei de hidroxid de sodiu (punctul 3.17) şi în cele din urmă a soluţiei de hidroxid de sodiu (punctul 3.18). Se trece la punctul 5.3.4. |
A | = | aria vârfului, hidrolizat sau extract |
B | = | aria vârfului, soluţia etalon de calibrare |
C | = | aria vârfului, etalon intern în hidrolizat sau extract |
D | = | aria vârfului, etalon intern, soluţia etalon de calibrare |
M | = | greutatea molară a aminoacidului determinat |
c | = | concentraţia de standard în |
m | = | greutatea eşantionului (g) (corectată pentru a obţine greutatea originală dacă produsul este uscat sau degresat) |
V | = | total hidrolizat în ml (punctul 5.3.4) sau volumul de diluţie total calculat pentru extract, în ml (6.1) |
6.1. | Volumul total de diluţie al extractelor (F) pentru determinarea aminoacizilor liberi (punctul 5.2) se calculează după cum urmează:
|
Material de referinţă | Aminoacid | |||
Treonină | Cist(e)ină | Metionină | Lizină | |
Furaje mixte pentru porcine | 6,94 n = 15 | 3,01 n = 17 | 3,27 n = 17 | 9,55 n = 13 |
Furaj combinat pentru pui de carne | 9,31 n = 16 | 3,92 n = 18 | 5,08 n = 18 | 13,93 n = 16 |
Concentrat proteic | 22,32 n = 16 | 5,06 n = 17 | 12,01 n = 17 | 47,74 n = 15 |
Preamestec | 58,42 n = 16 | - | 90,21 n = 16 | 98,03 n = 16 |
n = număr de laboratoare participante | ||||
Material de referinţă | Aminoacid | |||
Treonină | Cist(e)ină | Metionină | Lizină | |
Furaje mixte pentru porcine | 1,9 n = 15 | 3,3 n = 17 | 3,4 n = 17 | 2,8 n = 13 |
Furaj combinat pentru pui de carne | 2,1 n = 16 | 2,8 n = 18 | 3,1 n = 18 | 2,1 n = 16 |
Concentrat proteic | 2,7 n = 16 | 2,6 n = 17 | 2,2 n = 17 | 2,4 n = 15 |
Preamestec | 2,2 n = 16 | - | 2,4 n = 16 | 2,1 n = 16 |
n = număr de laboratoare participante | ||||
Material de referinţă | Aminoacid | |||
Treonină | Cist(e)ină | Metionină | Lizină | |
Furaje mixte pentru porcine | 4,1 n = 15 | 9,9 n = 17 | 7,0 n = 17 | 3,2 n = 13 |
Furaj combinat pentru pui de carne | 5,2 n = 16 | 8,8 n = 18 | 10,9 n = 18 | 5,4 n = 16 |
Concentrat proteic | 3,8 n = 16 | 12,3 n = 17 | 13,0 n = 17 | 3,0 n = 15 |
Preamestec | 4,3 n = 16 | - | 6,9 n = 16 | 6,7 n = 16 |
n = număr de laboratoare participante | ||||
9.1. | Din cauza diferenţelor dintre analizorii de aminoacizi, concentraţiile finale ale soluţiilor de calibrare pentru aminoacizii standard (a se vedea punctele 3.27.4 şi 3.27.5) şi pentru hidrolizat (a se vedea punctul 5.3.4) se consideră orientative. Intervalul răspunsului liniar al aparatului trebuie verificat pentru toţi aminoacizii. Soluţia etalon se diluează cu soluţie tampon de citrat pentru a genera arii de vârf situate la mijlocul intervalului. |
9.2. | În cazul în care pentru analizarea hidrolizatelor se foloseşte aparatură de cromatografie lichidă de înaltă performanţă, condiţiile experimentale trebuie optimizate în conformitate cu recomandările fabricantului. |
9.3. | Prin aplicarea metodei la furajele combinate sau la preamestecurile care conţin peste 1 % clorură (concentrate, furaje minerale, furaje complementare) poate apărea o subestimare a metioninei, ceea ce necesită un tratament special. |
3.1. | Se utilizează apă dublu distilată sau apă de calitate echivalentă (conductivitate < 10 |
3.2. | Substanţă etalon: triptofan (puritate/conţinut > = 99 %), uscat sub vid pe pentoxid fosforic. |
3.3. | Substanţă etalon intern: |
3.4. | Hidroxid de bariu octahidratat (se evită expunerea excesivă la aer a Ba(OH)2.8 H2O pentru a se evita formarea de BaCO3, care ar putea perturba determinarea) (a se vedea observaţia de la punctul 9.3). |
3.5. | Hidroxid de sodiu. |
3.6. | Acid ortofosforic, g (g/g) = 85 %. |
3.7. | Acid clorhidric, |
3.8. | Metanol, de calitate HPLC. |
3.9. | Eter de petrol, interval de fierbere 40-60 °C. |
3.10. | Soluţie de hidroxid de sodiu, c = 1 mol/l Se dizolvă 40,0 g de NaOH (punctul 3.5) în apă şi se completează până la 1 litru cu apă (punctul 3.1). |
3.11. | Acid clorhidric, c = 6 mol/l: Se iau 492 ml HCl (punctul 3.7) şi se completează până la 1 litru cu apă. |
3.12. | Acid clorhidric, c = 1 mol/l: Se iau 82 ml HCl (punctul 3.7) şi se completează până la 1 litru cu apă. |
3.13. | Acid clorhidric, c = 0,1 mol/l: Se iau 8,2 ml HCl (punctul 3.7) şi se completează până la 1 litru cu apă. |
3.14. | Acid ortofosforic, c = 0,5 mol/l: Se iau 34 ml de acid ortofosforic (punctul 3.6) şi se completează până la 1 litru cu apă (punctul 3.1). |
3.15. | Soluţie concentrată de triptofan (punctul 3.2), c = 2,50 Într-un balon gradat de 500 ml se dizolvă 0,2553 g de triptofan (punctul 3.2) în acid clorhidric (punctul 3.13) şi se completează până la semn cu acid clorhidric (punctul 3.13). Se păstrează la - 18 °C timp de maximum 4 săptămâni. |
3.16. | Soluţie etalon intern concentrată, c = 2,50 Într-un balon gradat de 500 ml se dizolvă 0,2728 g de |
3.17. | Soluţie etalon de calibrare pentru triptofan şi etalon intern: Se iau 2,00 ml din soluţia concentrată de triptofan (punctul 3.15) şi 2,00 ml din soluţia concentrată de etalon intern ( Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare. În timpul preparării se protejează de lumina solară directă. |
3.18. | Acid acetic |
3.19. | 1,1,1-triclor-2-metil-2-propanol. |
3.20. | Etanolamină g (g/g) > 98 %. |
3.21. | 1 g de soluţie de 1,1,1-triclor-2-metil-2-propanol (punctul 3.19) în 100 ml de metanol (punctul 3.8). |
3.22. | Fază mobilă pentru HPLC: 3,00 g acetic acid (punctul 3.18) + 900 ml apă (punctul 3.1) + 50,0 ml soluţie (punctul 3.21) de 1,1,1-triclor-2-metil-2-propanol (punctul 3.19) în metanol (punctul 3.8) (1 g/100 ml). Se ajustează pH-ul la valoarea 5,00 utilizând etanolamină (punctul 3.20). Se completează până la 1 000 ml cu apă (punctul 3.1). |
4.1. | Echipament de HPLC cu detector spectrofluorometric. |
4.2. | Coloană pentru cromatografie lichidă, 125 mm × 4 mm, C18, particule de 3 |
4.3. | pH-metru. |
4.4. | Vas de polipropilenă, cu capacitate de 125 ml, cu gât larg şi dop filetat. |
4.5. | Filtru cu membrană, 0,45 |
4.6. | Autoclavă, 110 (± 2) °C, 1.4 (± 0,1) bar. |
4.7. | Agitator mecanic sau magnetic. |
4.8. | Mixer Vortex. |
Cromatografie lichidă coloană (punctul 4.2): | 125 mm × 4 mm, C18, particule de 3 |
Temperatura coloanei: | Temperatura camerei |
Faza mobilă (punctul 3.22): | 3,00 g acetic acid (punctul 3.18) + 900 ml apă (punctul 3.1) + 50,0 ml soluţie (punctul 3.21) de 1,1,1-triclor-2-metil-2-propanol (punctul 3.19) în metanol (punctul 3.8) (1 g/100 ml). Se ajustează pH-ul la valoarea 5,00 utilizând etanolamină (punctul 3.20). Se completează până la 1 000 ml cu apă (punctul 3.1) |
Debit: | 1 ml/min |
Timpul total de desfăşurare: | aprox. 34 de minute |
Lungimea undei de detecţie: | excitaţie: 280 nm, emisie: 356 nm. |
Volum de injecţie | 20 |

A | = | aria vârfului etalonului intern, soluţia etalon de calibrare (punctul 3.17) |
B | = | suprafaţa vârfului pentru triptofan, extract (punctul 5.2) sau hidrolizat (punctul 5.3) |
V1 | = | volumul în ml (2 ml) al soluţiei concentrate de triptofan (punctul 3.15) adăugată la soluţia de calibrare (punctul 3.17) |
c | = | concentraţia în |
V2 | = | volumul în ml al soluţiei etalon intern concentrate (punctul 3.16) adăugată la extract (punctul 5.2) (= 5,00 ml) sau la hidrolizat (punctul 5.3) (= 2,00 ml) |
C | = | aria vârfului etalonului intern, extract (punctul 5.2) sau hidrolizat (punctul 5.3) |
D | = | aria vârfului pentru triptofan, soluţia etalon de calibrare (punctul 3.17) |
V3 | = | volumul în ml (= 2,00 ml) al soluţiei de etalon intern concentrate (punctul 3.16) adăugată la soluţia etalon de calibrare (punctul 3.17) |
m | = | greutatea eşantionului în g (corectată pentru a obţine greutatea originală dacă produsul este uscat şi/sau degresat) |
M | = | masa molară a triptofanului (= 204,23 g/mol). |
Eşantion 1 Furaje pentru porcine | Eşantion 2 Furaje pentru porcine suplimentate cu L-triptofan | Eşantion 3 Furaje concentrate pentru porcine | |
L | 12 | 12 | 12 |
n Medie (g/kg) | 50 2,42 | 55 3,40 | 50 4,22 |
sr [g/kg] | 0,05 | 0,05 | 0,08 |
r (g/kg) | 0,14 | 0,14 | 0,22 |
CVr [%] | 1,9 | 1,6 | 1,9 |
SR [g/kg] | 0,15 | 0,20 | 0,09 |
R [g/kg] | 0,42 | 0,56 | 0,25 |
CVR [%] | 6,3 | 6,0 | 2,2 |
L = numărul de laboratoare care au transmis rezultate n = numărul de rezultate individuale reţinute după eliminarea extremelor (identificate prin testele Cochran, Dixon pentru extreme) sr = deviaţia standard a repetabilităţii SR = deviaţia standard a reproductibilităţii r = repetabilitate R = reproductibilitate CVr = coeficientul de variaţie a repetabilităţii, % CVR = coeficientul de variaţie a reproductibilităţii, % | |||
Eşantion 4 Amestec de grâu cu soia | Eşantion 5 Amestec de grâu cu soia (= eşantion 4) adăugat cu triptofan (0,457 g/kg) | |
L n | 12 55 | 12 60 |
Medie (g/kg) | 0,391 | 0,931 |
sr [g/kg] | 0,005 | 0,012 |
r (g/kg) | 0,014 | 0,034 |
CVr [%] | 1,34 | 1,34 |
SR [g/kg] | 0,018 | 0,048 |
R [g/kg] | 0,050 | 0,134 |
CVR [%] | 4,71 | 5,11 |
L = numărul de laboratoare care au transmis rezultate n = numărul de rezultate individuale reţinute după eliminarea extremelor (identificate prin testele Cochran, Dixon pentru extreme) sr = deviaţia standard a repetabilităţii SR = deviaţia standard a reproductibilităţii r = repetabilitate R = reproductibilitate CVr = coeficientul de variaţie a repetabilităţii, % CVR = coeficientul de variaţie a reproductibilităţii, % | ||
Eşantion 1 Furaje mixte pentru porcine (CRM 117) | Eşantion 2 Făină de peşte cu conţinut mic de grăsimi (CRM 118) | Eşantion 3 Făină din soia (CRM 119) | Eşantion 4 Lapte praf degresat (CRM 120) | |
L | 7 | 7 | 7 | 7 |
n | 25 | 30 | 30 | 30 |
Medie (g/kg) | 2,064 | 8,801 | 6,882 | 5,236 |
sr [g/kg] | 0,021 | 0,101 | 0,089 | 0,040 |
r (g/kg) | 0,059 | 0,283 | 0,249 | 0,112 |
CVr [%] | 1,04 | 1,15 | 1,30 | 0,76 |
SR [g/kg] | 0,031 | 0,413 | 0,283 | 0,221 |
R [g/kg] | 0,087 | 1,156 | 0,792 | 0,619 |
CVR [%] | 1,48 | 4,69 | 4,11 | 4,22 |
L = numărul de laboratoare care au transmis rezultate n = numărul de rezultate individuale reţinute după eliminarea extremelor (identificate prin testele Cochran, Dixon pentru extreme) sr = deviaţia standard a repetabilităţii SR = deviaţia standard a reproductibilităţii r = repetabilitate R = reproductibilitate CVr = coeficientul de variaţie a repetabilităţii, % CVR = coeficientul de variaţie a reproductibilităţii, % | ||||
9.1. | Respectarea următoarelor condiţiile speciale de cromatografie poate conduce la o mai bună separare a triptofanului de Eluţie izocratică urmată de curăţarea coloanei prin gradient:
| ||||||||||||||||||||||||||||||||||
9.2. | Cromatografia variază în funcţie de tipul de HPLC şi de materialul utilizat la umplerea coloanei. Sistemul ales trebuie să fie capabil să stabilească o separare iniţială de referinţă între triptofan şi etalonul intern. În plus, este important ca produşii de degradare să fie bine separaţi de triptofan şi de etalonul intern. Se efectuează o operaţie de probă pe hidrolizate fără etalon intern pentru a verifica prezenţa impurităţilor la nivelul liniei de bază corespunzătoare etalonului intern. Este important ca durata eluţiei pentru toţi produşii de degradare să fie suficient de lungă, altfel prezenţa unor vârfuri de eluţie întârziate poate interfera cu operaţiile ulterioare de cromatografie. În cursul operaţiilor, sistemul cromatografic oferă un răspuns linear. Acest răspuns linear se măsoară în condiţii de concentraţie constantă (normalul) a etalonului intern şi de concentraţii variabile a triptofanului. Este important că înălţimea vârfurilor pentru triptofan şi pentru etalonul intern să se situeze în gama lineară a sistemului HPLC/fluorescenţă. Dacă vârfurile pentru triptofan şi/sau pentru etalonul intern sunt prea joase sau prea înalte, analiza se repetă cu un eşantion de o altă dimensiune şi/sau un volum final modificat. |
3.1. | Eter de petrol, interval de fierbere: 40-60 °C. Indicele de brom trebuie să fie mai mic de 1, iar reziduul după evaporare sub 2 mg/100 ml. |
3.2. | Sulfat de sodiu, anhidru. |
3.3. | Acid clorhidric, c = 3 mol/l |
3.4. | Agent de filtrare, de exemplu Kieselguhr, Hyflo-supercel. |
4.1. | Aparat de extracţie. Dacă este dotat cu un sifon (aparat Soxhlet), rata refluxului este astfel încât să producă aproximativ 10 cicluri pe oră; dacă aparatul este de tip fără sifon, rata refluxului este de aproximativ 10 ml pe minut. |
4.2. | Cartuşe de extracţie, lipsite de materie solubilă în eter de petrol şi cu o porozitate compatibilă cu cerinţele de la punctul 4.1. |
4.3. | Cuptor de uscare, fie cu vid reglat la 75 ± 3 °C, fie cu aer reglat la 100 ± 3 °C. |
8.1. | Pentru produse cu un conţinut mare de uleiuri şi grăsimi, care sunt dificil de măcinat sau care sunt improprii prelevării unui eşantion de testare redus omogen, se procedează după cum urmează. Se cântăresc 20 g de eşantion cu o abatere de 1 mg şi se amestecă cu o cantitate de 10 g sau mai mare de sulfat de sodiu anhidru (punctul 3.2). Se extrage cu eter de petrol (punctul 3.1) astfel cum se indică la punctul 5.1. Se completează extractul obţinut până la 500 ml cu eter de petrol (punctul 3.1) şi se amestecă. Se iau 50 ml de soluţie şi se introduc într-un vas mic, uscat şi cântărit, care conţine fragmente de piatră ponce. Se elimină solventul prin distilare, se usucă şi se procedează astfel cum se indică la ultimul paragraf al punctului 5.1. Se elimină solventul din reziduul de extracţie rămas în cartuş, se macină reziduul până la o fineţe de 1 mm, se reintroduce în cartuşul de extracţie (nu se adaugă sulfat de sodiu) şi se procedează astfel cum se indică la punctul 5.1, paragrafele doi şi trei. Conţinutul de uleiuri şi grăsimi se calculează ca procent din eşantion folosind următoarea formulă:
unde:
|
8.2. | Pentru anumite produse (de exemplu, cu conţinut mic de uleiuri şi grăsimi) masa eşantionului de testat se poate mări. |
8.3. | Este posibil ca, înainte de hidroliză şi extracţie, hrana pentru animalele de companie cu conţinut mare de apă să trebuiască să fie amestecată cu sulfat de sodiu anhidru, conform procedurii B. |
8.4. | La punctul 5.2, poate fi mai eficientă folosirea apei calde în locul apei reci pentru spălarea reziduului după filtrare. |
8.5. | Este posibil ca timpul de uscare de 1,5 h să necesite a fi prelungit pentru unele furaje. Uscarea excesivă se evită, întrucât acest fapt poate determina rezultate slabe. Se poate folosi, de asemenea, un cuptor cu microunde. |
3.1. | Acid sulfuric, c = 0,13 mol/l. |
3.2. | Agent antispumant (de exemplu n-octanol). |
3.3. | Agent de filtrare (Celite 545 sau echivalent), încălzit la 500 °C timp de patru ore (8.6). |
3.4. | Acetonă. |
3.5. | Eter de petrol cu interval de fierbere între 40 şi 60 °C. |
3.6. | Acid clorhidric, c = 0,5 mol/l. |
3.7. | Soluţie de hidroxid de potasiu, c = 0,23 mol/l. |
4.1. | Unitate de încălzire pentru dizolvare cu acid sulfuric şi soluţie de hidroxid de potasiu, echipată cu un suport pentru creuzetul filtrant (punctul 4.2) şi dotată cu un tub de evacuare prevăzut cu un dop la orificiul de ieşire pentru lichide şi de creare de vid, posibil şi cu aer comprimat. Înainte de fiecare utilizare zilnică, unitatea se preîncălzeşte cu apă aflată în stare de fierbere, timp de 5 minute. |
4.2. | Creuzet filtrant de sticlă cu placă filtrantă de sticlă sinterizată fuzionată, cu pori de 40-90 |
4.3. | Cilindru de cel puţin 270 ml cu condensator cu reflux, care poate fi supus fierberii. |
4.4. | Cuptor de uscare, cu termostat. |
4.5. | Cuptor cu muflă, cu termostat. |
4.6. | Unitate de extracţie compusă dintr-o placă de sprijin pentru creuzetul filtrant (punctul 4.2) şi cu o ţeavă de evacuare prevăzută cu un dop la orificiul de creare de vid şi de ieşire a lichidelor. |
4.7. | Inele de conectare utilizate pentru a asambla unitatea de încălzire (punctul 4.1), creuzetul (punctul 4.2) şi cilindrul (punctul 4.3), precum şi pentru a conecta unitatea de extracţie la rece (punctul 4.6) cu creuzetul. |

m | = | greutatea eşantionului în g; |
m0 | = | pierderea de greutate după calcinare în cursul determinării, în g; |
m1 | = | pierderea de greutate după calcinare în cursul testului martor, în g. |
9.1. | Furajele care au conţinut de grăsimi brute mai mare de 10 % trebuie să fie degresate înainte de a fi supuse analizei cu eter de petrol (punctul 3.5). Creuzetul filtrant (punctul 4.2) împreună cu conţinutul său se conectează la unitatea de extracţie la rece (punctul 4.6) şi se creează vidul, apoi se spală reziduul cu trei porţii consecutive de eter de petrol de 30 ml, asigurându-se că reziduul este uscat. Creuzetul împreună cu conţinutul său se conectează la unitatea de încălzire (punctul 4.1) şi se continuă astfel cum se descrie la punctul 5. |
9.2. | Furajele care conţin grăsimi care nu pot fi extrase direct cu eter de petrol (punctul 3.5) trebuie degresate astfel cum se indică la punctul 8.1 şi degresate încă o dată după fierbere cu acid. După fierbere cu acid şi spălare consecutivă, creuzetul împreună cu conţinutul său se conectează la unitatea de extracţie la rece (punctul 4.6), apoi se spală de trei ori cu 30 ml acetonă, urmat de trei spălări suplimentare cu porţii de eter de petrol de 30 ml. Se filtrează sub vid până la uscare, iar analizarea se continuă astfel cum se descrie la punctul 5, începând cu tratamentul cu hidroxid de potasiu. |
9.3. | Dacă furajul conţine mai mult de 5 % carbonaţi, exprimaţi ca şi carbonat de calciu, se conectează creuzetul (punctul 4.2) împreună cu eşantionul cântărit la unitatea de încălzire (punctul 4.1). Eşantionul se spală de trei ori cu 30 ml acid clorhidric (punctul 3.6). După fiecare adăugare, se lasă eşantionul să stea timp de aproximativ un minut înainte de filtrare. Se spală o singură dată cu 30 ml apă, iar apoi se continuă astfel cum se descrie la punctul 5. |
9.4. | Dacă se utilizează aparatură în formă de stativ (o serie de creuzete ataşate la aceeaşi unitate de încălzire) nu se efectuează două determinări individuale pe acelaşi eşantion de analizat în aceeaşi serie. |
9.5. | Dacă după fierbere este dificil să se filtreze soluţiile acide şi alcaline, se utilizează aer comprimat introdus prin ţeava de evacuare a unităţii de încălzire şi apoi se continuă filtrarea. |
9.6. | Temperatura de calcinare nu depăşeşte 500 °C pentru a se putea prelungi timpul de utilizare a sticlei creuzetului filtrant. Trebuie acordată atenţie pentru a se evita şocurile termice excesive în cursul ciclurilor de încălzire şi răcire. |
3.1. | Etanol, soluţie cu concentraţie de 40 % (v/v): 0,948 g/ml la 20 °C, neutralizată cu fenolftaleină. |
3.2. | Soluţie Carrez I: se dizolvă 21,9 g de acetat de zinc, Zn(CH3COO)2 2H2O şi 3 g de acid acetic glacial în apă. Se completează cu apă până la 100 ml. |
3.3. | Soluţie Carrez II: se dizolvă 10,6 g de ferocianură de potasiu, K4 Fe (CN)6 3H2O în apă. Se completează cu apă până la 100 ml. |
3.4. | Metiloranj, soluţie 0,1 % (greutate/volum). |
3.5. | Acid clorhidric 4 mol/litru. |
3.6. | Acid clorhidric 0,1 mol/litru. |
3.7. | Soluţie de hidroxid de sodiu 0,1 mol/litru. |
3.8. | Reactiv Luff-Schoorl: Amestecând cu grijă, se toarnă soluţia de acid citric (punctul 3.8.2) în soluţia de carbonat de sodiu (punctul 3.8.3). Se adaugă soluţia de sulfat de cupru (punctul 3.8.1) şi se completează până la 1 litru cu apă. Se lasă la decantare peste noapte şi se filtrează. Se verifică concentraţia reactivului obţinut astfel (Cu 0,05 mol/litru; Na2 CO3 1 mol/litru), a se vedea (punctul 5.4) ultimul paragraf. pH-ul soluţiei este aproximativ 9,4. |
3.8.1. | Soluţie de sulfat de cupru: se dizolvă 25 g de sulfat de cupru, Cu SO4 5H2O, lipsită de fier, în 100 ml apă. |
3.8.2. | Soluţie de acid citric: se dizolvă 50 g de acid citric, C6H8O7*H2O, în 50 ml de apă. |
3.8.3. | Soluţie de carbonat de sodiu: se dizolvă 143,8 g de carbonat de sodiu anhidru în aproximativ 300 ml de apă caldă. Se lasă să se răcească. |
3.9. | Soluţie de tiosulfat de sodiu 0,1 mol/litru. |
3.10. | Soluţie de amidon: se adaugă un amestec de 5 g de amidon solubil cu 30 ml de apă la 1 litru de apă în stare de fierbere. Se fierbe timp de 3 minute, se lasă să se răcească şi, dacă este necesar, se adaugă 10 mg de iodură de mercur ca agent de conservare. |
3.11. | Acid sulfuric 3 mol/litru. |
3.12. | Iodură de potasiu, soluţie 30 % (greutate/volum). |
3.13. | Granule de piatră ponce fierte în acid clorhidric, spălate în apă şi uscate. |
3.14. | 3-metilbutan-1-ol. |
7.1. | În cazul furajelor bogate în melase şi al altor furaje care nu sunt în mod particular omogene, se cântăresc 20 g şi se introduc, împreună cu 500 ml de apă, într-un balon gradat de 1 litru. Se amestecă timp de o oră în agitator. Se limpezeşte cu ajutorul soluţiilor reactiv Carrez I (punctul 3.2) şi II (punctul 3.3) astfel cum se descrie la punctul 5.1, utilizând, de data aceasta, o cantitate de patru ori mai mare din fiecare reactiv. Se completează până la volum cu etanol 80 % (v/v). Se omogenizează şi se filtrează. Se elimină etanolul astfel cum se descrie la punctul 5.1. În absenţa amidonului dextrinizat, se completează până la volum cu apă distilată. |
7.2. | În cazul melaselor şi al materiilor prime pentru furaje bogate în zaharuri şi cvasi lipsite de amidon (roşcove, fulgi de rădăcină de sfeclă uscaţi etc.), se cântăresc 5 g, se introduc într-un balon gradat de 250 ml, se adaugă 200 ml apă distilată şi se amestecă în agitator timp de o oră sau, dacă este necesar, mai mult. Se limpezeşte cu ajutorul soluţiilor reactiv Carrez I (punctul 3.2) şi II (punctul 3.3) astfel cum se descrie la punctul 5.1. Se completează până la volum cu apă rece, se omogenizează şi se filtrează. Pentru determinarea cantităţii totale de zaharuri, se continuă astfel cum se descrie la punctul 5.3. |
8.1. | În scopul prevenirii formării de spumă este recomandabil să se adauge (indiferent de volum) aproximativ 1 ml de 3-metilbutan-1-ol (punctul 3.14) înainte de fierbere cu reactiv Luff-Schoorl. |
8.2. | Diferenţa dintre conţinutul total de zaharuri după inversie exprimat ca glucoză şi conţinutul de zaharuri reductoare exprimat ca glucoză, multiplicată cu 0,95, reprezintă conţinutul procentual de zaharoză. |
8.3. | Pentru a determina conţinutul de zaharuri reductoare, cu excepţia lactozei, se pot adopta două metode: |
8.3.1. | Pentru un calcul aproximativ, conţinutul de lactoză stabilit printr-o metodă de analiză diferită se multiplică cu 0,675, iar rezultatul obţinut se scade din conţinutul de zaharuri reductoare. |
8.3.2. | Pentru un calcul precis al zaharurilor reductoare, cu excepţia lactozei, se utilizează acelaşi eşantion în cele două determinări finale. Una dintre analize se efectuează pe o parte din soluţia obţinută în conformitate cu punctul 5.1, alta pe o parte din soluţia obţinută în cursul determinării lactozei prin metoda stabilită în acest sens (după fermentarea celorlalte tipuri de zaharuri şi limpezire). În ambele cazuri, cantitatea de zaharuri prezentă se determină prin metoda Luff-Schoorl şi se calculează în mg de glucoză. Una dintre valori se scade din cealaltă, iar diferenţa se exprimă ca procent din eşantion. Exemplu Cele două volume considerate corespund, pentru fiecare determinare, unui eşantion de 250 mg. În primul caz, se consumă 17 ml de soluţie de tiosulfat de sodiu 0,1 mol/litru, ceea ce corespunde la 44,2 mg de glucoză; în al doilea, 11 ml, ceea ce corespunde la 27,6 mg de glucoză. Diferenţa este 16,6 mg de glucoză. Prin urmare, conţinutul de zaharuri reductoare (cu excepţia lactozei), calculat ca glucoză, este:
Tabel de valori pentru 25 ml de reactiv Luff-Schoorl ml de Na2 S2 O3 0,1 mol/litru, 2 minute încălzire, 10 minute fierbere
| |||||||||||||||||||||||||
3.1. | Suspensie de Saccharomyces cerevisiae: se suspendă 25 g de drojdie proaspătă în 100 ml de apă. Suspensia se păstrează în frigider o perioadă de maximum o săptămână. |
3.2. | Soluţie Carrez I: se dizolvă 21,9 g de acetat de zinc, Zn (CH3 COO)2 2H2O şi 3 g de acid acetic glacial în apă. Se completează cu apă până la 100 ml. |
3.3. | Soluţie Carrez II: se dizolvă 10,6 g de ferocianură de potasiu, K4 Fe (CN)6 3H2O în apă. Se completează cu apă până la 100 ml. |
3.4. | Reactiv Luff-Schoorl: Amestecând cu grijă, se toarnă soluţia de acid citric (punctul 3.4.2) în soluţia de carbonat de sodiu (punctul 3.4.3). Se adaugă soluţia de sulfat de cupru (punctul 3.4.1) şi se completează până la 1 litru cu apă. Se lasă la decantare peste noapte şi se filtrează. Se verifică concentraţia reactivului obţinut astfel (Cu 0,05 mol/litru; Na2 CO3 1 mol/litru). pH-ul soluţiei este aproximativ 9,4. |
3.4.1. | Soluţie de sulfat de cupru: se dizolvă 25 g de sulfat de cupru, Cu SO4 5H2O, lipsită de fier, în 100 ml apă. |
3.4.2. | Soluţie de acid citric: se dizolvă 50 g de acid citric, C6H8O7*H2O, în 50 ml de apă. |
3.4.3. | Soluţie de carbonat de sodiu: se dizolvă 143,8 g de carbonat de sodiu anhidru în aproximativ 300 ml de apă caldă. Se lasă să se răcească. |
3.5. | Granule de piatră ponce fierte în acid clorhidric, spălate în apă şi uscate. |
3.6. | Iodură de potasiu, soluţie 30 % (greutate/volum). |
3.7. | Acid sulfuric 3 mol/litru. |
3.8. | Soluţie de tiosulfat de sodiu 0,1 mol/litru. |
3.9. | Soluţie de amidon: se adaugă un amestec de 5 g de amidon solubil cu 30 ml de apă la 1 litru de apă în stare de fierbere. Se fierbe timp de 3 minute, se lasă să se răcească şi, dacă este necesar, se adaugă 10 mg de iodură de mercur ca agent de conservare. |
1. | Pentru produsele care conţin mai mult de 40 % zahăr fermentescibil, se utilizează mai mult de 5 ml de suspensie de drojdie (punctul 3.1). |
2. | În hrana «cu conţinut redus de lactoză» (de exemplu, laptele pentru pisici), lactoza este convertită în fructoză, care nu este complet fermentată în decurs de două ore, ceea ce duce la rezultate pozitive mai mari sau false (deoarece reziduurile de fructoză rămân în extract). Tabel de valori pentru 25 ml de reactiv Luff-Schoorl ml de Na2 S2 O3 0,1 mol/litru, două minute încălzire, 10 minute fierbere
| |||||||||||||||||||||||||
3.1. | Acid clorhidric, soluţie cu concentraţie 25 % (g/g): 1,126 g/ml. |
3.2. | Acid clorhidric, soluţie 1,13 % (greutate/volum) Concentraţia se verifică prin titrare folosind o soluţie de hidroxid de sodiu 0,1 mol/litru în prezenţa roşului de metil 0,1 % (greutate/volum) în etanol 94 % (v/v). Pentru neutralizarea a 10 ml sunt necesari 30,94 ml de NaOH 0,1 mol/litru. |
3.3. | Soluţie Carrez I: se dizolvă 21,9 g de acetat de zinc, Zn (CH3 COO)2 2H2O şi 3 g de acid acetic glacial în apă. Se completează cu apă până la 100 ml. |
3.4. | Soluţie Carrez II: se dizolvă 10,6 g de ferocianură de potasiu, K4 Fe (CN)6 3H2O în apă. Se completează cu apă până la 100 ml. |
3.5. | Etanol, soluţie cu concentraţie de 40 % (v/v): 0,948 g/ml la 20 °C. |
4.1. | Flacon Erlenmeyer de 250 ml cu îmbinare de sticlă şlefuită standard şi cu condensator cu reflux. |
4.2. | Polarimetru sau zaharimetru. |

P | = | rotaţia optică totală în grade unghiulare |
P’ | = | rotaţia optică în grade unghiulare a substanţelor solubile în etanol 40 % (V/V) |
| = | rotaţia optică specifică a amidonului pur. Valorile numerice acceptate în mod convenţional pentru acest factor sunt următoarele: |
+ 185,9° | : | amidon din orez |
+ 185,7° | : | amidon din cartofi |
+ 184,6° | : | amidon din porumb |
+ 182,7° | : | amidon din grâu |
+ 181,5° | : | amidon din orz |
+ 181,3° | : | amidon din ovăz |
+ 184,0° | : | alte tipuri de amidon şi amestecuri de amidon în furaje combinate |

S | = | rotaţia optică totală în grade zaharimetrice |
S’ | = | rotaţia optică în grade zaharimetrice a substanţelor solubile în etanol 40 % (v/v) |
N | = | greutatea (g) a zaharozei în 100 ml de apă determinând o rotaţie optică de 100 grade zaharimetrice măsurată cu un tub de 200 mm 16,29 g pentru zaharimetrele franceze 26,00 g pentru zaharimetrele germane 20,00 g pentru zaharimetrele mixte. |
| = | rotaţia optică specifică a amidonului pur (a se vedea punctul 6.1) |
7.1. | În cazul în care eşantionul conţine mai mult de 6 % carbonaţi, calculaţi sub formă de carbonat de calciu, aceştia trebuie distruşi prin tratare cu o cantitate perfect adecvată de acid sulfuric diluat înaintea determinării rotaţiei optice totale. |
7.2. | În cazul produselor cu un conţinut mare de lactoză, cum ar fi zerul praf sau laptele praf degresat, se procedează după cum urmează după adăugarea a 80 ml etanol (punctul 3.5). La balon se fixează un condensator cu reflux, iar balonul se scufundă într-o baie de apă la 50 °C timp de 30 de minute. Se lasă să se răcească şi se continuă analiza astfel cum se indică la punctul 5.3. |
7.3. | În cazul în care sunt prezente în cantităţi semnificative în furaje, următoarele materii prime furajere sunt cunoscute ca dând naştere la interferenţe atunci când conţinutul de amidon se determină prin metoda polarimetrică şi, din acest motiv, se pot obţine rezultate incorecte: - produse din sfeclă (de zahăr), precum pulpă de sfeclă (de zahăr), melasă de sfeclă (de zahăr), pulpă melasată de sfeclă (de zahăr), vinasă de sfeclă (de zahăr), zahăr (din sfeclă); - pulpă de citrice; - seminţe de in; şrot de seminţe de in; şrot de seminţe de in rezultat după extracţie; - seminţe de rapiţă; şrot de seminţe de rapiţă; şrot de seminţe de rapiţă rezultat după extracţie; coji de seminţe de rapiţă; - seminţe de floarea soarelui; şrot de seminţe de floarea soarelui rezultat după extracţie; seminţe de floarea soarelui parţial decorticate, rezultate după extracţie; - şrot de copra; şrot de copra rezultat după extracţie; - pulpă de cartofi; - drojdie deshidratată; - produse bogate în inulină (de exemplu, fulgi şi făină de topinambur); - jumări; - produse din soia În aceste cazuri, se poate aplica metoda de analiză prevăzută de Regulamentul (CE) nr. 121/2008 al Comisiei (7). Această metodă poate fi utilizată şi pentru furajele care conţin mai puţin de 1 % amidon. (7)Regulamentul (CE) nr. 121/2008 al Comisiei din 11 februarie 2008 de stabilire a metodei de analiză pentru determinarea conţinutului de amidon din preparatele de tipul celor utilizate pentru hrana animalelor (cod NC 2309) (JO L 37, 12.2.2008, p. 3). |
4.1. | Plită. |
4.2. | Cuptor electric cu muflă, dotat cu termostat. |
4.3. | Creuzete pentru calcinare fabricate din silice, porţelan sau platină, de formă rectangulară (aproximativ 60 × 40 × 25 mm) sau circulară (diametru: 60-75 mm, înălţime: 20-40 mm). |
5.1. | Se introduce creuzetul în cuptorul cu muflă calibrat, reglat la 550 °C. Se menţine la această temperatură până la obţinerea unei cenuşi albe, gri deschis sau roşiatice, aparent lipsită de particule carbonizate. Se introduce creuzetul într-un desicator, se lasă să se răcească şi se cântăreşte imediat. |
5.2. | Se introduce creuzetul în cuptorul cu muflă calibrat, reglat la 550 °C. Se calcinează timp de 3 ore. Se introduce creuzetul într-un desicator, se lasă să se răcească şi se cântăreşte imediat. Se calcinează din nou timp de 30 de minute pentru a asigura că greutatea cenuşii rămâne constantă (pierderea de greutate între două cântăriri succesive trebuie să fie mai mică sau egală cu 1 mg). |
7.1. | Cenuşa substanţelor dificil de calcinat trebuie supusă unei calcinări iniţiale timp de cel puţin trei ore, urmată de răcire şi de adăugarea câtorva picături de soluţie de nitrat de amoniu 20 % sau de apă (cu grijă, pentru a evita dispersarea cenuşii şi formarea de aglomerări). Se continuă calcinarea după uscarea în cuptor. Operaţia se repetă până când calcinarea este completă. |
7.2. | În cazul substanţelor rezistente la tratamentul descris la punctul 7.1, se procedează în felul următor: după calcinare timp de trei ore, se introduce cenuşa în apă caldă şi se filtrează printr-un filtru mic, lipsit de cenuşă. Filtrul şi conţinutul său se calcinează în creuzetul iniţial. Filtratul se introduce în creuzetul răcit, se evaporă până la uscare, se calcinează şi se cântăreşte. |
7.3. | În cazul uleiurilor şi grăsimilor, se cântăresc cu precizie 25 g de eşantion într-un creuzet de dimensiuni adecvate. Se carbonizează prin aprinderea materialului cu ajutorul unei benzi de filtru de hârtie, lipsit de cenuşă. După combustie, se umectează cu cât mai puţină apă. Se usucă şi se calcinează astfel cum se descrie la punctul 5. |
1.1. | Metoda A: aplicabilă materiilor prime furajere organice furaje şi majorităţii furajelor combinate; |
1.2. | Metoda B: aplicabilă compuşilor şi amestecurilor minerale, precum furajelor combinate al căror conţinut de substanţe insolubile în acid clorhidric, determinat conform metodei A, este mai mare de 1 %. |
2.1. | Metoda A: eşantionul se calcinează, cenuşa se fierbe în acid clorhidric, iar reziduul insolubil se filtrează şi se cântăreşte. |
2.2. | Metoda B: eşantionul se tratează cu acid clorhidric. Soluţia se filtrează, reziduul se calcinează, iar cenuşa astfel obţinută se tratează conform metodei A. |
3.1. | Acid clorhidric 3 mol/litru. |
3.2. | Acid tricloracetic, soluţie 20 % (greutate/volum). |
3.3. | Acid tricloracetic, soluţie 1 % (greutate/volum). |
4.1. | Plită. |
4.2. | Cuptor electric cu muflă, dotat cu termostat. |
4.3. | Creuzete pentru calcinare fabricate din silice, porţelan sau platină, de formă rectangulară (aproximativ 60 × 40 × 25 mm) sau circulară (diametru: 60-75 mm, înălţime: 20-40 mm). |
4.4. | Filtre lipsite de cenuşă |
3.1. | Carbonat de calciu. |
3.2. | Acid clorhidric, |
3.3. | Acid azotic, |
3.4. | Acid azotic, |
3.5. | Acid sulfuric, |
3.6. | Reactiv molibdovanadat: se amestecă 200 ml de soluţie de heptamolibdat de amoniu (punctul 3.6.1), 200 ml de soluţie de monovanadat de amoniu (punctul 3.6.2) şi 134 ml de acid azotic (punctul 3.4) într-un balon gradat de 1 litru. Se completează până la volum cu apă. |
3.6.1. | Soluţie de heptamolibdat de amoniu: se dizolvă în apă fierbinte 100 g de heptamolibdat de amoniu (NH4) 6Mo7O24.4H2O. Se adaugă 10 ml de amoniac (concentraţie 0,91 g/ml) şi se completează cu apă până la 1 litru. |
3.6.2. | Soluţie de monovanadat de amoniu: se dizolvă 2,35 g de monovanadat de amoniu NH4VO3 în 400 ml de apă fierbinte. Amestecând constant, se adaugă lent 20 ml de acid azotic diluat [7 ml de HNO3 (punctul 3.4) + 13 ml de H2O] şi se completează cu apă până la 1 litru. |
3.7. | Soluţie etalon de 1 mg de fosfor per ml: se dizolvă 4,387 g de fosfat diacid de potasiu KH2PO4 în apă. Se completează cu apă până la 1 litru. |
4.1. | Creuzete pentru calcinare din silice, porţelan sau platină. |
4.2. | Cuptor cu muflă electric, dotat cu termostat reglat la 550 °C. |
4.3. | Flacon Kjeldahl de 250 ml. |
4.4. | Baloane gradate şi pipete de precizie. |
4.5. | Spectrofotometru. |
4.6. | Eprubete cu diametru de aproximativ 16 mm, cu dopuri gradate la un diametru de 14,5 mm; capacitate: 25-30 ml. |
3.1. | Soluţie de tiocianat de amoniu 0,1 mol/litru. |
3.2. | Soluţie de nitrat de argint 0,1 mol/litru. |
3.3. | Soluţie saturată de sulfat feric de amoniu (NH4)Fe(SO4)2. |
3.4. | Acid azotic, concentraţie: 1,38 g/ml. |
3.5. | Eter dietilic. |
3.6. | Acetonă. |
3.7. | Soluţie Carrez I: se dizolvă 21,9 g de acetat de zinc, Zn (CH3COO)2·2H2O şi 3 g de acid acetic glacial în apă. Se completează cu apă până la 100 ml. |
3.8. | Soluţie Carrez II: se dizolvă 10,6 g de ferocianură de potasiu, K4Fe(CN)6·3H2O în apă. Se completează cu apă până la 100 ml. |
3.9. | Cărbune activ, lipsit de cloruri şi fără a le absorbi. |

V1 | = | ml de soluţie de nitrat de argint 0,1 mol/l adăugată; |
V2 | = | ml de soluţie de tiocianat de amoniu 0,1 mol/l utilizată la titrare; |
m | = | g din greutatea eşantionului în partea alicotă. |
7.1. | Titrarea se poate face şi prin potenţiometrie sau amperometrie. |
7.2. | În cazul produselor foarte bogate în uleiuri şi grăsimi, se procedează mai întâi la o degresare cu eter dietilic sau cu eter de petrol. |
7.3. | În cazul făinii de peşte, titrarea se poate efectua prin metoda Mohr." |
3.1. | Etanol, |
3.2. | Eter de petrol, interval de fierbere 40-60 °C |
3.3. | Metanol |
3.4. | Soluţie de hidroxid de potasiu, c = 50 g/100 ml |
3.5. | Soluţie de ascorbat de sodiu, c = 10 g/100 ml (a se vedea observaţiile de la punctul 7.7) |
3.6. | Sulfură de sodiu, Na2S · x H2O (x = 7 - 9) |
3.6.1. | Soluţie de sulfură de sodiu, c = 0,5 mol/l în glicerol, |
3.7. | Soluţie de fenolftaleină, c = 2 g/100 ml în etanol (punctul 3.1) |
3.8. | 2-propanol |
3.9. | Fază mobilă pentru HPLC: amestec de metanol (punctul 3.3) şi apă, de exemplu 980 + 20 (v + v). Proporţia exactă este determinată de caracteristicile coloanei folosite. |
3.10. | Azot, lipsit de oxigen |
3.11. | All-trans-vitamină A acetat, extra pură, cu activitate certificată, de exemplu, 2,80 × 106 UI/g |
3.11.1. | Soluţie stoc de all-trans-vitamină A acetat: Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 50 mg de vitamină A acetat (punctul 3.11) într-un balon gradat de 100 ml. Se dizolvă în 2-propanol (punctul 3.8) şi se completează până la semn cu acelaşi solvent. Concentraţia nominală a acestei soluţii este de 1 400 UI vitamină A per ml. Conţinutul exact se determină în conformitate cu indicaţiile de la punctul 5.6.3.1. |
3.12. | All-trans-vitamină A palmitat, extra pură, cu activitate certificată, de exemplu 1,80 × 106 UI/g |
3.12.1. | Soluţie stoc de all-trans-vitamină A palmitat: Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 80 mg de vitamină A palmitat (punctul 3.12) într-un balon gradat de 100 ml. Se dizolvă în 2-propanol (punctul 3.8) şi se completează până la semn cu acelaşi solvent. Concentraţia nominală a acestei soluţii este de 1 400 UI vitamină A per ml. Conţinutul exact se determină în conformitate cu indicaţiile de la punctul 5.6.3.2. |
3.13. | 2,6-di-terţ-butil-4-metilfenol (BHT) (a se vedea observaţiile de la punctul 7.5) |
4.1. | Evaporator rotativ cu vid |
4.2. | Sticlărie laborator brună |
4.2.1. | Baloane cu fund plat sau flacoane tip Erlenmeyer, 500 ml, cu orificiu din sticlă şlefuită. |
4.2.2. | Baloane gradate cu dopuri de sticlă şlefuită, cu gât îngust, de 10, 25, 100 şi 500 ml. |
4.2.3. | Pâlnii de separare, conice, 1 000 ml, cu dopuri de sticlă şlefuită. |
4.2.4. | Flacoane piriforme, 250 ml, cu orificiu din sticlă şlefuită. |
4.3. | Condensator Allihn, cu lungime a mantalei de 300 mm, cu îmbinare de sticlă şlefuită şi cu adaptor pentru conductă de alimentare cu gaz |
4.4. | Filtru de hârtie plisată pentru separarea fazelor, cu diametru de 185 mm (de exemplu Schleicher & Schuell 597 HY 1/2) |
4.5. | Echipament HPLC cu sistem de injecţie |
4.5.1. | Coloană pentru cromatografie lichidă, 250 mm × 4 mm, C18, cu particule de 5 sau 10 |
4.5.2. | Detector de UV sau de fluorescenţă, cu ajustare variabilă a lungimii de undă. |
4.6. | Spectrofotometru cu celule de cuarţ de 10 mm. |
4.7. | Baie de apă cu agitator magnetic. |
4.8. | Aparat de extracţie (a se vedea figura 1) compus din: |
4.8.1. | Cilindru din sticlă cu capacitate de 1 l prevăzut cu gât şi dop de sticlă şlefuite. |
4.8.2. | Piesă din sticlă şlefuită echipată cu o tijă laterală şi un tub reglabil care trece prin centru. Tubul ajustabil are un capăt inferior în formă de «U» şi o duză la capătul opus, astfel încât stratul superior de lichid din cilindru să poată fi transferat într-o pâlnie de separare. |
Coloană pentru cromatografie lichidă (punctul 4.5.1): | 250 mm × 4 mm, C18, particule de 5 sau 10 |
Faza mobilă (punctul 3.9): | Amestec de metanol (punctul 3.3) şi apă de exemplu 980 + 20 (v + v). |
Debit: | 1-2 ml/min |
Detector (punctul 4.5.2): | detector de UV (punctul 325 nm) sau detector de fluorescenţă (excitaţie: 325 nm/emisie: 475 nm) |




c | = | concentraţia de vitamină A a soluţiei de eşantion (punctul 5.4), în UI/ml; |
V1 | = | volumul soluţiei de eşantion (punctul 5.4), în ml; |
V2 | = | volumul de alicotă prelevat la punctul 5.4, în ml; |
m | = | greutatea porţiunii de testat, în g. |
7.1. | Pentru eşantioanele cu concentraţii mici de vitamină A poate fi utilă combinarea extractelor cu eter de petrol provenite din două operaţii de saponificare (cantitate cântărită: 25 g) într-o soluţie de eşantion pentru determinare prin HPLC. |
7.2. | Eşantionul prelevat pentru analiză nu conţine mai mult de 2 g de grăsime. |
7.3. | Dacă nu are loc separaţia fazelor, se adaugă cca 10 ml de etanol (punctul 3.1) pentru a fragmenta emulsia. |
7.4. | În cazul uleiului din ficat de cod şi al altor grăsimi pure, timpul de saponificare se prelungeşte la 45-60 minute. |
7.5. | BHT poate fi înlocuit cu hidrochinonă. |
7.6. | Utilizându-se o coloană cu fază normală, separarea izomerilor de retinol este posibilă. Dar în acest caz, înălţimile (ariile) vârfurilor izomerilor all-cis şi all-trans trebuie însumate pentru a face calcule. |
7.7. | Soluţia de ascorbat de sodiu poate fi înlocuită cu cca 150 mg de acid ascorbic. |
7.8. | Soluţia de sulfură de sodiu poate fi înlocuită cu cca 50 mg de EDTA. |
7.9. | În cazul analizării vitaminei A în înlocuitorii de lapte, se acordă o atenţie deosebită la - saponificare (punctul 5.2): din cauza cantităţii de grăsimi prezente în eşantion, poate fi necesară creşterea cantităţii de soluţie de hidroxid de potasiu (punctul 3.4); - extracţie (punctul 5.3): din cauza prezenţei emulsiilor, poate fi necesară adaptarea valorii raportului de 2:1 pentru apă/etanol. Pentru a verifica dacă metoda de analizare aplicată generează rezultate fiabile pentru această matrice specifică (înlocuitor de lapte), se aplică un test de recuperare pe o porţie suplimentară de testat. Dacă rata de recuperare este mai mică de 80 %, rezultatul analitic trebuie corectat în funcţie de recuperare. |
Preamestec | Furaje de tip preamestec | Concentrate minerale | Furaje proteice | Hrană pentru purcei | |
L | 13 | 12 | 13 | 12 | 13 |
n | 48 | 45 | 47 | 46 | 49 |
medie (UI/kg) | 17,02 × 106 | 1,21 × 106 | 537 100 | 151 800 | 18 070 |
sr (UI/kg) | 0,51 × 106 | 0,039 × 106 | 22 080 | 12 280 | 682 |
r (UI/kg) | 1,43 × 106 | 0,109 × 106 | 61 824 | 34 384 | 1 910 |
CVr [%] | 3,0 | 3,5 | 4,1 | 8,1 | 3,8 |
sR (UI/kg) | 1,36 × 106 | 0,069 × 106 | 46 300 | 23 060 | 3 614 |
R (UI/kg) | 3,81 × 106 | 0,193 × 106 | 129 640 | 64 568 | 10 119 |
CVR [%] | 8,0 | 6,2 | 8,6 | 15 | 20 |
L: număr de laboratoare n: număr de valori unice sr: deviaţia standard a repetabilităţii sR: deviaţia standard a reproductibilităţii r: repetabilitate R: reproductibilitate CVr: coeficientul de variaţie a repetabilităţii CVR: coeficientul de variaţie a reproductibilităţii | |||||

3.1. | Etanol, |
3.2. | Eter de petrol, interval de fierbere 40-60 °C |
3.3. | Metanol |
3.4. | Soluţie de hidroxid de potasiu, c = 50 g/100 ml |
3.5. | Soluţie de ascorbat de sodiu, c = 10 g/100 ml (a se vedea observaţiile de la punctul 7.7) |
3.6. | Sulfură de sodiu, Na2S · x H2O (x = 7 - 9) |
3.6.1. | Soluţie de sulfură de sodiu, c = 0,5 mol/l în glicerol, |
3.7. | Soluţie de fenolftaleină, c = 2 g/100 ml în etanol (punctul 3.1) |
3.8. | Fază mobilă pentru HPLC: amestec de metanol (punctul 3.3) şi apă, de exemplu 980 + 20 (v + v). Proporţia exactă este determinată de caracteristicile coloanei folosite. |
3.9. | Azot, lipsit de oxigen |
3.10. | DL- |
3.10.1. | Soluţie stoc de DL- |
3.11. | DL- |
3.11.1. | Soluţie stoc de DL- |
3.12. | 2,6-di-terţ-butil-4-metilfenol (BHT) (a se vedea observaţiile de la punctul 7.5) |
4.1. | Evaporator rotativ cu generare de film. |
4.2. | Sticlărie laborator brună |
4.2.1. | Baloane cu fund plat sau flacoane tip Erlenmeyer, 500 ml, cu orificiu din sticlă şlefuită; |
4.2.2. | Baloane gradate cu dopuri de sticlă şlefuită, cu gât îngust, de 10, 25, 100 şi 500 ml; |
4.2.3. | Pâlnii de separare, conice, 1 000 ml, cu dopuri de sticlă şlefuită; |
4.2.4. | Flacoane piriforme, 250 ml, cu orificiu din sticlă şlefuită. |
4.3. | Condensator Allihn, cu lungime a mantalei de 300 mm, cu îmbinare de sticlă şlefuită şi cu adaptor pentru conductă de alimentare cu gaz. |
4.4. | Filtru de hârtie plisată pentru separarea fazelor, cu diametru de 185 mm (de exemplu Schleicher & Schuell 597 HY 1/2). |
4.5. | Echipament HPLC cu sistem de injecţie |
4.5.1. | Coloană pentru cromatografie lichidă, 250 mm × 4 mm, C18, particule de 5 sau 10 |
4.5.2. | Detector de fluorescenţă sau de UV, cu ajustare variabilă a lungimii de undă. |
4.6. | Spectrofotometru cu celule de cuarţ de 10 mm. |
4.7. | Baie de apă cu agitator magnetic. |
4.8. | Aparat de extracţie (a se vedea figura 1) compus din: |
4.8.1. | Cilindru din sticlă cu capacitate de 1 l prevăzut cu gât şi dop de sticlă şlefuite; |
4.8.2. | Piesă din sticlă şlefuită echipată cu o tijă laterală şi un tub reglabil care trece prin centru. Tubul ajustabil are un capăt inferior în formă de «U» şi o duză la capătul opus, astfel încât stratul superior de lichid din cilindru să poată fi transferat într-o pâlnie de separare. |
Coloană pentru cromatografie lichidă (punctul 4.5.1): | 250 mm × 4 mm, C18, particule de 5 sau 10 |
Faza mobilă (punctul 3.8): | Amestec de metanol (punctul 3.3) şi apă de exemplu, 980 + 20 (v + v). |
Debit: | 1-2 ml/min |
Detector (punctul 4.5.2) | Detector de fluorescenţă (excitaţie: 295 nm/ emisie: 330 nm) sau detector UV (292 nm) |

c | = | concentraţia de vitamina E (ca DL- |
V1 | = | volumul soluţiei de eşantion (punctul 5.4), în ml |
V2 | = | volumul de alicotă prelevat la punctul 5.4, în ml |
m | = | greutatea porţiunii de testat, în g |
7.1. | Pentru eşantioanele cu concentraţii mici de vitamină E poate fi utilă combinarea extractelor cu eter de petrol provenite din două operaţii de saponificare (cantitate cântărită: 25 g) într-o soluţie de eşantion pentru determinare prin HPLC. |
7.2. | Eşantionul prelevat pentru analiză nu conţine mai mult de 2 g de grăsime. |
7.3. | Dacă nu are loc separaţia fazelor, se adaugă cca 10 ml de etanol (punctul 3.1) pentru a fragmenta emulsia. |
7.4. | Odată efectuată măsurătoarea spectrofotometrică a soluţiei de DL- |
7.5. | BHT poate fi înlocuit cu hidrochinonă. |
7.6. | Utilizându-se o coloană în fază normală este posibilă separarea tocoferolilor |
7.7. | Soluţia de ascorbat de sodiu poate fi înlocuită cu cca 150 mg de acid ascorbic. |
7.8. | Soluţia de sulfură de sodiu poate fi înlocuită cu cca 50 mg de EDTA. |
7.9. | Acetatul de vitamina E hidrolizează foarte rapid în condiţii alcaline fiind, prin urmare, foarte sensibil la oxidare, mai ales în prezenţa oligoelementelor, cum ar fi fierul sau cuprul. Determinarea vitaminei E în preamestecuri la niveluri de peste 5 000 mg/kg ar avea drept consecinţă o degradare a vitaminei E. Prin urmare, pentru confirmare se recomandă o metodă HPLC care include o digestie enzimatică a preparatului de vitamina E fără o etapă de saponificare alcalină |
Preamestec | Furaje de tip preamestec | Concentrate minerale | Furaje proteice | Hrană pentru purcei | |
L | 12 | 12 | 12 | 12 | 12 |
n | 48 | 48 | 48 | 48 | 48 |
medie (mg/kg) | 17 380 | 1 187 | 926 | 315 | 61,3 |
sr (mg/kg) | 384 | 45,3 | 25,2 | 13,0 | 2,3 |
r (mg/kg) | 1 075 | 126,8 | 70,6 | 36,4 | 6,4 |
CVr [%] | 2,2 | 3,8 | 2,7 | 4,1 | 3,8 |
sR (mg/kg) | 830 | 65,0 | 55,5 | 18,9 | 7,8 |
R (mg/kg) | 2 324 | 182,0 | 155,4 | 52,9 | 21,8 |
CVR [%] | 4,8 | 5,5 | 6,0 | 6,0 | 12,7 |
L: număr de laboratoare n: număr de valori unice sr: deviaţia standard a repetabilităţii sR: deviaţia standard a reproductibilităţii r: repetabilitate R: reproductibilitate CVr: coeficientul de variaţie a repetabilităţii CVR: coeficientul de variaţie a reproductibilităţii | |||||

3.1. | Acid clorhidric. (d:1,19 g/ml). |
3.2. | Acid clorhidric. (6 mol/litru). |
3.3. | Acid clorhidric. (0,5 mol/litru). |
3.4. | Acid fluorhidric 38-40 % (v/v) cu un conţinut de fier (Fe) de mai puţin de 1 mg/litru şi un reziduu după evaporare de mai puţin de 10 mg (ca sulfat)/litru. |
3.5. | Acid sulfuric. (d: 1,84 g/ml). |
3.6. | Peroxid de hidrogen. [circa 100 volume de oxigen (punctul 30 % în greutate)]. |
3.7. | Soluţie etalon de fier (1 000 |
3.7.1. | Soluţie etalon de lucru de fier (100 |
3.8. | Soluţie etalon de cupru (1 000 - se dizolvă 1 g de praf de cupru în 25 ml de acid clorhidric 6 mol/litru (punctul 3.2), se adaugă 5 ml de peroxid de hidrogen (punctul 3.6) şi se completează până la un litru cu apă. |
3.8.1. | Soluţie etalon de cupru de lucru (10 |
3.9. | Soluţie etalon de mangan (1 000 - se dizolvă 1 g de praf de mangan în 25 ml de acid clorhidric 6 mol/litru (punctul 3.2) şi se completează până la un litru cu apă. |
3.9.1. | Soluţie etalon de lucru de mangan (10 |
3.10. | Soluţie etalon de zinc (1 000 - se dizolvă 1 g de zinc sub formă de benzi sau folii în 25 ml de acid clorhidric 6 mol/litru (punctul 3.2) şi se completează până la un litru cu apă. |
3.10.1. | Soluţie etalon de lucru de zinc (10 |
3.11. | Soluţie de clorură de lantan: se dizolvă 12 g de oxid de lantan în 150 ml de apă, se adaugă 100 ml de acid clorhidric 6 mol/litru (punctul 3.2) şi se completează până la un litru cu apă. |
4.1. | Cuptor cu muflă cu reglare de temperatură şi, preferabil, cu dispozitiv de înregistrare. |
4.2. | Sticlăria trebuie să fie de tip borosilicat rezistent şi se recomandă folosirea aparaturii rezervate exclusiv pentru determinarea oligoelementelor. |
4.3. | Spectrofotometru de absorbţie atomică care îndeplineşte cerinţele metodei cu privire la sensibilitatea şi precizia în intervalul necesar. |
5.1.1.1. | Se introduc 5-10 g de eşantion cântărit cu o abatere de 0,2 mg într-un creuzet de cuarţ sau platină [a se vedea nota (b)], se usucă într-un cuptor la 105 °C şi se introduce creuzetul în cuptorul cu muflă neîncălzit (punctul 4.1). Se închide cuptorul [a se vedea nota (c)] şi se măreşte treptat temperatura până la 450-475 °C, timp de circa 90 de minute. Se menţine temperatura timp de 4-16 ore (de exemplu, peste noapte) pentru a îndepărta materialul carbonic şi apoi se deschide cuptorul şi se lasă să se răcească [a se vedea nota (d)]. Se umezeşte cenuşa cu apă şi se transferă substanţa obţinută într-un pahar de laborator de 250 ml. Se spală creuzetul cu o cantitate totală de circa 5 ml de acid clorhidric (punctul 3.1) şi se adaugă acesta din urmă încet şi cu atenţie în paharul de laborator (poate apărea o reacţie puternică din cauza formării de CO2). Se adaugă acid clorhidric (punctul 3.1), picătură cu picătură, agitându-se, până când efervescenţa încetează. Se evaporă până la uscare, agitându-se din când în când cu o baghetă de sticlă. Se adaugă apoi 15 ml de acid clorhidric 6 mol/litru (punctul 3.2) la reziduu, apoi circa 120 ml de apă. Se amestecă cu bagheta de sticlă, care se lasă în paharul de laborator, şi se acoperă paharul cu o sticlă de ceas. Se aduce încet la fierbere şi se menţine la punctul de fierbere până când cenuşa se dizolvă complet. Se filtrează cu hârtie de filtru lipsită de cenuşă şi se colectează filtratul într-un balon gradat de 250 ml. Se spală paharul de laborator şi se filtrează cu 5 ml de acid clorhidric 6 mol/litru fierbinte (punctul 3.2) şi de două ori cu apă fiartă. Se umple balonul gradat cu apă până la semn (concentraţia de HCl: circa 0,5 mol/litru). |
5.1.1.2. | Dacă reziduul din filtru este negru (cărbune), se reintroduce în cuptor şi se calcinează din nou la 450-475 °C. Calcinarea, care necesită numai câteva ore (între trei şi cinci ore), este completă când cenuşa este albă sau aproape albă. Se dizolvă reziduul cu aproximativ 2 ml de acid clorhidric (punctul 3.1), se evaporă până la uscare şi se adaugă 5 ml de acid clorhidric 6 mol/litru (punctul 3.2). Se încălzeşte, se filtrează soluţia în balonul gradat şi se umple cu apă până la semn (concentraţia HCl: circa 0,5 mol/litru). Note: (a) Este important ca atunci când se măsoară oligoelementele să se ţină cont de riscul de contaminare, în special cu zinc, cupru şi fier. Din acest motiv, echipamentul folosit în cursul preparării eşantioanelor trebuie să nu conţină aceste metale. Pentru reducerea riscului general de contaminare, se lucrează într-o atmosferă fără praf, folosind un echipament curăţat cu mare atenţie şi o sticlărie spălată cu grijă. Determinarea zincului este în mod special sensibilă la multe tipuri de contaminare, de exemplu prin intermediul sticlăriei, al reactivilor, al prafului etc. (b) Greutatea eşantionului care urmează să fie calcinat rezultă din cantitatea aproximativă de oligoelemente din furaje în raport cu sensibilitatea spectrofotometrului folosit. Pentru anumite tipuri de furaje, sărace în oligoelemente, poate fi necesar să se înceapă cu un eşantion de 10-20 g şi să se completeze soluţia finală numai până la 100 ml. (c) Arderea trebuie efectuată într-un cuptor închis fără injectare de aer sau de oxigen. (d) Temperatura indicată de pirometru nu trebuie să depăşească 475 °C. |
| 0 | 0,5 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
ml de soluţie etalon de lucru (punctul 3.7.1) (1 ml = 100 | 0 | 0,5 | 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
ml HCl (punctul 3.2) | 7 | 7 | 7 | 7 | 7 | 7 | 7 |
+ 10 ml de soluţie de clorură de lantan (punctul 3.11) şi se completează până la 100 ml cu apă | |||||||
| 0 | 0,1 | 0,2 | 0,4 | 0,6 | 0,8 | 1,0 |
ml de soluţie etalon de lucru (punctul 3.8.1) (1 ml = 10 | 0 | 1 | 2 | 4 | 6 | 8 | 10 |
ml HCl (punctul 3.2) | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 | 8 |
| 0 | 0,1 | 0,2 | 0,4 | 0,6 | 0,8 | 1,0 |
ml de soluţie etalon de lucru (punctul 3.9.1) (1 ml = 10 | 0 | 1 | 2 | 4 | 6 | 8 | 10 |
ml HCl (punctul 3.2) | 7 | 7 | 7 | 7 | 7 | 7 | 7 |
+ 10 ml de soluţie de clorură de lantan (punctul 3.11) şi se completează până la 100 ml cu apă | |||||||
| 0 | 0,05 | 0,1 | 0,2 | 0,4 | 0,6 | 0,8 |
ml de soluţie etalon de lucru (punctul 3.10.1) (1 ml = 10 | 0 | 0,5 | 1 | 2 | 4 | 6 | 8 |
ml HCl (punctul 3.2) | 7 | 7 | 7 | 7 | 7 | 7 | 7 |
+ 10 ml de soluţie de clorură de lantan (punctul 3.11) şi se completează până la 100 ml cu apă | |||||||
3.1. | Acetonitril, de calitate HPLC |
3.2. | Răşină Amberlit XAD-2 |
3.3. | Acetat de amoniu |
3.4. | Acetat de etil |
3.5. | Acid acetic glacial |
3.6. | Substanţa etalon halofuginonă (DL-trans-7-brom-6-clor-3-[3-(3-hidroxi-2-piperidil)acetonil]chinazolin-4-(3H)-onă hidrobromid, E 764) |
3.6.1. | Soluţie etalon stoc de halofuginonă, 100 Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 50 mg de halofuginonă (punctul 3.6) într-un balon gradat de 500 ml, apoi se dizolvă în soluţie tampon de acetat de amoniu (punctul 3.18), se completează până la semn cu soluţie tampon şi se amestecă. Această soluţie este stabilă timp de trei săptămâni, la 5 °C, dacă este depozitată la întuneric. |
3.6.2. | Soluţii de calibrare Se transferă 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 şi 6,0 ml de soluţie etalon stoc (punctul 3.6.1) într-o serie de baloane gradate de 100 ml. Se completează până la semn cu fază mobilă (punctul 3.21) şi se amestecă. Soluţiile au concentraţii de 1,0, 2,0, 3,0, 4,0 şi 6,0 |
3.7. | Acid clorhidric ( |
3.8. | Metanol |
3.9. | Nitrat de argint |
3.10. | Ascorbat de sodiu |
3.11. | Carbonat de sodiu |
3.12. | Clorură de sodiu |
3.13. | EDTA (acid etilendiaminotetraacetic, sare disodică) |
3.14. | Apă, de calitate HPLC |
3.15. | Soluţie de carbonat de sodiu, c = 10 g/100 ml |
3.16. | Soluţie de carbonat de sodiu saturată cu clorură de sodiu, c = 5 g/100 ml Se dizolvă 50 g de carbonat de sodiu (punctul 3.11) în apă, se diluează până la 1 litru şi se adaugă clorură de sodiu (punctul 3.12) până la saturarea soluţiei. |
3.17. | Acid clorhidric, aproximativ 0,1 mol/l Se diluează 10 ml de HCl (punctul 3.7) în apă până la 1 litru. |
3.18. | Soluţie tampon de acetat de amoniu, aproximativ 0,25 mol/l Se dizolvă 19,3 g de acetat de amoniu (punctul 3.3) şi 30 ml de acid acetic (punctul 3.5) în apă (punctul 3.14) şi se diluează până la 1 litru. |
3.19. | Prepararea răşinii de Amberlit XAD-2 Se spală cu apă o cantitate corespunzătoare de Amberlit (punctul 3.2), până la îndepărtarea tuturor ionilor de clor, după cum indică testul cu nitrat de argint (punctul 3.20) efectuat pe faza apoasă eliminată. Apoi se spală răşina cu 50 ml de metanol (punctul 3.8), se elimină metanolul şi se depozitează răşina în metanol proaspăt. |
3.20. | Soluţie de nitrat de argint, aproximativ 0,1 mol/l Se dizolvă 0,17 g de nitrat de argint (punctul 3.9) în 10 ml de apă. |
3.21. | Fază mobilă HPLC Se amestecă 500 ml de acetonitril (punctul 3.1) cu 300 ml soluţie tampon de acetat de amoniu (punctul 3.18) şi 1 200 ml de apă (punctul 3.14). Se aduce pH-ul la valoarea 4,3 folosind acid acetic (punctul 3.5). Se trece printr-un filtru de 0,22 |
4.1. | Baie cu ultrasunete |
4.2. | Evaporator rotativ cu generare de film |
4.3. | Centrifugă |
4.4. | Echipament HPLC cu detector de raze UV cu lungimi de undă variabile sau detector cu grup de diode |
4.4.1. | Coloană pentru cromatografie lichidă, 300 mm × 4 mm, C18, particule de 10 |
4.5. | Coloană de sticlă (300 mm × 10 mm) prevăzută cu filtru de sticlă sinterizată şi cu robinet de închidere |
4.6. | Filtre din fibră de sticlă, cu diametru de 150 mm |
4.7. | Filtre cu membrană, 0,45 |
4.8. | Filtre cu membrană, 0,22 |
5.1.1. | Se analizează un furaj martor pentru a verifica absenţa halofuginonei şi a substanţelor interferente. |
5.1.2. | Se efectuează un test de recuperare prin analiza furajului martor care a fost îmbogăţit prin adăugarea unei cantităţi de halofuginonă, similară cu cea prezentă în eşantion. Pentru a obţine o concentraţie de 3 mg/kg se adaugă 300 Notă: Conform acestei metode, furajul martor este similar, ca tip, cu eşantionul, iar la analiză nu se detectează halofuginonă. |

c | : | concentraţia de halofuginonă din soluţia de eşantion, în |
m | : | greutatea porţiunii de testat, în grame. |
Eşantionul A (martor) La primire | Eşantionul B (făină) | Eşantionul C (pelete) | |||
La primire | După două luni | La primire | După două luni | ||
Medie (mg/kg) | ND | 2,80 | 2,42 | 2,89 | 2,45 |
SR [mg/kg] | - | 0,45 | 0,43 | 0,40 | 0,42 |
CVR [%] | - | 16 | 18 | 14 | 17 |
Rec. [%] | 86 | 74 | 88 | 75 | |
ND= nedetectat SR= deviaţia standard a reproductibilităţii CVR= coeficientul de variaţie a reproductibilităţii (%) Rec.= recuperare % | |||||
3.1. | Metanol |
3.2. | Metanol acidifiat Se transferă 4,0 ml de acid clorhidric ( |
3.3. | Acetonitril, de calitate HPLC |
3.4. | Sită moleculară Tip 3A, 8-12 noduri ale sitei (noduri de 1,6-2,5 mm, aluminosilicat cristalin, diametrul porilor 0,3 mm). |
3.5. | Oxid de aluminiu, activitate acidă grad I pentru cromatografia pe coloană Se transferă 100 g de oxid de aluminiu într-un recipient adecvat şi se adaugă 2,0 ml de apă. Se închide şi se agită timp de aproximativ 20 de minute. Se păstrează într-un recipient bine închis. |
3.6. | Soluţie de fosfat diacid de potasiu, c = 0,025 mol/l Se dizolvă 3,40 g de fosfat diacid de potasiu în apă (de calitate HPLC), într-un balon gradat de 1 000 ml, se completează până la semn şi se amestecă. |
3.7. | Soluţie de fosfat acid disodic, c = 0,025 mol/l Se dizolvă 3,55 g de fosfat acid disodic anhidru (sau 4,45 g de dihidrat sau 8,95 g de dodecahidrat) în apă (de calitate HPLC), într-un balon gradat de 1 litru, se completează până la semn şi se amestecă. |
3.8. | Fază mobilă HPLC Se amestecă următorii reactivi: 650 ml de acetonitril (punctul 3.3), 250 ml apă (de calitate HPLC), 50 ml soluţie de fosfat diacid de potasiu (punctul 3.6), 50 ml soluţie de fosfat acid disodic (punctul 3.7). Se trece printr-un filtru de 0,22 |
3.9. | Substanţa etalon Robenidină pură: Clorhidrat de 1,3-bis[(4-clorbenziliden)amino]guanidină. |
3.9.1. | Soluţia etalon stoc de robenidină: 300 Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 30 mg de substanţă etalon de robenidină (punctul 3.9). Se dizolvă în metanol acidifiat (punctul 3.2) într-un balon gradat de 100 ml, se completează până la semn cu acelaşi solvent şi se amestecă. Se împachetează balonul în folie de aluminiu şi se păstrează la întuneric. |
3.9.2. | Soluţia etalon intermediară de robenidină: 12 Se transferă 10,0 ml din soluţia etalon stoc (punctul 3.9.1) într-un balon gradat de 250 ml, se completează până la semn cu faza mobilă (punctul 3.8) şi se amestecă. Se împachetează balonul în folie de aluminiu şi se păstrează la întuneric. |
3.9.3. | Soluţii de calibrare Se transferă 5,0, 10,0, 15,0, 20,0 şi 25,0 ml de soluţie etalon intermediară (punctul 3.9.2) într-o serie de baloane gradate de 50 ml. Se completează până la semn cu fază mobilă (punctul 3.8) şi se amestecă. Aceste soluţii corespund concentraţiilor de 1,2, 2,4, 3,6, 4,8 şi 6,0 |
3.10. | Apă, de calitate HPLC |
4.1. | Coloană de sticlă Construită din sticlă brună, prevăzută cu robinet de închidere şi un rezervor cu capacitatea de aproximativ 150 ml, diametru interior 10-15 mm, lungime 250 mm. |
4.2. | Agitator mecanic sau magnetic |
4.3. | Evaporator rotativ cu generare de film |
4.4. | Echipament HPLC cu detector de radiaţii UV cu lungimi de undă variabile sau cu detector cu grup de diode care funcţionează în intervalul 250-400 nm |
4.4.1. | Coloană pentru cromatografie lichidă: 300 mm x 4 mm, C18, particule de 10 |
4.5. | Hârtie de filtru din fibră de sticlă (Whatman GF/A sau echivalentă) |
4.6. | Filtre cu membrană, 0,22 |
4.7. | Filtre cu membrană, 0,45 |
5.1.1. | Se analizează un furaj martor pentru a verifica absenţa robenidinei şi a substanţelor interferente. |
5.1.2. | Se efectuează un test de recuperare prin analizarea furajului martor (punctul 5.1.1) care a fost îmbogăţit prin adăugarea unei cantităţi de robenidină, similară cu cea prezentă în eşantion. Pentru a obţine o concentraţie de 60 mg/kg, se transferă 3,0 ml din soluţia etalon stoc (punctul 3.9.1) într-un flacon tip Erlenmeyer de 250 ml. Se evaporă soluţia până la cca 0,5 ml într-un curent de azot. Se adaugă 15 g din furajul martor, se amestecă şi se aşteaptă 10 minute înainte de a se începe etapa de extracţie (punctul 5.2). Notă: Pentru această metodă, furajul martor este similar, ca tip, cu eşantionul, iar la analiză nu se detectează robenidină. |

c | = | concentraţia de robenidină din soluţia de eşantion, în |
m | = | greutatea porţiunii de testat, în grame. |
Păsări de curte | Iepuri | |||
Făină | Pelete | Făină | Pelete | |
Medie (mg/kg) | 27,00 | 27,99 | 43,6 | 40,1 |
sr [mg/kg] | 1,46 | 1,26 | 1,44 | 1,66 |
CVr [%] | 5,4 | 4,5 | 3,3 | 4,1 |
SR [mg/kg] | 4,36 | 3,36 | 4,61 | 3,91 |
CVR [%] | 16,1 | 12,0 | 10,6 | 9,7 |
Recuperare (%) | 90,0 | 93,3 | 87,2 | 80,2 |
sr= deviaţia standard a repetabilităţii CVr= coeficientul de variaţie a repetabilităţii, % SR= deviaţia standard a reproductibilităţii CVR= coeficientul de variaţie a reproductibilităţii, (%) | ||||
3.1. | Apă, de calitate HPLC |
3.2. | Acetat de amoniu |
3.3. | Sulfat acid de tetrabutilamoniu (TBHS) |
3.4. | Acetonitril, de calitate HPLC |
3.5. | Metanol, de calitate HPLC |
3.6. | N,N-dimetilformamidă (DMF) |
3.7. | Acid clorhidric, |
3.8. | Substanţă etalon: diclazuril: (+)-4-clorfenil [2,6-diclor-4-(2,3,4,5-tetrahidro-3,5-dioxo-1,2,4-triazin-2-il) fenil] acetonitril, cu puritate garantată |
3.8.1. | Soluţie etalon stoc de diclazuril, 500 Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 25 mg de substanţă etalon de diclazuril (punctul 3.8) într-un balon gradat de 50 ml. Se dizolvă în DMF (punctul 3.6), se completează până la semn cu DMF (punctul 3.6) şi se amestecă. Se împachetează balonul în folie de aluminiu sau se utilizează un balon de culoare brună şi se depozitează în frigider. La o temperatură mai mică sau egală cu 4 °C soluţia este stabilă timp de 1 lună (10). (10) Este posibilă o stabilitate mai lungă (până la 1 an), dar aceasta trebuie confirmată de laboratorul individual. |
3.8.2. | Soluţia etalon de diclazuril, 50 Se transferă 5,00 ml din soluţia etalon stoc (punctul 3.8.1) într-un balon gradat de 50 ml, se completează până la semn cu DMF (punctul 3.6) şi se amestecă. Se împachetează balonul în folie de aluminiu sau se utilizează un balon de culoare brună şi se depozitează în frigider. La o temperatură mai mică sau egală cu 4 °C soluţia este stabilă timp de 1 lună. |
3.9. | Substanţă etalon intern: 2,6 diclor- |
3.9.1. | Soluţie etalon stoc internă de diclazuril, 500 Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 25 mg de substanţă etalon internă (punctul 3.9) într-un balon gradat de 50 ml. Se dizolvă în DMF (punctul 3.6), se completează până la semn cu DMF (punctul 3.6) şi se amestecă. Se împachetează balonul în folie de aluminiu sau se utilizează un balon de culoare brună şi se depozitează în frigider. La o temperatură mai mică sau egală cu 4 °C soluţia este stabilă timp de 1 lună. |
3.9.2. | Soluţie etalon intern, 50 Se transferă 5,00 ml din soluţia etalon stoc internă de etalon intern (punctul 3.9.1) într-un balon gradat de 50 ml, se completează până la semn cu DMF (punctul 3.6) şi se amestecă. Se împachetează balonul în folie de aluminiu sau se utilizează un balon de culoare brună şi se depozitează în frigider. La o temperatură mai mică sau egală cu 4 °C soluţia este stabilă timp de 1 lună. |
3.9.3. | Soluţie etalon intern pentru preamestecuri, p/1 000 mg/ml (p = conţinutul nominal de diclazuril în preamestec în mg/kg) Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, p/10 mg de substanţă etalon intern într-un balon gradat de 100 ml, se dizolvă în DMF (punctul 3.6) într-o baie cu ultrasunete (punctul 4.7), se completează până la semn cu DMF şi se amestecă. Se împachetează balonul în folie de aluminiu sau se utilizează un balon de culoare brună şi se depozitează în frigider. La o temperatură mai mică sau egală cu 4 °C soluţia este stabilă timp de 1 lună. |
3.10. | Soluţii de calibrare |
3.10.1. | Soluţie de calibrare, 1 Se pipetează 1,00 ml din soluţia etalon de diclazuril (punctul 3.8.2) şi 2,00 ml din soluţia etalon intern (punctul 3.9.2) într-un balon gradat de 50 ml. Se adaugă 17 ml de DMF (punctul 3.6), se completează până la semn cu apă (punctul 3.1) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare. |
3.10.2. | Soluţie de calibrare, 2 Se pipetează 2,00 ml din soluţia etalon de diclazuril (punctul 3.8.2) şi 2,00 ml din soluţia etalon intern (punctul 3.9.2) într-un balon gradat de 50 ml. Se adaugă 16 ml de DMF (punctul 3.6), se completează până la semn cu apă (punctul 3.1) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare. |
3.10.3. | Soluţie de calibrare, 3 Se pipetează 3,00 ml din soluţia etalon de diclazuril (punctul 3.8.2) şi 2,00 ml din soluţia etalon intern (punctul 3.9.2) într-un balon gradat de 50 ml. Se adaugă 15 ml de DMF (punctul 3.6), se completează până la semn cu apă (punctul 3.1) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare. |
3.10.4. | Soluţie de calibrare, 4 Se pipetează 4,00 ml din soluţia etalon de diclazuril (punctul 3.8.2) şi 2,00 ml din soluţia etalon intern (punctul 3.9.2) într-un balon gradat de 50 ml. Se adaugă 14 ml de DMF (punctul 3.6), se completează până la semn cu apă (punctul 3.1) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare. |
3.10.5. | Soluţie de calibrare, 5 Se pipetează 5,00 ml din soluţia etalon de diclazuril (punctul 3.8.2) şi 2,00 ml din soluţia etalon intern (punctul 3.9.2) într-un balon gradat de 50 ml. Se adaugă 13 ml de DMF (punctul 3.6), se completează până la semn cu apă (punctul 3.1) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare. Notă: soluţiile de calibrare (punctele 3.10.1, 3.10.2, 3.10.3, 3.10.4 şi 3.10.5) acoperă concentraţia de diclazuril din hrana pentru animale cuprinsă între 0,5 şi 2,5 mg/kg atunci când se utilizează protocolul actual. |
3.11. | Cartuş C18 pentru extracţie în fază solidă, de exemplu Bond Elut, mărime: 20 cc, greutatea absorbentului: 5 000 mg (precondiţionare în conformitate cu orientările furnizorului). |
3.12. | Solvent de extracţie: metanol acidifiat. Se pipetează 5,0 ml de acid clorhidric (punctul 3.7) în 1 000 ml de metanol (punctul 3.5) şi se amestecă. |
3.13. | Fază mobilă pentru HPLC |
3.13.1. | Eluent A: acetat de amoniu - soluţie de sulfat acid de tetrabutilamoniu. Se dizolvă 5 g de acetat de amoniu (punctul 3.2) şi 3,4 g de TBHS (punctul 3.3) în 1 000 ml de apă (punctul 3.1) şi se amestecă. |
3.13.2. | Eluent B: acetonitril (punctul 3.4). |
3.13.3. | Eluent C: metanol (punctul 3.5). |
4.1. | Agitator mecanic |
4.2. | Echipament pentru HPLC cu gradient ternar: |
4.2.1. | Coloană pentru cromatografie lichidă, Hypersil ODS, particule de 3 |
4.2.2. | Detector UV cu ajustare variabilă a lungimii de undă sau detector cu grup de diode |
4.3. | Evaporator rotativ cu generare de film |
4.4. | Filtru cu membrană (de exemplu, nailon cu rezistenţă chimică), 0,45 |
4.5. | Seringă de unică folosinţă, 5 ml |
4.6. | Distribuitor în vid |
4.7. | Baie cu ultrasunete |
sau 


Eşantion 1A 100 | Eşantion 2O 100 | Eşantion 3 L1 | Eşantion 4 Z1 | Eşantion 5 K1 | Eşantion 6 MAT 1 | Eşantion 7 MAT 2 | Eşantion 8 MAT 3 | |
L | 11 | 11 | 11 | 11 | 6 | 10 | 9 | 10 |
n | 19 | 18 | 19 | 19 | 12 | 20 | 18 | 10 |
Medie (mg/kg) | 100,8 | 103,5 | 0,89 | 1,15 | 0,89 | 1,0 | 1,5 | < LOQ |
Sr (mg/kg) | 5,88 | 7,64 | 0,15 | 0,02 | 0,03 | 0,11 | 0,07 | - |
CVr (%) | 5,83 | 7,38 | 17,32 | 1,92 | 3,34 | 11,2 | 4,5 | - |
SR (mg/kg) | 7,59 | 7,64 | 0,17 | 0,11 | 0,12 | 0,18 | 0,21 | - |
CVR (%) | 7,53 | 7,38 | 18,61 | 9,67 | 13,65 | 18,1 | 14,3 | - |
Conţinut nominal (mg/kg) | 100 | 100 | 1,0 | 1,0 | 1,0 | 0,9 | 1,5 | - |
Referinţă (*1) (*1) Primul studiu din 1994: Journal of AOAC International, Volumul 77, No 6, 1994, p. 1359-1361; Al doilea studiu din 2015: JRC Technical report «Re-validation of a method for the determination of diclazuril by collaborative study» (2016). | Primul studiu din 1 994 | Primul studiu din 1 994 | Primul studiu din 1 994 | Primul studiu din 1 994 | Primul studiu din 1 994 | Al doilea studiu din 2 015 | Al doilea studiu din 2 015 | Al doilea studiu din 2 015 |
L = număr de laboratoare n = număr de valori unice Sr = deviaţia standard a repetabilităţii CVr = coeficientul de variaţie a repetabilităţii SR = deviaţia standard a reproductibilităţii CVR = coeficientul de variaţie a reproductibilităţii LOQ = Limita de cuantificare | ||||||||
3.1. | Fosfat diacid de potasiu (KH2PO4) |
3.2. | Acid ortofosforic, g (g/g) = 85 % |
3.3. | Soluţie de acid ortofosforic, c = 20 % Se diluează 23,5 ml acid ortofosforic (punctul 3.2) în 100 ml de apă. |
3.4. | 6-metil-2-heptilamin (1,5-dimetilhexilamină), g (g/g) = 99 % |
3.5. | Metanol, de calitate HPLC |
3.6. | Acid clorhidric, densitate = 1,19 g/ml |
3.7. | Soluţie tampon de fosfat, c = 0,01 mol/l Se dizolvă 1,36 g de KH2PO4 (punctul 3.1) în 500 ml de apă (punctul 3.11), se adaugă 3,5 ml de acid ortofosforic (punctul 3.2) şi 10,0 ml de 6-metil-2-heptilamină (punctul 3.4). Se ajustează pH-ul la 4,0 cu ajutorul soluţiei de acid ortofosforic (punctul 3.3) şi se diluează cu apă completându-se până la 1 000 ml (punctul 3.11). |
3.8. | Metanol acidifiat Se transferă 5,0 ml de acid clorhidric (punctul 3.6) într-un balon gradat de 1 000 ml, se completează până la semn cu metanol (punctul 3.5) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare. |
3.9. | Fază mobilă HPLC, soluţie tampon de fosfat şi metanol 5 + 95 (V + V) Se amestecă 5 ml de soluţie tampon de fosfat (punctul 3.7) cu 95 ml de metanol (punctul 3.5). |
3.10. | Substanţă etalon de lasalocid sodic cu puritate garantată, C34H53O8Na (sare sodică a unui acid monocarboxilic polieter, produsă de Streptomyces lasaliensis), E 763 |
3.10.1. | Soluţie etalon stoc de lasalocid sodic, 500 Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 50 mg de lasalocid sodic (punctul 3.10) într-un balon gradat de 100 ml, se dizolvă în metanol acidifiat (punctul 3.8), se completează până la semn cu acelaşi solvent şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare. |
3.10.2. | Soluţie etalon intermediară de lasalocid sodic, 50 Se pipetează 10,0 ml din soluţia etalon stoc (punctul 3.10.1) într-un balon gradat de 100 ml, se completează până la semn cu metanol acidifiat (punctul 3.8) şi se amestecă. Soluţia se prepară imediat înainte de utilizare. |
3.10.3. | Soluţii de calibrare Se transferă 1,0, 2,0, 4,0, 5,0 şi 10,0 ml de soluţie etalon intermediară (punctul 3.10.2) într-o serie de baloane gradate de 50 ml. Se completează până la semn cu metanol acidifiat (punctul 3.8) şi se amestecă. Aceste soluţii corespund concentraţiilor de 1,0, 2,0, 4,0, 5,0 şi 10,0 |
3.11. | Apă, de calitate HPLC |
4.1. | Baie cu ultrasunete (sau baie de apă cu agitare) cu reglaj de temperatură |
4.2. | Filtre cu membrană, 0,45 |
4.3. | Echipament HPLC cu sistem de injecţie, permiţând injectarea de volume de 20 |
4.3.1. | Coloană pentru cromatografie lichidă, 125 mm × 4 mm, cu fază inversată C18, particule de 5 |
4.3.2. | Spectrofluorimetru cu ajustare variabilă a lungimii de undă pentru excitaţie şi emisie |
Coloană pentru cromatografie lichidă (punctul 4.3.1): | 125 mm × 4 mm, cu fază inversată C18, particule de 5 |
Faza mobilă (punctul 3.9): | amestec de soluţie tampon de fosfat (punctul 3.7) şi metanol (punctul 3.5), 5 + 95 (V + V) |
Debit: | 1,2 ml/min |
Lungimea undelor de detecţie: | Excitaţie: 310 nm |
Emisie: 419 nm | |
Volum de injecţie: | 20 |

c | = | concentraţia de lasalocid sodic a soluţiei de eşantion (punctul 5.2.1) în |
V1 | = | volumul extractului de eşantion conform 5.2.1 în ml (adică 100) |
m | = | greutatea porţiunii de testat, în g |

c | = | concentraţia de lasalocid sodic a soluţiei de eşantion (punctul 5.2.2) în |
V2 | = | volumul extractului de eşantion conform 5.2.2 în ml (adică 250) |
f | = | factorul de diluţie conform 5.2.2 |
m | = | greutatea porţiunii de testat, în g |
Eşantionul 1 Preamestec pentru pui | Eşantionul 2 Preamestec pentru curcani | Eşantionul 3 Pelete pentru curcani | Eşantionul 4 Sfărâmături pentru pui | Eşantionul 5 Furaje pentru curcani | Eşantionul 6 Furaje pentru păsări de curte A | Eşantionul 7 Furaje pentru păsări de curte B | |
L | 12 | 12 | 12 | 12 | 12 | 12 | 12 |
n | 23 | 23 | 23 | 23 | 23 | 23 | 23 |
Medie (mg/kg) | 5 050 | 16 200 | 76,5 | 78,4 | 92,9 | 48,3 | 32,6 |
sr [mg/kg] | 107 | 408 | 1,71 | 2,23 | 2,27 | 1,93 | 1,75 |
CVr [%] | 2,12 | 2,52 | 2,24 | 2,84 | 2,44 | 4,00 | 5,37 |
sR [mg/kg] | 286 | 883 | 3,85 | 7,32 | 5,29 | 3,47 | 3,49 |
CVR [%] | 5,66 | 5,45 | 5,03 | 9,34 | 5,69 | 7,18 | 10,70 |
Conţinut nominal (mg/kg) | 5 000 (*3) (*3) Conţinutul declarat de producător. | 16 000 (*3) | 80 (*3) | 105 (*3) | 120 (*3) | 50 ((+)) ((+)) Furaj preparat în laborator. | 35 ((+)) |
L= număr de laboratoare. n= număr de valori unice. sr= deviaţia standard a repetabilităţii. sR= deviaţia standard a reproductibilităţii. CVr= coeficientul de variaţie a repetabilităţii, %. CVR= coeficientul de variaţie a reproductibilităţii, %. | |||||||
3.1. | Metanol |
3.2. | Acetonitril, de calitate HPLC |
3.3. | Apă, de calitate HPLC |
3.4. | Soluţie de fosfat diacid de sodiu, c = 0,1 mol/l Se dizolvă 13,80 g de fosfat diacid de sodiu în apă (punctul 3.3) într-un balon gradat de 1 000 ml, se completează până la semn cu apă (punctul 3.3) şi se amestecă. |
3.5. | Soluţie de perclorat de sodiu, c = 1,6 mol/l Se dizolvă 224,74 g de perclorat de sodiu monohidrat în apă (punctul 3.3) într-un balon gradat de 1 000 ml, se completează până la semn cu apă (punctul 3.3) şi se amestecă. |
3.6. | Fază mobilă pentru HPLC (a se vedea observaţia de la punctul 9.1). Amestec de acetonitril (punctul 3.2), soluţie de fosfat diacid de sodiu (punctul 3.4) şi soluţie de perclorat de sodiu (punctul 3.5), 450 + 450 + 100 (v + v + v). Înainte de utilizare, se filtrează printr-un filtru cu membrană de 0,22 |
3.7. | Substanţă etalon: amproliu pur, clorură de 1-[(4-amino-2-propil-5-pirimidinil)metil]-2-metilpiridiniu, E 750 (a se vedea punctul 9.2) |
3.7.1. | Soluţie etalon stoc de amproliu, 500 Se cântăresc, cu o abatere de 0,1 mg, 50 mg de amproliu (punctul 3.7) într-un balon gradat de 100 ml, se dizolvă în 80 ml de metanol (punctul 3.1) şi se plasează balonul timp de 10 minute într-o baie cu ultrasunete (punctul 4.4). După tratamentul cu ultrasunete, se aduce soluţia la temperatura camerei, se completează până la semn cu apă şi se amestecă. La o temperatură de < = 4 °C, soluţia este stabilă timp de 1 lună. |
3.7.2. | Soluţie etalon intermediară de amproliu, 50 Se pipetează 5,0 ml din soluţia etalon stoc (punctul 3.7.1) într-un balon gradat de 50 ml, se completează până la semn cu solvent de extracţie (punctul 3.8) şi se amestecă. La o temperatură de < = 4 °C, soluţia este stabilă timp de 1 lună. |
3.7.3. | Soluţii de calibrare Se transferă 0,5, 1,0 şi 2,0 ml din soluţia etalon intermediară (punctul 3.7.2) într-o serie de baloane gradate de 50 ml. Se completează până la semn cu faza mobilă (punctul 3.6) şi se amestecă. Aceste soluţii corespund la 0,5, 1,0 şi respectiv 2,0 |
3.8. | Solvent de extracţie Amestec de metanol (punctul 3.1) şi apă 2 + 1 (v + v) |
4.1. | Echipament HPLC cu sistem de injecţie, permiţând injectarea de volume de 100 |
4.1.1. | Coloană pentru cromatografie lichidă de 125 mm × 4 mm, Nucleosil 10 SA cu schimb de cationi, particule de 5 sau 10 |
4.1.2. | Detector UV cu ajustare variabilă a lungimii de undă sau detector cu grup de diode |
4.2. | Filtru cu membrană, material PTFE, de 0,45 |
4.3. | Filtru cu membrană, 0,22 |
4.4. | Baie cu ultrasunete |
4.5. | Agitator mecanic sau magnetic |
Coloană pentru cromatografie lichidă (punctul 4.1.1): | 125 mm × 4 mm, Nucleosil 10 SA cu schimb de cationi, particule de 5 sau 10 |
Faza mobilă (punctul 3.6): | Amestec de acetonitril (punctul 3.2), soluţie de fosfat diacid de sodiu (punctul 3.4) şi soluţie de perclorat de sodiu (punctul 3.5), 450 + 450 + 100 (v + v + v). |
Debit: | 0,7 -1 ml/min |
Lungimea undei de detecţie: | 264 nm |
Volum de injecţie: | 100 |

V | = | volumul solventului de extracţie (punctul 3.8), în ml, conform 5.2 (adică 200 ml) |
c | = | concentraţia de amproliu din extractul de eşantion (punctul 5.2), în |
f | = | factorul de diluţie conform 5.2 |
m | = | greutatea porţiunii de testat, în g |
Eşantion 1 (furaj martor) | Eşantion 2 | Eşantion 3 | Eşantion 4 | Eşantion 5 | |
L | 14 | 14 | 14 | 14 | 15 |
n | 56 | 56 | 56 | 56 | 60 |
medie (mg/kg) | - | 45,5 | 188 | 5 129 | 25 140 |
sr [mg/kg] | - | 2,26 | 3,57 | 178 | 550 |
CVr [%] | - | 4,95 | 1,90 | 3,46 | 2,20 |
sR [mg/kg] | - | 2,95 | 11,8 | 266 | 760 |
CVR [%] | - | 6,47 | 6,27 | 5,19 | 3,00 |
conţinut nominal [mg/kg] | - | 50 | 200 | 5 000 | 25 000 |
L: număr de laboratoare n: număr de valori unice sr: deviaţia standard a repetabilităţii CVr: coeficientul de variaţie a repetabilităţii sR: deviaţia standard a reproductibilităţii CVR: coeficientul de variaţie a reproductibilităţii | |||||
9.1. | Dacă eşantionul conţine tiamină, vârful tiaminei din cromatogramă apare puţin înaintea vârfului de amproliu. Conform acestei metode, amproliul şi tiamina trebuie să fie separate. Dacă amproliul şi tiamina nu sunt separate de coloana (punctul 4.1.1) utilizată în această metodă, se înlocuieşte cu metanol până la 50 % din porţia de acetonitril a fazei mobile (punctul 3.6). |
9.2. | Conform Farmacopeei Britanice, spectrul soluţiei de amproliu (c = 0,02 mol/l) în acid clorhidric (c = 0,1 mol/l) prezintă valori maxime la 246 nm şi 262 nm. Absorbanţa este de 0,84 la 246 nm şi de 0,80 la 262 nm. |
9.3. | Extractul trebuie să fie întotdeauna diluat cu faza mobilă, altfel timpul de reţinere al vârfului de amproliu se poate schimba în mod semnificativ din cauza variaţiilor forţei ionice. |
Congener | Valoare TEF | Congener | Valoare TEF |
P-dibenzodioxine («PCDD-uri») şi p-dibenzofurani («PCDF-uri») | PCB-uri de tipul dioxinelor PCB-uri non-orto + PCB-uri mono-orto | ||
2,3,7,8-TCDD | 1 | ||
1,2,3,7,8-PeCDD | 1 | PCB-uri non-orto | |
1,2,3,4,7,8-HxCDD | 0,1 | PCB 77 | 0,0001 |
1,2,3,6,7,8-HxCDD | 0,1 | PCB 81 | 0,0003 |
1,2,3,7,8,9-HxCDD | 0,1 | PCB 126 | 0,1 |
1,2,3,4,6,7,8-HpCDD | 0,01 | PCB 169 | 0,03 |
OCDD | 0,0003 | PCB-uri mono-orto | |
2,3,7,8-TCDF | 0,1 | PCB 105 | 0,00003 |
1,2,3,7,8-PeCDF | 0,03 | PCB 114 | 0,00003 |
2,3,4,7,8-PeCDF | 0,3 | PCB 118 | 0,00003 |
1,2,3,4,7,8-HxCDF | 0,1 | PCB 123 | 0,00003 |
1,2,3,6,7,8-HxCDF | 0,1 | PCB 156 | 0,00003 |
1,2,3,7,8,9-HxCDF | 0,1 | PCB 157 | 0,00003 |
2,3,4,6,7,8-HxCDF | 0,1 | PCB 167 | 0,00003 |
1,2,3,4,6,7,8-HpCDF | 0,01 | PCB 189 | 0,00003 |
1,2,3,4,7,8,9-HpCDF | 0,01 | ||
OCDF | 0,0003 | ||
3.1. | Se iau măsuri pentru a se evita contaminarea încrucişată la fiecare etapă a procedurii de eşantionare şi de analiză. |
3.2. | Eşantioanele se depozitează şi se transportă în recipiente de sticlă, aluminiu, polipropilenă sau polietilenă corespunzătoare pentru depozitare, fără nicio influenţă asupra nivelurilor de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor din probe. Urmele de praf de hârtie se îndepărtează de pe recipientul pentru probe. |
3.3. | Depozitarea şi transportul probelor se efectuează astfel încât să se păstreze integritatea probei de furaj. |
3.4. | În măsura în care acest lucru este relevant, fiecare probă de laborator se mărunţeşte şi se amestecă cu grijă printr-un procedeu care s-a dovedit că realizează o omogenizare completă (de exemplu, proba mărunţită astfel încât să treacă printr-o sită cu ochiuri de 1 mm). Probele se usucă înainte de mărunţire, dacă conţinutul de umiditate este prea mare. |
3.5. | Se efectuează controlul reactivilor, al sticlăriei şi al echipamentului pentru o posibilă influenţă a rezultatelor pe bază de TEQ sau BEQ. |
3.6. | Se realizează o analiză-martor parcurgând întreaga procedură analitică, însă fără probă. |
3.7. | Pentru metodele bioanalitice, toată sticlăria şi toţi solvenţii utilizaţi în cadrul analizei sunt testaţi pentru a se verifica dacă sunt liberi de compuşi care perturbă detectarea compuşilor-ţintă în intervalul de lucru. Sticlăria se clăteşte cu solvenţi sau se încălzeşte la temperaturi adecvate pentru a elimina urmele de PCDD-uri/PCDF-uri, de compuşi de tipul dioxinelor şi de compuşi interferenţi de pe suprafaţa acesteia. |
3.8. | Cantitatea de probă utilizată pentru extracţie este suficientă pentru a îndeplini cerinţele referitoare la un interval de lucru suficient de redus, inclusiv concentraţiile nivelurilor maxime sau pragul de acţiune. |
3.9. | Procedurile specifice de pregătire a probelor utilizate pentru produsele avute în vedere urmează orientări recunoscute la nivel internaţional, şi anume EN ISO 6498. |
4.1. | În conformitate cu dispoziţiile Regulamentului (UE) 2017/625, laboratoarele sunt acreditate de un organism recunoscut care funcţionează în conformitate cu Ghidul ISO/IEC 58, pentru a se asigura aplicarea de către acestea a procedurilor de asigurare a calităţii analizelor. Laboratoarele sunt acreditate conform standardului EN ISO/IEC 17025. Trebuie respectate principiile descrise în Orientările tehnice pentru estimarea incertitudinii de măsurare şi a limitelor de cuantificare pentru analiza PCDD/F-urilor şi a PCB-urilor (11). (11) «Ghidul privind incertitudinea de măsurare pentru laboratoarele care efectuează analize de PCDD/F şi PCB utilizând spectrometria de masă prin metoda de diluţie a izotopilor» (https://food.ec.europa.eu/system/files/2017-05/animal-feed-guidance_document_pcdd-f_pcb_en.pdf), «Ghidul privind estimarea LDD şi LDC pentru măsurătorile în domeniul contaminanţilor din produsele alimentare şi din hrana pentru animale» (https://food.ec.europa.eu/system/files/2016-10/cs_contaminants_sampling_analysis-report_2004_en.pdf). |
4.2. | Competenţa laboratoarelor se demonstrează prin participarea continuă şi cu succes la studiile interlaboratoare pentru determinarea PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor în matricele de furaje şi în intervalele de concentraţii relevante. |
4.3. | Laboratoarele care aplică metode de screening pentru controlul de rutină al probelor stabilesc o cooperare strânsă cu laboratoarele care aplică metoda de confirmare, atât pentru controlul calităţii, cât şi pentru confirmarea rezultatului analitic al probelor suspectate. |
5.2.1. | Este necesar să se facă o distincţie între PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor şi o multitudine de alţi compuşi coextraşi şi care pot să interfereze, prezenţi în concentraţii cu până la câteva ordine de mărime mai mari decât cele ale analiţilor de interes. Pentru metodele GC-MS, este necesar să se facă deosebirea între diferiţii congeneri, cum ar fi între cei toxici (de exemplu, cele 17 PCDD-uri/PCDF-uri substituite la poziţiile 2,3,7,8 şi cele 12 PCB-uri de tipul dioxinelor) şi alţi congeneri. |
5.2.2. | Metodele bioanalitice sunt capabile să detecteze compuşii-ţintă ca sumă de PCDD/F-uri şi/sau PCB-uri de tipul dioxinelor. Curăţarea probelor are drept scop eliminarea compuşilor care duc la rezultate fals neconforme sau a compuşilor care pot atenua răspunsul, ducând la rezultate fals conforme. |
5.3.1. | Pentru metodele GC-MS, determinarea oferă o estimare valabilă a concentraţiei reale dintr-o probă. Acurateţea ridicată este necesară pentru a se evita respingerea rezultatului analizei unei probe din cauza fiabilităţii reduse a nivelului TEQ determinat. Acurateţea se exprimă prin autenticitate (diferenţa dintre valoarea medie măsurată pentru un analit pe un material certificat şi valoarea sa certificată, exprimată ca procent din această valoare) şi precizie (deviaţia standard relativă RSDR calculată pe baza rezultatelor generate în condiţii de reproductibilitate). |
5.3.2. | Pentru metodele bioanalitice, se determină recuperarea aparentă a biotestului. Recuperarea aparentă a biotestului înseamnă nivelul BEQ calculat pornind de la curba de calibrare a TCDD sau PCB 126 corectată în funcţie de determinarea-martor şi apoi divizată la nivelul TEQ determinat prin metoda de confirmare. Aceasta vizează corectarea factorilor cum ar fi pierderea de PCDD-uri/PCDF-uri şi compuşi de tipul dioxinelor în timpul etapelor de extracţie şi curăţare, coextragerea compuşilor care duc la intensificarea sau atenuarea răspunsului (efecte agoniste şi antagoniste), calitatea de ajustare a curbei sau diferenţele dintre valorile factorilor de echivalenţă toxică (TEF) şi ale potenţei relative (REP). Recuperarea aparentă a biotestului se calculează pornind de la probe de referinţă adecvate cu modele pentru congeneri reprezentativi în jurul nivelului de interes. |
5.4.1. | Laboratoarele demonstrează performanţa unei metode în intervalul nivelului maxim, de exemplu, 0,5x, 1x şi 2x nivelul maxim, cu un coeficient de variaţie acceptabil pentru analize repetate, în timpul procedurii de validare şi în timpul analizei de rutină. |
5.4.2. | Ca măsuri interne de control al calităţii, se efectuează periodic controale ale martorului, experimente cu îmbogăţire sau analize ale unor probe de control (dacă este posibil, cu material de referinţă certificat). Se înregistrează şi se verifică graficele de control al calităţii pentru controalele martorului, experimentele cu îmbogăţire sau analizele unor probe de control, pentru a se garanta că performanţa analitică este conformă cerinţelor. |
5.5.1. | Pentru o metodă bioanalitică de screening, stabilirea limitei de cuantificare (LOQ) nu este o cerinţă indispensabilă, însă metoda trebuie să dovedească că se poate face distincţie între valoarea-martor şi valoarea-limită. La furnizarea unui nivel BEQ, se stabileşte un nivel de raportare pentru a se lua decizii legate de probele care prezintă un răspuns sub acest nivel. Nivelul de raportare se dovedeşte a fi diferit de probele-martor din cadrul procedurii cel puţin cu un factor de trei, cu un răspuns inferior intervalului de lucru. Prin urmare, se calculează pornind de la probe care conţin compuşii-ţintă în jurul nivelului minim necesar, şi nu de la un raport S/Z sau un test-martor. |
5.5.2. | Limita de cuantificare (LOQ) pentru o metodă de confirmare se situează la aproximativ o cincime din nivelul maxim. |
Screening cu metode bioanalitice sau fizico-chimice | Metode de confirmare | |
Rată fals conforme (*1) (*1) În raport cu nivelurile maxime. | < 5 % | |
Autenticitate | între -20 % şi +20 % | |
Repetabilitate (RSDr) | < 20 % | |
Precizie intermediară (RSDR) | < 25 % | < 15 % |
5.7.1. | Pot fi folosite pentru screening atât metodele GC-MS, cât şi metodele bioanalitice. Pentru metodele GC-MS, trebuie respectate cerinţele prevăzute la punctul 6. Pentru metodele bioanalitice bazate pe celule, sunt prevăzute cerinţe specifice la punctul 7. |
5.7.2. | Laboratoarele care aplică metode de screening pentru controlul de rutină al probelor stabilesc o cooperare strânsă cu laboratoarele care aplică metoda de confirmare. |
5.7.3. | Performanţa metodei de screening trebuie verificată în timpul analizei de rutină, printr-un control al calităţii analizelor şi printr-o validare continuă a metodei. Trebuie să existe un program continuu pentru controlul rezultatelor conforme. |
5.7.4. | Verificarea posibilei suprimări a răspunsului celular şi a citotoxicităţii: 20 % din extractele de probe sunt măsurate în screeningul de rutină cu şi fără 2,3,7,8-TCDD care se adaugă în funcţie de nivelul maxim sau de pragul de acţiune, pentru a verifica dacă răspunsul este, eventual, suprimat de către substanţele interferente prezente în extractul de probă. Concentraţia măsurată a probei îmbogăţite se compară cu suma concentraţiei extractului neîmbogăţit, plus concentraţia cu îmbogăţire. Dacă această concentraţie măsurată este cu peste 25 % mai mică decât concentraţia (suma) calculată, aceasta indică posibilitatea eliminării semnalului, iar proba respectivă este supusă analizei de confirmare prin GC-HRMS. Rezultatele sunt monitorizate prin grafice de control al calităţii. |
5.7.5. | Controlul calităţii probelor conforme: Aproximativ 2-10 % din probele conforme, în funcţie de matricea probei şi de experienţa laboratorului, sunt confirmate prin GC-HRMS. |
5.7.6. | Determinarea ratelor rezultatelor fals conforme pornind de la datele de control al calităţii: Se determină rata rezultatelor fals conforme care rezultă din screeningul probelor sub şi peste nivelul maxim sau pragul de acţiune. Ratele rezultatelor fals conforme reale trebuie să fie sub 5 %. Atunci când, în urma controlului de calitate al probelor conforme, sunt disponibile cel puţin 20 de rezultate confirmate per matrice/grup de matrice, concluziile privind rata rezultatelor fals conforme trebuie să fie desprinse din această bază de date. Rezultatele probelor analizate prin intermediul testărilor interlaboratoare sau în timpul incidentelor de contaminare, care acoperă un interval de concentraţii de până la, de exemplu, 2 × nivelul maxim (NM), pot fi, de asemenea, incluse în cele cel puţin 20 de rezultate pentru evaluarea ratei rezultatelor fals conforme. Probele acoperă cele mai frecvente modele pentru congeneri, reprezentând diverse surse. Deşi testele de screening au, preferabil, ca scop detectarea probelor care depăşesc pragul de acţiune, criteriul de determinare a ratelor rezultatelor fals conforme este nivelul maxim, ţinând seama de incertitudinea de măsurare extinsă a metodei de confirmare. |
5.7.7. | Probele potenţial neconforme care rezultă în urma screeningului se verifică întotdeauna printr-o nouă analiză completă a probei originale printr-o metodă analitică de confirmare. Aceste probe pot fi, de asemenea, folosite pentru a evalua rata rezultatelor fals neconforme. Pentru metodele de screening, rata rezultatelor fals neconforme este procentul rezultatelor confirmate ca fiind conforme în urma analizei de confirmare, în timp ce, în screeningul anterior, s-a declarat în legătură cu proba că este potenţial neconformă. Evaluarea avantajelor metodei de screening se bazează pe compararea probelor fals neconforme cu numărul total de probe verificate. Această rată este suficient de scăzută pentru a face ca utilizarea unui instrument de screening să fie avantajoasă. |
5.7.8. | În condiţii de validare, metodele bioanalitice oferă o indicaţie valabilă a nivelului TEQ, calculat şi exprimat ca BEQ. Şi pentru metodele bioanalitice efectuate în condiţii de repetabilitate, valoarea RSDr intralaborator ar fi, în general, mai mică decât în condiţii de reproductibilitate (RSDR) |
6.2.1. | La începutul metodei de analiză, de exemplu, înaintea fazei de extracţie, trebuie să se adauge etaloane interne de PCDD-uri/PCDF-uri substituite cu clor la poziţiile 2,3,7,8 şi marcate cu 13C şi etaloane interne de PCB-uri de tipul dioxinelor marcate cu 13C, pentru a se valida procedura analitică. Trebuie adăugat cel puţin un congener pentru fiecare din grupele omoloage tetra- până la octo-clorurate de PCDD/F-uri şi cel puţin un congener pentru fiecare dintre grupele omoloage de PCB-uri de tipul dioxinelor (alternativ, cel puţin un congener pentru fiecare funcţie de înregistrare a ionului selecţionat prin spectrometrie de masă utilizat pentru monitorizarea PCDD/F-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor). În cazul metodelor de confirmare, trebuie utilizate toate cele 17 etaloane interne de PCDD-uri/PCDF-uri substituite la poziţiile 2,3,7,8, marcate cu 13C şi toate cele 12 etaloane interne de PCB-uri de tipul dioxinelor marcate cu 13C. |
6.2.2. | De asemenea, se determină factorii de răspuns relativ pentru acei congeneri pentru care nu se adaugă niciun analog marcat cu 13C, utilizându-se soluţii de calibrare corespunzătoare. |
6.2.3. | Pentru furajele de origine vegetală şi furajele de origine animală care conţin mai puţin de 10 % grăsime, este obligatorie adăugarea etaloanelor interne înainte de extracţie. Pentru furajele de origine animală care conţin mai mult de 10 % grăsime, etaloanele interne se pot adăuga fie înaintea extracţiei, fie după extracţia grăsimii. Se procedează la o validare corespunzătoare a eficacităţii extracţiei, în funcţie de etapa în care se introduc etaloanele interne. |
6.2.4. | Înaintea analizei GC-MS, trebuie să se adauge unul sau două etaloane de recuperare (surogat). |
6.2.5. | Este necesar controlul recuperării. Pentru metodele de confirmare, recuperările de etaloane interne individuale trebuie să se situeze în intervalul 60-120 %. Se acceptă şi recuperări inferioare sau superioare pentru congeneri individuali, în special pentru unele p-dibenzodioxine şi unii dibenzofurani hepta- şi octo-cloruraţi, atât timp cât contribuţia acestora la valoarea TEQ nu depăşeşte 10 % din valoarea TEQ totală (bazată pe suma de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor). Pentru metodele de screening prin GC-MS, recuperările trebuie să se situeze în intervalul 30-140 %. |
7.2.1. | Eşantioanele de referinţă reprezintă matricea de eşantionare, modelele pentru congeneri şi intervalele de concentraţie pentru PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor în jurul nivelului maxim sau al pragului de acţiune. |
7.2.2. | În fiecare serie de teste, se includ o matrice martor şi, în cazul în care acest lucru nu este posibil, un eşantion martor din cadrul procedurii, precum şi un eşantion de referinţă la nivelul maxim sau la pragul de acţiune. Aceste eşantioane se supun extracţiei şi testării în acelaşi timp şi în condiţii identice. Eşantionul de referinţă prezintă un răspuns cu mult mai mare în comparaţie cu eşantionul martor, asigurând astfel conformitatea testului. Aceste eşantioane pot fi utilizate pentru corecţiile în funcţie de martor şi recuperare. |
7.2.3. | Probele de referinţă alese pentru a efectua o corecţie în funcţie de recuperare sunt reprezentative pentru probele de testare, în sensul că modelele pentru congeneri nu pot conduce la o subestimare a nivelurilor. |
7.2.4. | Se pot include probe de referinţă suplimentare de 0,5 × şi 2 × nivelul maxim sau pragul de acţiune, de exemplu, pentru a se demonstra eficacitatea testului în intervalul de interes, pentru controlul nivelului maxim sau al pragului de acţiune. Combinate, aceste probe pot fi utilizate pentru calcularea nivelurilor BEQ în probele de testare (a se vedea punctul 7.1.2.2). |
7.3.1. | Utilizarea sectorului inferior al intervalului de predicţie de 95 % la limita de decizie aferentă metodei de confirmare
unde:
|
7.3.2. | Calcul pornind de la rezultatele bioanalitice (corectate în funcţie de martor şi recuperare) ale analizelor multiple ale probelor (n> = 6) contaminate la limita de decizie a metodei de confirmare, ca extremitate inferioară a distribuţiei datelor la valoarea medie BEQ corespunzătoare:
unde:
|
7.3.3. | Calcul ca valoare medie a rezultatelor bioanalitice (în BEQ, corectată în funcţie de martor şi recuperare) pornind de la analiza multiplă a probelor (n > = 6) contaminate la două treimi din nivelul maxim sau pragul de acţiune, având drept bază observaţia că acest nivel va fi în jurul valorii-limită determinate la punctul 7.3.1 sau la punctul 7.3.2: Calcul al valorilor-limită, bazat pe un nivel de încredere de 95 %, implicând o rată a rezultatelor fals conforme < 5 %, şi pe o valoare a RSDR < 25 %: 1. pornind de la spectrul inferior al intervalului de predicţie de 95 % la limita de decizie a metodei de confirmare. 2. pornind de la analiza multiplă a probelor (n > = 6) contaminate la limita de decizie a metodei de confirmare ca extremitate inferioară a distribuţiei datelor (reprezentată în Figură 1 printr-o curbă sub formă de clopot) la valoarea medie BEQ corespunzătoare. |

7.3.4. | Restricţii ale valorilor-limită Valorile-limită bazate pe BEQ, calculate pornind de la valoarea RSDR obţinută în cursul validării utilizând un număr limitat de probe cu modele pentru matrice/congeneri diferite pot fi mai mari decât nivelurile maxime sau pragurile de acţiune bazate pe TEQ datorită unei precizii mai mari decât cea realizabilă în analizele de rutină atunci când trebuie controlat un spectru necunoscut de posibile modele pentru congeneri. În astfel de cazuri, valorile-limită se calculează pornind de la RSDR = 25 % sau se preferă două treimi din nivelul maxim sau pragul de acţiune. |
7.4.1. | Având în vedere faptul că nu se pot utiliza etaloane interne în metodele bioanalitice, testele cu privire la repetabilitatea metodelor bioanalitice se efectuează pentru obţinerea unor informaţii privind deviaţia standard în cadrul unei serii de teste şi între serii de teste. Repetabilitatea trebuie să fie sub 20 %, iar reproductibilitatea intralaborator sub 25 %. Aceasta se bazează pe nivelurile calculate în BEQ după corecţia în funcţie de martor şi recuperare. |
7.4.2. | Ca parte din procesul de validare, testul trebuie să permită stabilirea diferenţei între o probă-martor şi un nivel la valoarea-limită, permiţând identificarea probelor peste valoarea-limită corespunzătoare (a se vedea punctul 7.1.2). |
7.4.3. | Se definesc compuşii-ţintă, interferenţele potenţiale şi nivelurile maxime tolerabile ale martorului. |
7.4.4. | Deviaţia standard procentuală a răspunsului sau a concentraţiei calculate pornind de la răspuns (posibilă numai în intervalul de lucru) a unei determinări triple a unui extract de probă nu poate fi mai mare de 15 %. |
7.4.5. | Rezultatele necorectate ale probei (probelor) de referinţă exprimată (exprimate) în BEQ (martor şi nivelul maxim sau pragul de acţiune) sunt utilizate pentru evaluarea performanţei metodei bioanalitice pe o perioadă de timp constantă. |
7.4.6. | Graficele de control al calităţii pentru martorii procedurii şi fiecare tip de probă de referinţă se înregistrează şi se verifică pentru a se garanta că performanţa analitică este în conformitate cu cerinţele, în special pentru martorii procedurii cu privire la diferenţa minimă solicitată la limita inferioară a intervalului de lucru şi pentru probele de referinţă cu privire la reproductibilitatea intralaborator. Martorii procedurii sunt controlaţi într-un mod care să evite rezultatele fals conforme atunci când se scad. |
7.4.7. | Rezultatele metodelor de confirmare ale probelor suspectate şi a 2-10 % din probele conforme (minimum 20 de probe pentru fiecare matrice) sunt colectate şi folosite pentru a evalua performanţa metodei de screening şi relaţia între BEQ şi TEQ. Această bază de date poate fi utilizată pentru reevaluarea valorilor-limită aplicabile probelor de rutină pentru matricele validate. |
7.4.8. | Buna performanţă a metodelor poate fi, de asemenea, demonstrată prin participarea la testările interlaboratoare. Rezultatele probelor analizate în testările interlaboratoare, care acoperă un interval de concentraţii care să ajungă până la, de exemplu, 2x nivelul maxim, pot fi incluse în evaluarea ratei rezultatelor fals conforme, în cazul în care un laborator este în măsură să demonstreze buna sa performanţă. Probele acoperă cele mai frecvente modele pentru congeneri, reprezentând diverse surse. |
7.4.9. | În timpul incidentelor, valorile-limită pot fi reevaluate, reflectând matricea specifică şi modelele pentru congeneri doar ale acestui incident. |
8.1.1. | Rezultatele analitice includ nivelurile de congeneri individuali ai PCDD/F-urilor şi ai PCB-urilor de tipul dioxinelor şi sunt raportate ca estimare inferioară, estimare superioară şi estimare mediană, pentru a include o cantitate maximă de informaţii în raportarea rezultatelor, ceea ce permite o interpretare a rezultatelor în conformitate cu cerinţe specifice. |
8.1.2. | Raportul include metoda utilizată pentru extracţia PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor. |
8.1.3. | Recuperările etaloanelor interne individuale sunt disponibile dacă recuperările se situează în afara intervalului menţionat la punctul 6.2.5, dacă se depăşeşte nivelul maxim (în acest caz, recuperările pentru una din cele două analize duplicat), iar în celelalte cazuri, la cerere. |
8.1.4. | Întrucât, atunci când se decide conformitatea unei probe, se ţine seama de incertitudinea de măsurare extinsă, acest parametru trebuie pus la dispoziţie. De aceea, rezultatele analitice se raportează ca x +/- U, unde x este rezultatul analitic şi U este incertitudinea de măsurare extinsă, folosind un factor de acoperire 2, care dă un nivel de încredere de aproximativ 95 %. În cazul unei determinări separate a PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor, se utilizează suma incertitudinii extinse estimate a rezultatelor analitice separate ale PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor pentru suma PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor. |
8.1.5. | Rezultatele se exprimă în aceleaşi unităţi şi prin cel puţin acelaşi număr de zecimale precum nivelurile maxime prevăzute de Directiva 2002/32/CE. |
8.2.1. | Rezultatul screeningului se exprimă ca şi «conform» sau «suspectat a fi neconform» («suspectat»). |
8.2.2. | În plus, se poate da un rezultat indicativ pentru PCDD-uri/PCDF-uri şi/sau PCB-uri de tipul dioxinelor exprimat în BEQ, şi nu în TEQ. |
8.2.3. | Probele cu un răspuns inferior limitei de raportare se exprimă ca fiind «sub limita de raportare». Rezultatul probelor cu un răspuns peste intervalul de lucru se raportează ca «depăşind intervalul de lucru», iar nivelul corespunzător extremităţii superioare a intervalului de lucru se furnizează în BEQ. |
8.2.4. | Pentru fiecare tip de matrice a probei, raportul menţionează nivelul maxim sau pragul de acţiune pe care se bazează evaluarea. |
8.2.5. | Raportul menţionează tipul de test aplicat, principiul de bază al testului şi tipul de calibrare. |
8.2.6. | Raportul include metoda utilizată pentru extracţia PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor. |
8.2.7. | În cazul probelor suspectate a fi neconforme, raportul trebuie să includă o notă privind măsurile care urmează a fi adoptate. Concentraţia de PCDD-uri/PCDF-uri şi suma de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor din acele probe cu niveluri ridicate trebuie determinată/confirmată printr-o metodă de confirmare. |
8.2.8. | Rezultatele neconforme se raportează numai în urma analizei de confirmare. |
8.3.1. | Rezultatul screeningului se exprimă ca şi «conform» sau «suspectat a fi neconform» («suspectat»). |
8.3.2. | Pentru fiecare tip de matrice a probei, raportul menţionează nivelul maxim sau pragul de acţiune pe care se bazează evaluarea. |
8.3.3. | În plus, nivelurile de congeneri individuali ai PCDD/F-urilor şi/sau ai PCB-urilor de tipul dioxinelor şi valorile TEQ se pot furniza ca estimare inferioară, estimare superioară şi estimare mediană. Rezultatele se exprimă în aceleaşi unităţi şi prin cel puţin acelaşi număr de zecimale precum nivelurile maxime prevăzute de Directiva 2002/32/CE. |
8.3.4. | Recuperările etaloanelor interne individuale sunt disponibile dacă recuperările se situează în afara intervalului menţionat la punctul 6.2.5, dacă se depăşeşte nivelul maxim (în acest caz, recuperările pentru una din cele două analize duplicat), iar în celelalte cazuri, la cerere. |
8.3.5. | Raportul trebuie să menţioneze metoda GC-MS utilizată. |
8.3.6. | Raportul include metoda utilizată pentru extracţia PCDD-urilor/PCDF-urilor şi a PCB-urilor de tipul dioxinelor. |
8.3.7. | În cazul probelor suspectate a fi neconforme, raportul trebuie să includă o notă privind măsurile care urmează a fi adoptate. Concentraţia de PCDD-uri/PCDF-uri şi suma de PCDD-uri/PCDF-uri şi PCB-uri de tipul dioxinelor din acele probe cu niveluri ridicate trebuie determinată/confirmată printr-o metodă de confirmare. |
8.3.8. | Neconformitatea poate fi decisă numai în urma analizei de confirmare. |
3.1. | Timpul de retenţie relativ în raport cu etaloanele interne sau etaloanele de referinţă (deviaţie acceptabilă +/- 0,25 %). |
3.2. | Separarea gaz-cromatografică a PCB-urilor care nu sunt de tipul dioxinelor de substanţele interferente, în special PCB-uri co-eluante, mai ales în cazul în care nivelurile probelor sunt în limite legale şi neconformitatea trebuie să se confirme (13). (13) Congeneri despre care s-a constatat că sunt adesea co-eluanţi sunt, de exemplu, PCB 28/31, PCB 52/69 şi PCB 138/163/164. Pentru GC-MS, este necesar să se ţină seama şi de interferenţele posibile din partea fragmentelor de congeneri mai puternic cloruraţi. |
3.3. | Cerinţe pentru tehnici GC-MS Monitorizarea cel puţin a următorului număr de ioni moleculari sau de ioni caracteristici din clusterul molecular: (a) doi ioni specifici pentru HRMS; (b) trei ioni specifici pentru LRMS; (c) doi ioni precursori specifici, fiecăruia corespunzându-i un anumit ion produs pentru MS-MS. Toleranţele maxime admisibile pentru raportul valorilor izotopilor pentru fragmentele de masă selecţionate: Deviaţia relativă a abundenţei izotopice relative pentru fragmentele de masă selecţionate şi valoarea teoretică a abundenţei izotopice sau standardul de calibrare pentru ionul ţintă (ionul monitorizat cu cea mai ridicată abundenţă izotopică) şi ionul (ionii) calificativ(i): ± 15 %. |
3.4. | Cerinţe pentru tehnici GC-ECD Rezultatele care depăşesc nivelul maxim sunt confirmate cu două coloane de GC cu faze staţionare de polaritate diferită. |
7.1. | Se utilizează etaloane interne adecvate cu proprietăţi fizico-chimice comparabile cu cele ale analiţilor de interes. |
7.2. | Adăugarea de etaloane interne: adăugare la produse (înaintea procesului de extracţie şi de curăţare). |
7.3. | Cerinţe privind metodele care utilizează toţi cei şase congeneri ai PCB-urilor care nu sunt de tipul dioxinelor marcaţi cu un izotop: (a) rezultatele sunt corectate pentru recuperările etaloanelor interne; (b) recuperările etaloanelor interne marcate cu un izotop sunt între 60 şi 120 %; (c) recuperările inferioare sau superioare pentru congenerii individuali cu o contribuţie la suma de şase PCB-uri care nu sunt de tipul dioxinelor mai mică de 10 % sunt acceptabile. |
7.4. | Cerinţe privind metodele care nu utilizează toate cele şase etaloane interne marcate cu un izotop sau alte etaloane interne: (a) recuperarea etalonului (etaloanelor) intern(e) se controlează pentru fiecare probă; (b) recuperările etalonului (etaloanelor) intern(e) sunt între 60 % şi 120 %; (c) rezultatele sunt corectate pentru recuperările etaloanelor interne. |
7.5. | Recuperările congenerilor nemarcaţi se verifică prin probe îmbogăţite sau probe pentru controlul calităţii cu concentraţii în intervalul nivelului maxim. Recuperările acestor congeneri se consideră acceptabile, în cazul în care sunt între 60 şi 120 %. |
Spectrometrie de masă prin metoda de diluţie a izotopilor (*2) (*2) Utilizarea tuturor celor şase analogi marcaţi 13C, conform standardelor interne. | Alte tehnici | |
Autenticitate | între -20 % şi +20 % | între -30 % şi +30 % |
Precizie intermediară (RSD %) | < = 15 % | < = 20 % |
Diferenţa dintre estimarea superioară şi estimarea inferioară a calculului | < = 20 % | < = 20 % |
10.1. | Rezultatele analitice includ nivelurile de congeneri individuali ai PCB-urilor individuali care nu sunt de tipul dioxinelor şi suma PCB-urilor congeneri raportaţi ca estimare inferioară, estimare superioară şi estimare mediană, pentru a include o cantitate maximă de informaţii în raportarea rezultatelor, ceea ce permite o interpretare a rezultatelor în conformitate cu cerinţele specifice. |
10.2. | Raportul include metoda utilizată pentru extracţia PCB-urilor. |
10.3. | Recuperările etaloanelor interne individuale sunt disponibile dacă recuperările se situează în afara intervalului menţionat la punctul 7, dacă se depăşeşte nivelul maxim, iar în celelalte cazuri, la cerere. |
10.4. | Întrucât, atunci când se decide conformitatea unei probe, se ţine seama de incertitudinea de măsurare extinsă, acest parametru trebuie pus şi el la dispoziţie. De aceea, rezultatele analitice se raportează ca x +/- U, unde x este rezultatul analitic şi U este incertitudinea de măsurare extinsă, folosind un factor de acoperire 2, care dă un nivel de încredere de aproximativ 95 %. |
10.5. | Rezultatele se exprimă în aceleaşi unităţi şi prin cel puţin acelaşi număr de zecimale precum nivelurile maxime prevăzute de Directiva 2002/32/CE. |





